肿瘤模型.docx
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肿瘤模型
概述2
肿瘤模型一问一答4
成瘤性变化4
接种量4
腹水发黄4
血性腹水5
剥瘤5
注射漏液5
药效筛选*6
植物提取物、体内抗瘤、动物选择7
腹水难抽7
传代次数、肿瘤活化7
冰浴8
对照组样本不足、组内差异大、剂量颠倒、不同药物疗效比较8
S180、动物不合格9
瘤块剥离10
胰腺癌11
瘤株的选择11
消化道肿瘤、敏感瘤株12
裸鼠抑瘤率、重复三批、指导原则12
肺腺癌A549、出瘤率13
C26结肠癌癌株、BALB/C小鼠、脾内注射、结肠癌肝转移模型13
卵巢癌、SK-OV-3、体内显像、腹腔内传代14
HO8910、内部有坏死、转移14
识别特定肿瘤细胞表面抗原的抗体15
胰腺癌、化疗药对照组环磷酰胺给药量15
瘤块的石蜡包埋、注意事项16
实验数据处理(例)16
概述
swordzjsh:
抗肿瘤药物是现在研究的一个热点问题,但是由于该模型的建立具有一定的技巧性,有不少刚刚开始做这方面实验的战友一般实验总会碰到这样那样的问题,本人硕士期间有幸参加过一类抗癌新药的研发工作,对小鼠肿瘤模型有一定的了解,应silverman版主的邀请,把我在肿瘤造模实验中的一点心得写出来,想起个抛砖引玉的作用,希望大家一起讨论。
动物选择:
KM小鼠,裸鼠,C57等均可作为,但是个人认为KM能做出来最好,毕竟比较有普遍性,还是正常生理状态的健康动物,比较有说服力,还便宜,裸鼠或者其他特定品种,比较适合特定的瘤株
瘤株类型:
H22;S180;EAC等
关于肿瘤细胞活力的问题:
一般买回来的瘤株,需要经过复苏过程,很多人复苏以后就直接给动物接种了,或者传一代以后就开始实验了,一般这个时候肿瘤细胞活力往往是不够的,很难在短时间内长到规定重量,所以建议至少在动物体内传2代,让肿瘤细胞活力充分体现以后再开始用于实验。
关于接种部位的问题:
以小鼠为例一般可以选择腋下或者后肢,有的文章说是背部接种,但是背部血管不发达,营养不够,一般不建议采用。
接种一般采用皮下注射,针头我喜欢沿皮肤水平进入,然后挑起表皮,注射,接种后3天我开始给药。
给药时间:
一般从开始造模起2周内我就会处理动物了,因为肿瘤如果扩散后会导致动物的大量死亡,毕竟是肿瘤啊,动物大量死亡的时间也相对集中,也许前一天还好,过一晚上就死掉不少,那个时候你哭都找不到坟头,只要肿瘤差不多够重了就处理吧。
关于进食水的问题:
别个都要死掉了,就别吝啬了,想吃就吃,想喝就喝吧。
关于模型对照组的问题:
我已经在别的帖子里面强调过了,这次再强调一下,接种以后一定要每天去骚扰它们一下,我有次试验偷懒,模型组没有管他们,结果模型组的肿瘤最后比给药组还小,都只有绿豆大,导致试验失败,郁闷死,后来重做的时候每天坚持给模型组生理盐水,结果肿瘤疯长。
说起来很奇怪,但是这个是事实,以后我再没有偷懒过,每次都成功复制出了模型。
关于肿瘤重量的问题:
模型组肿瘤重量应该不低于0。
5g,我不记得在哪本书上看到的了,反正是有个规定的
liusong:
再给大家介绍一种在肿瘤药物筛选过程中比较省时省力,省钱的试验方法。
3R试验法:
3R是Replacement(替代)、Reduction(减少)和Refinement(优化)的简称。
Replacement是指用生命系统(离体培养的器官、组织、细胞、微生物等)、非生命系统(物理、化学)和电脑模拟等方法替代实验动物。
Reduction是通过合用动物、改进统计学设计、使用高质量动物等方法达到减少实验动物使用量目的。
Refinement是利用改良仪器设备、减少对动物侵扰、进一步控制疼痛、改进动物保定技术等方法使得提高实验结果的可信度。
通过这一思想,在肿瘤筛选试验中我们可以给同一动物接种不同的2到3种不同的肿瘤,然后给于药物,看药物对哪种类型的肿瘤抑制率比较高。
我在筛选过程中就才用了这一方法,取得了不错的效果。
关于这方面的内容大家可以参看<<3R在肿瘤药物筛选上的应用>>这篇文章
肿瘤模型一问一答
成瘤性变化
杨2004:
在肿瘤实验中我们通常把处理后的细胞(如RNA干扰,转染某基因)接种到动物体内,以观察其成瘤性的变化,以皮下肿瘤为例,有的肿瘤的致瘤性发生变化,甚至不能形成肿瘤,那么不能长出肿瘤的动物的局部组织是不是也发生了一些变化呢?
或者是肿瘤细胞在皮下不能适应环境而发生了凋亡,而不影响动物接种部位呢。
swordzjsh:
汗,杨2004的问题我回答不了,我主要做的都是构建模型进行药效研究,你所提到的属于机理研究和功能研究,这方面我不熟,所以我也不知道这种经过基因水平处理的细胞株接种后对周围局部组织的影响,常规的肿瘤细胞株接种后如果不能成瘤,细胞悬液就会被动物吸收了,不会对周围的组织有什么影响,但是修饰过的细胞株我就不知道了。
接种量
zhangweilcb:
从小鼠腹腔抽出的腹水,抽出1ml,我需要加入20ml生理盐水(也就是要稀释20多倍)才能稀释到1×107。
而我从论坛上看到,取出腹水后可按1:
3,或是1:
4进行稀释,这样就可以打到腋下,是不是我的腹水中肿瘤细胞的浓度过高?
但是我的小鼠第七天时腹部也不是太大呀?
那腹部应该多大为好?
swordzjsh:
关于接种量的问题,首先细胞计数的时候要用台盘兰染色计数活细胞,而且计数的时候要注意,有一些很细小的细胞是血细胞,不要计数。
现在S180的瘤株变异很大,各个实验室之间的瘤株性质差异比较大,文献上的数据已不具备很好的参考性,你还是需要自己摸索一下,注意,S180皮下肿瘤如果接种细胞量偏大会造成肿瘤早期就溃烂,所以不要为了追求肿瘤生长速度而一味的提高接种细胞量。
至于腹部大小这个东西,怎么形容呢,反正就像怀了孕一样的大肚子,说不太好,自己多观察观察吧。
腹水发黄
zhangweilcb:
我从腹腔中抽出的腹水有些发黄,离心之后,在沉淀上部离心管壁上有一道红细胞,但我接种到腹腔时的肿瘤悬液浓度为1×107,0。
2ml/只,这样是不是浓度过大?
接种到腹腔时细胞的浓度多大为宜?
swordzjsh:
腹水略有发黄是正常的,而且你没有必要离心,如果你只是腹腔接种传代的话,接种细胞量不需要控制得很精确,基本上5天左右能看到肚子打起来了,7天左右肚子很大而且腹水不发红就好了。
也不是一味的提高接种量,腹水会血性的,这样的腹水就不能用于试验了,需要调整。
血性腹水
zhangweilcb:
我的肿瘤细胞为S180,我通过腹腔传代已经5次,在第5次时(接种数量为1×107,分别是第六天抽了三只和第七天抽了三只),六只小鼠中有5只抽出的腹水发红,为血性的。
原来的时候接种的细胞数量比这次高的时候也没出现这种情况,这是什么原因?
swordzjsh:
腹水血性是一个很讨厌的问题,也比较难控制,一般来说,注意接种量不要太高,但是也不是接种量高就一定会血性。
而且传代间隔不要太长,很多文献都说7~10天传代,事实上,超过7天的腹水再传代就很容易出现血性。
另外动物的周龄也不要太大,6周左右吧。
传代次数太多也很容易出现血性腹水。
一般小鼠肿瘤模型都控制在30多代以内(也有说50多代的)。
出现血性以后可以调整一下:
血性腹水可以离心后加0。
17N的NH4CL溶液破红细胞,然后精确一些的控制条件(接种量,传代时间,动物周龄等)传几代,很多情况下再传一两代后会有不血性的种鼠出现,然后用这只种鼠的腹水继续传代。
剥瘤
zhangweilcb:
腋窝的肿瘤长到第12天时,肿瘤在2。
0g左右,我在剥瘤子时感觉比较困难,对于一个瘤子,在剥的前半段还是比较好剥的,但越往里越难剥,主要是瘤子在腋窝深处和小鼠的右肢长到一块,不容易区分,每次剥完后,在最里面总感觉还剩一点肿瘤在那里。
而且,经常把血管剪破,导致血液流出。
不知该如何处理。
肿瘤细胞可否接种到小鼠腋窝偏下,或是接近腹部?
我想这样在剥瘤子时会轻松些,请指教。
swordzjsh:
一起回答,小鼠肿瘤剥瘤子是一个痛苦的过程,没有办法的,就是很难剥,但是可以一定程度上的改善一下:
接种的时候要精确控制接种在皮下,靠皮内会与皮肤强烈粘连,靠肌肉会与肌肉强烈粘连,而且不要太靠腋窝里面,可以往尾部靠一些,多接几次体会一下吧。
另外也可以稍微的往背部靠一点,不要往腹部靠,容易使肿瘤被垫料磨烂。
注射漏液
zhangweilcb:
在注射时,当打进的悬液外露时,该怎么办?
我的针头进针1cm,会不会太短?
swordzjsh:
细胞悬液打漏了,就只能废掉,没有补救办法。
进针深度,1。
5cm左右吧。
药效筛选*
zhangweilcb:
在药物抗肿瘤实验中,我看到文献中很多都是设置3个梯度,可否多设置几个?
而且在很多实验中可以计算药物的LD50,或是IC50,我想在小鼠肿瘤实验中可否算药物的肿瘤半抑制率。
我们有一个药的几个类似物,想比较一下它们的抗肿瘤活性,我该如何设置这几个药的剂量?
我有这么几个方案,请大家指教:
a。
每个药三个剂量,分别为LD50的1/5,1/10,1/20。
b。
每个药都是同一个剂量,0。
3mg/kg。
我想比较在同一个浓度下,它们对肿瘤的抑制效果。
另外,我想打入腹腔的药物的浓度是在同一摩尔浓度好呢,还是同一的mg/ml浓度好呢?
这几个类似物的分子量相差也不是很大。
c。
每个药物都只有一个剂量,剂量分别为LD50的1/5,这样比较药物在它们LD50的1/5时的抗肿瘤活性。
另外我想问一下,给药如何比较好,连续10天,或是1,5,9,或是每隔一天。
在连续给药过程中,小鼠会有不良反应吗?
我在做实验时,连续给药几天后,在给小鼠打药时,小鼠反抗比较明显,而且在腹腔给药时,进针的阻力明显增大。
不知是不是我的注射器的针头变钝了,还是小鼠的皮后了。
^_^。
swordzjsh:
关于药效筛选,我统一的说一下吧:
在初筛的预试验中,样品组的剂量可以多设几个,但是剂间比可以大一些,这样可以多考察一些剂量范围。
LD50是毒理中的半数致死量,ED50是体外试验中的半数有效量,一般体内实验没有类似的指标,如果你相比较几个类似物的药效还是做量效曲线比较好。
说到疗效的比较,如果你只是发文章,比较不同基团之间可能对母体抑瘤率的影响,一般做做体外试验,比一比大家的IC50就好了,不太做体内。
如果是真正的筛药,我个人有些观点:
这个不是孤立起来看某个或者某几个剂量下谁比谁的抑瘤率高。
主要要看谁更具有可开发性。
首先,要考虑它的毒性以及治疗窗口的大小,通俗的说,就是这个要在发挥疗效的剂量下,毒性是否大?
比如A药,10mg抑瘤率有50%,但是体重下降了20%;而B药,10mg的时候根本无效,30mg的时候有40%的抑瘤率,60mg的时候抑瘤率高达80%,而且体重几乎没有下降,这个时候A药与B药如何比较?
特别如果是公司筛选新药,还要考虑成本,病人可接受度(动物上的有效剂量换算到人一天要吃2斤,这种药也是不现实的),制剂,工艺等等方面。
如果单纯从药理的角度给出答案,至少要考虑毒性和剂量限制的问题。
关于剂量选择,LD50得几分之一是一种比较通用的方法,但是我认为还是不够,目前相对更合理一些的剂量选择是做一个简单的多次给药的毒理试验来确定剂量,我们一般会连续给药一周,然后再观察一周,这样摸出来的最大剂量可以直接用于药效试验,然后其他的剂量都在此剂量的基础上往下减。
说到给药疗程,一般初筛的药物都是连续天天给药,qd。
但是给药途径,特别是i。
v与i。
p的选择,我们都是先做一个简单的PK试验考察一下,再确定,特别是如果PK试验的结果显示,血药浓度甚至达不到体外IC50的浓度,那么是否进行体内试验,就有待商榷了。
连续i。
p,小鼠的皮肤有时候会变厚,你可以换一边给药。
植物提取物、体内抗瘤、动物选择
beaglewrote:
我现在想做一个植物提取物体内有无抗肿瘤活性,请问一般选择什么动物,什么肿瘤模型。
我们以前的体外实验结果表明,此提取物对胃癌细胞,卵巢癌细胞,白血病有作用,而且对白血病细胞敏感。
majinbo:
这样的话推荐你还是选择裸鼠进行体内研究,即人肿瘤裸鼠异体移植瘤模型。
建议现在敏感的瘤株,先在裸鼠身上进行种植(细胞密度约在3*107/ml),皮下注射,大约等到瘤块长起来时候,进行第二代瘤传代,这样就可以进行实验了!
Zues:
开始做肿瘤药效评价,应该采用s180这些小鼠肿瘤模型。
一个方面这些肿瘤对于药物很敏感,而且周期短,花费也少。
但如果要成药,裸鼠模型是必需的。
腹水难抽
Zhangweilcb:
大家好了,我想问一下,大家抽取腹水并稀释的过程,我的稀释过程:
小鼠腹腔抽取腹水1ml(是不是我的技术不过关,我感觉抽腹水比较困难,用的时间比较长,一只最多能抽出2ml,有的连1ml都抽不出来)先加5ml生理盐水,离心,然后在加10ml生理盐水稀释,取10微升加到1ml生理盐水中,然后计数,一般情况下在加10ml生理盐水稀释到1*107/ml,也就是1ml腹水稀释20倍达到1*107/ml。
大家可否说一下你们的稀释过程。
而一些文献说,抽取的腹水安1:
3稀释,我想这样稀释浓度是不是比1*107/ml要高呀,我可稀释了20倍才达到这个浓度的,难道是我的小鼠的腹水浓度太高了?
Liusong:
腹水难抽有几种情况,要么接种天数不够,腹水不够多,我一般等动物肚子很大了才去抽。
要么就是压力的问题。
有的动物腹水很稠,没有关系只要肚子大了。
里面有水就行,撕开小鼠肚子,拿掉针头,直接抽干净,最多的时候我抽到5ML没有问题,至于稀释的倍数,主要是看具体情况,实在没把握就去做个计数吧。
传代次数、肿瘤活化
zym145286:
1.那个接种瘤块的穿刺针到底叫什么啊?
我按照胸膜活检针去买,人家都说没有卖的啊。
2.上面你说到的做肿瘤药物筛选,肿瘤要在体内传代3次以上才可以用于实验,指的是用瘤株细胞悬液针头接种裸鼠,当肿瘤长大后取出在接种,然后连续接种至的三次,才可以用于实验嘛?
要是不这样做有什么不妥呢?
3.接种后的瘤子要知道是否统一,必须得在试验结束以后吧,要是SD值大于1/3了,是不是说我这次试验的结果就作废了呢?
那每个裸鼠肯定使药存在个体差异的,也许一开始长得很好,后来就不好了呢?
要是这样的话,我可以不可以使每组中的裸鼠数量多一些,然后都同时给药,试验结束的时候从中选择好一点点的作为试验数据啊?
我做的使BEL肝癌细胞,初期的荷瘤已经形成,就是在体内传代的手法还没有成熟,一个人操作真是困难啊,呵呵,有没有敲门啊,呵呵,等待大侠指导!
Liusong:
传代数次的原因在与让肿瘤细胞充分活化,你要不活化也行,多接种点吧,反正一般我是要活化以后再用的
瘤子不可能完全统一,生物实验个体差别明显,SD值大一点也没有办法,实在不行你每组多弄点动物吧。
BEL肝癌细胞细胞我没有做过,但是一般接种流程还是一样的,实体瘤取出后粉碎,用生理盐水清洗后接种,腹水瘤参看上面的帖子,一个人操作我没有觉得有什么困难的,不知道zym145286战友说的是哪里有问题,可以说明确些我们一起讨论解决。
还有转种过程最好冰浴下进行,肿瘤细胞不怎么耐热的哦.
冰浴
zym145286:
为什么要在冰浴里面操作呢?
我们做那些已经建立细胞系的细胞培养时,不是说0度不是细胞最易受损伤的温度吗?
怎么这个刚取下来的细胞就要在冰浴里面了呢?
冰浴说的是应该是冰水混合物吧?
?
那么冷不会损伤细胞吗?
呵呵,新手,不知道的问题太多了,麻烦大侠们了,嘿嘿
Liusong:
所谓冰浴就是把水里面放冰,作为冷却剂,作为套层放在你需要冷冻的容器外面,这么做的主要原因在与防止在接种或者离心等过程中温度上升,冰浴短时间不会对肿瘤细胞造成太大伤害的,swordzjsh的方法跟我一样在接种的过程中采用冰浴
对照组样本不足、组内差异大、剂量颠倒、不同药物疗效比较
Zhangweilcb:
再次请教几个问题,谢谢指教。
我们实验室对一个药物进行了改造,改造后有三个类似物。
进行实验检测母体和这三个类似物的抗肿瘤活性。
我是安徐叔云的那本药理实验方法学的方法做的,用的是昆明鼠,我连续给药8天,第11天剥瘤子,结果出来了,有这么几个问题想问一下。
1.对照组小鼠有死亡的,而且有的小鼠的头部变圆,让人看的很不舒服,这是否正常。
重复的实验对照组之间瘤重的差距是否很大,第一次我的对照组的肿瘤为1.9g,小鼠平均体重为21g,第二次为1.4g,小鼠平均体重为20g,象这种差距可以接受吗?
2.对照组中,小鼠的体重下降了,肿瘤也小的很,这是否正常?
另对照组中有的小鼠的肿瘤只有0.45g,有的却为2.6g,这种差距是否很大?
给药组中,一个剂量组内有的小鼠肿瘤可在2g,有的却不足1g,这是否是有小鼠的个体差异造成的?
你在做的时候是否会出现这种现象?
3.象这种实验的重复性怎么样,两次结果的差距是否很大?
抑瘤率是否会相差很大?
同一个剂量组内的小鼠个体之间的肿瘤差距是否很大?
4.我的药物给了高中低三个剂量,有个药的低剂量组的平均瘤重要大于对照组,这是否正常?
5.高浓度的小鼠死亡比较多,10只死了5只,其中有被其它小鼠咬死的,这种数据可否能用?
不会把剂量调低在做吧,这就太浪费了。
那该怎么办呢?
6.另外一下,我想把这几个类似物的抗肿瘤活性由大到小排一下,该如何做?
策略1:
这几个类似物都相同的剂量下,进行比较,这样可以只用1个合适的浓度,省时省力省老鼠,但是这几个类似物的毒性又不一样,这样对毒性小的类似物似乎不太公平,当然如果我的这几个类似物中,能出现毒性最小,在相同剂量下抗肿瘤活性又最好,那就太好了,但好像不会又那么好的事情。
而且我看的体内抗肿瘤实验好像没有提到这种方法。
策略2:
就是每个药物按照LD50的1/6,1/12,1/24设置三个浓度,进行比较,总感觉这种比较不能直接反应哪个类似物的抗肿瘤活性最好。
不同药物的LD50不一样,药物之间的比较不能在相同的剂量的条件下进行。
问一下该如何进行比较才比较好?
或是用策略2如何比较不同类似物之间的抗肿瘤活性?
Swordzjsh:
对照组有多少动物死亡?
什么时间死亡?
偶然一两只动物在试验快结束的时候死亡有可能是你接种的时候太深入腋窝里面,肿瘤生长太大以后会压迫一些血管和神经,造成动物死亡。
但是看你说有的小鼠头部变圆?
这个现象值得重视,有可能是动物的问题,包括来源或者饲养过程中都有可能。
不知道你对照组用的什么溶酶?
如果是一般无毒的溶酶,但是体重下降,这不是一件好事情,有可能还是动物有问题,根据平时的饲养观察情况具体分析一下吧。
不知道你做的什么瘤株?
但是很多小鼠的肿瘤确实均一性不好控制,刚上手的人做出来的同一组的肿瘤是会有比较大的差别,这个只能靠自己慢慢改进了。
至于每批试验之间的差异,是接种量控制的问题,如果使用腹水接种,每次最好还是计数活细胞数,更准确的控制接种量。
另外如果是口服给药,也非常难控制抑瘤率的变化,配药,给药,还有每天固定给药时间都是必需的。
剂量颠倒的现象很常见,这是试验结果真实的反映,正确对待就可以了。
高剂量动物死亡,说明剂量设置上有问题。
如果出现小鼠狂躁,咬死其他小鼠的现象,看看是不是ip给药有刺激性作用,造成小鼠暴躁,还有口服给药也有刺激性的可能,另外,每笼可以少养点动物,也会有一些改善。
不同药物之间疗效的比较,一般常见于资料并且得到公认的是体外IC50的比较,但是也仅供参考,如果比较体内的活性,你的策略2更科学一些,在2mg/kg的剂量下,Taxol,CTX等药物几乎无效,只有cisplatin有明显效果,能说cisplatin的疗效就比Taxol和CTX好么?
S180、动物不合格
Zhangweilcb:
我用的是S180。
对照组是10只,死亡一只,对照组是15只的死亡2只,都是最后两三天死的,应该都是头部变圆造成的。
我的对照组用的是生理盐水。
治疗组的药物用二甲基亚砜助溶。
我想问一下,高剂量给药的小鼠死亡过多,就像我上面提到的,死亡了一半这个数据是否能用?
我看药理实验方法学上提到如果超过20%,就需要重做,可这样让人太伤心了。
你们做的实验中,对照组中的和同一剂量组中的小鼠间的瘤重最大和最小一般有多大差距?
是不是大部分的小鼠肿瘤应当都集中在平均瘤重周围?
小鼠被咬死都是在实验快结束的时候发生的。
你们有没有遇到过小鼠头部变圆的现象?
Swordzjsh:
基本上可以判定,你用的动物有问题,但是问题出在哪里,不好说,也许供应方就有问题,也有可能是你们自己饲养的时候得问题,这需要你们自己慢慢去琢磨了。
高剂量的结果已经只能参考了,不能用于正式的发表或者报批,这么高的死亡率,这个剂量下的药效也没有意义,因为这个剂量下的毒性超过了可以接受的范围,一般可以接受的范围是指动物没有死亡,体重下降不超过15%,没有观察到非常严重的毒性反应。
试验方法中说的20%的死亡率是允许在模型造成的死亡上,因为受试药物造成的死亡一般是不被接受的。
药物用了DMSO助溶,对照组一样要用含有同等量的DMSO的溶酶,否则试验结果根本没有意义,如果担心溶酶造成肿瘤生长不良可以加设一组saline组。
头部变圆的情况没有碰到过,但是很明显这个现象不正常。
老鼠的健康度值得怀疑。
一般瘤重的SD在平均值的70~80%以下就还凑活,漂亮一点的是在30%以下,实在不行,100%也勉强,就是特别难看,但是SD越大,统计上就越不利。
老鼠被咬死我个人怀疑是药物造成动物躁狂,或者动物有疾病。
对照组和低剂量组有没有动物被咬(不一定要致死,被咬就说明有问题,雄性小鼠个别一两只咬别的老鼠还可以接受,如果大家都在互相咬,那么就是有问题)?
瘤块剥离
Dongqingsummer:
请高手指点下剥离瘤块时的注意事项。
。
不胜感激!
!
另有一个疑问:
当时采用的是,瘤块皮下移植。
就是将瘤块剪小。
然后剪开背部皮肤,将瘤块塞入,到现在有半个月了,有的瘤块长出了。
但是有的根本就没长,什么也没有。
是不是因为剪的口太大滑脱了。
你们用过这种接种方法么?
Zues:
肿瘤动物模型的一个很大的问题就是肿瘤大小不均一。
如果你可以选择其他的,建议选择恶性程度高的,那样均一性好,实在不行,可以改用插块试试。
Swordzjsh:
肿瘤的大小不是靠肉眼观察的,在试验过程中应该用游标卡尺测量长和宽,然后用体积=宽^2*长/2的公式计算肿瘤体积。
每组的肿瘤体积取平均值,在此基础上进行抑瘤率的计算,抑瘤率=(对照组-治疗组)/对照组*100%
试验结束的时候还可以剥取肿瘤称瘤重。
你所有提到的模型都只是粗略大概的食道癌,胰腺癌等等,这样的提法是没有意义的,你的告诉我们你用的瘤株的名称,另外,肿瘤构建过程中都是有一定的成瘤率的,很少有瘤株是100%成瘤,还有,同一批构建的模型中也会有均一度的问题,不可能所有的肿瘤大小都是一样的,肯定是有差异,关键看差异的大小。
不同瘤株之间的生长速度,成瘤率,均一度都是不一样的。
需要具体情况具体分析。
希望你提供你使用的瘤株的名称。
胰腺癌
Dongqingsummer:
请问:
有谁做过裸鼠胰腺癌的动物模型?
请问胰腺癌(我忘记是哪种型号了?
)对体重的要求苛刻么?
一般来说体重是18--22克的比较好。
如果20--24克的裸鼠可以么?
?
采用瘤块接种法。
我记得因为胰腺癌生长的比较快。
所以体重稍微超一些也没关系。
。
Swordzjsh:
对于肿瘤模型构建来说,一般讨论的不是体重,而是动物的周龄,一般以5~7周龄为好,但是对于生长较快的瘤株,8周龄也可以接受。
瘤株的选择
Dongqingsummer:
我现在做的肿瘤新药开发,好像现在要求是6组体内的抑瘤率,当然是人源的。
10组体外细胞培养的。
请问:
哪些瘤株体内生长比较快?
好存活且比较均一?
我现在做的食管癌Eca109,20天了,根本不出瘤,用的是瘤块皮下植
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