临床检验标本采集要求.docx
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临床检验标本采集要求.docx
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临床检验标本采集要求
检验标本采集要求
临床检验样本拒收的准则
1.盛样本的容器和/检验申请单上信息缺失或不符
1.1样本容器上无标识或标识不清;
1.2样本容器上标签与检验申请单不符;
1.3临床检验申请单上未写患者姓名、检测项目和检测材料中任何一项;
1.4检验申请单上送检项目本科未开展和/或属科研项目但未事先联系确认。
2.样本不合要求
2.1未使用合适的抗凝剂或样本类型不当;
2.2送检样本容器破损、有渗漏或选择不当;
2.3样本采集后保存不当;
2.4患者准备状态不恰当,影响实验结果,如未空腹查血脂。
3.发生以下情况原则上拒收样本
中度以上溶血;中度以上脂血;抗凝血中有凝块;量太少等。
但因情况特殊、取材困难或感染疾病的咨询等,本科将会应客房要求进行检测,并在报告单上注明样本状态供临床参考。
样本拒收后处理:
在我科拒收的样本,应及时重新采集,否则将和检验申请单一起退回。
临床检验分析前要求
一、临床检验单要求
1.病人信息:
申请者必需清楚写病人的姓名、性别、年龄或其它有效识别身份的信息;
2.病人的病历信息
申请者必须清楚填写病人所在临床科室名称、病历号、床号、临床诊断、临床样本类型、样本采集日期和时间、申请者姓名、申请检验日期;
3.请的检验项目:
申请者必须清楚填写检验项目名称,项目名称应规范、准确,特别是申请组合项目时,一定要与本科<检测目录>的组合内容一致,否则需填写组合项目的具体单项;
二、标本采集前患者准备须知
1.患者状态
原则上患者应在平静、休息状态下采集样本,特别是血液样本。
激动、兴奋或恐惧时,可使血红蛋白、白细胞等增高;
剧烈运动、能量消耗、体液丢失、呼吸剧烈可以造成体内多项指标变化,如谷丙转氨酶、谷草转氨酶、乳酸脱氢酶、肌酸激酶等一过性升高,还可引起血钾、钠、钙、白蛋白、血糖等的变化。
2.患者饮食对检验结果的影响
2.1进食后一定时间内可使血液中许多成份发生变化。
因人们饮食的多样性,生理状况差异也大,而且大多数项目的参考范围是以空腹血液测定值为基础的。
故建议,原则上要求早晨空腹采血(空腹12小时左右),对进食有特殊要求的项目除外。
一顿标准餐:
可使甘油三酯增高40%以上,血糖增高15%以上,进食高蛋白食物可使尿素氮、尿酸等增高,高碳水化合物食物可使血糖增高;
高脂肪食物:
可使甘油三酯大幅增高,并使血液出现乳糜现象影响许多检验结果;
进食咖啡:
淀粉酶、促甲状腺激素、碱性磷酸酶增高。
2.2长期素食者低密度脂蛋白、极低密度脂蛋白,胆固醇、甘油三酯会降低。
2.3禁食过久对检验结果的影响
补体C3、白蛋白、转铁蛋白、血糖、钾、钙、镁等浓度下降;
血胆红素、酮体、脂肪酸、甘油三酯、尿酸盐增高;
禁食刚开始时,血生长激素可升高15倍,3~4天后基本恢复正常。
2.4咖啡因对检验结果的影响:
咖啡、可乐、茶都含有咖啡因
咖啡因可使血糖微量上升,甘油三酯和皮质醇升高,胆固醇降低。
2.5酒精对检验结果的影响:
饮酒后会使血糖立即上升和造成高甘油三酯血症;
中度酒精量可使血清肌酸肌酶、和谷草转氨酶、谷丙转氨酶升高。
2.6抽烟对检验结果的影响
香烟中尼古丁会使血液中肾上腺素、尿中儿茶本酚胺及其代谢产物VMA升高;
生长激素对香烟特别敏感,抽烟后30分钟内浓度可升高10多倍;
吸烟者癌胚抗原、β脂蛋白、胆固醇、甘油三酯、红细胞、血红蛋白、白细胞高于不吸烟者,高密度脂蛋白低于不吸烟者。
3.药物对检验结果的影响
3.1药理作用对检验结果的影响:
甲状腺药物:
使血糖升高、胆固醇降低;
咖啡因:
使血糖和胆固醇增高;
维生素C:
使总胆固醇、甘油三酯、高密度脂蛋白降低;
口服避孕药:
使甲状腺结合球蛋白、纤维酶原、转铁蛋白、血清铁和甘油三酯升高、白蛋白和血清锌降低;
某些药物能够造成肝、肾功能损害,引起相关指标的变化。
3.2对检验项目的测定方法产生影响:
对于用比色法检测的项目,某些药物的物理特性比如颜色会影响比色;
药物参与检测时的化学反应,如有还原性的药物对于利用氧化还原法测定项目会有影响;某些药物可以抑制酶的活性,对于测定酶活性的项目会使结果降低。
4.标本本身对检验结果的影响
4.1标本溶血:
溶血可能是有某些疾病引起,但主要是在采血过程中或样本处置不当引起。
光学干扰,比色时若用到胆红素的吸收光谱区会产生分析误差;
红细胞内的某些物质与血清或血浆中的含量相差悬殊,如钾、镁、磷、谷丙转氨酶、谷草转氨酶、乳酸脱氢酶、血清铁等;
胆红素中的蛋白质使血清总蛋白和白蛋白升高。
注一:
中度或重度溶血必须重新采集标本
注二:
标本溶血的常见原因:
止血带施压时间太长;
穿刺部位皮肤有酒精残留;
针头、针筒或血液容器内有污染或水气;
使用的针头孔径太小;
针筒内的血液由针头排到容器中;
抽血时太快或用力太大;
血液与抗凝剂混合时剧烈振荡;
血液没有完全凝固就离心;
4.2脂血标本:
脂血造成的浑浊会在比色测定时引起光线散射,导致吸光值假性增高;
脂血会造成电解质检测错误;
抽血前食入富含脂肪的食物;
空腹患者有脂血现象,属于病理因素:
甘油三酯过高血浆或血清呈浑浊状;胆固醇含量高,血清或血浆外观没有变化;有乳糜微粒会在血清液面浮上一层奶油状物质。
三、样本采集
1.标本采集前准备
1.1根据项目要求或医生的交待嘱咐病人作好采集标本前的准备工作,并告知相关注意事项;
1.2了解各种项目的采集要求,并作好充分的准备;
1.3按规定选用合适的容器并在明显位置注明标识(如条形码、病人姓名、送检科室、住院号等资料);
1.4标本采集前应严格查对检验申请单信息和容器上内容是否一致。
有些标本采集后应在申请单上标注采集时间、体位等;
1.5采集抗凝血标本时,应选择合适的抗凝剂,不要随意更换成其他抗凝剂。
抗凝剂与血液的量必须准确。
抽血后立即轻轻颠倒混匀,避免血液凝固;
1.6严格掌握采集标本电动机,如避免在输液臂的同侧采血,有的项目测定应注意其分泌的节律性和周期性变化;
1.7要求病人自己留取的标本应该详细交待留取方法和注意事项。
2.标本采集方法
2.1准备试管:
取合适数量和规格的真空采血管备用;
2.2选择静脉:
患者取坐位,前臂水平伸直置于桌面枕垫上。
暴露穿刺部位,选择容易固定,明显可见的肘部静脉;
2.3扎止血带:
在采血部位上端扎止血带,并嘱患者反复握拳头,使静脉充盈暴露,便于穿刺;
2.4消毒:
先用复合碘消毒棉签自静脉穿刺处从内向外,顺时针方向消毒皮肤;
2.5穿刺:
取下一次性针头无菌帽,以左手拇指固定静脉穿刺部位端,右手拇指和中指握针头沿静脉使针头与皮肤成30度角斜行快速入皮肤,然后以5度角向前突破静脉壁进入静脉腔。
见回血后,将针头顺势插入少许,以防止采血针头滑出,但不可用力探刺,以免造成血肿;
2.6抽血:
将针头另一端插入真空采血管,至所需血量后,立即去掉止血带,用消毒棉签压住针孔,请患者松拳,迅速拔出针头。
嘱患者继续按压针孔数分钟以防出血;
2.7混匀:
如果用的是抗凝管,则轻轻颠倒混匀,切忌振荡试管。
3.尿液标本的采集
尿液标本种类的选择和收集取决于临床医师的送检目的、病人的状况和试验的要求。
理想情况下,为了达到筛查、检出分析物和有意义有形成份的目的,应收集浓缩尿液。
尿液标本的种类如下:
3.1晨尿:
清晨起床后,在未进早餐和做其它运动前排泄的尿液,又称为首次晨尿。
住院病人最适宜收集此类标本,但在采集前一天应提供收集容器和书面收集说明,如外阴、生殖器清洁方法,留中段清洁尿等。
若采集后2小时不能进行分析的,可采取适当的防腐措施。
晨尿常用于筛查、直立性蛋白尿检查和细胞学研究。
3.2随机尿:
即随时排泄,无需患者做任何准备的尿液,适用于常规及急诊筛查,但是,患者如摄入大量液体和剧烈运动后将直接影响尿液成分,从而不能准确反映患者疾病状况。
3.3计时尿:
收集一段时间内的尿液标本。
准确的计时和规范的说明是确保计时尿结果可靠的重要前提,根据检测项目的不同,添加适当的防腐剂。
24小时尿标本收集方法如下:
告知病人标本收集的具体步骤,尽可能提供书面说明;
在开始收集标本的第一天(如晨8:
00),病人排空膀胱中的尿液,弃去该部分尿液。
将此后连续24小时的尿液收集于盛尿容器内;
在结束收集标本的第二天(如晨8:
00),病人排空膀胱中的尿液,收集于盛尿容器内;
送到实验室前,充分混匀全部标本,准确测量并记录尿总量;
取出一定量尿液用于实验,弃去剩余尿液。
3.4尿液标本收集相关注意事项:
应留取新鲜尿,以清晨第一次尿为宜。
急诊病人可随时留取。
收集计时尿液标本时应告知病人时间段的起点和终点;
使用清洁有盖容器(一次性容器为佳),透明且不与尿液发生反应的惰性材料制成。
容器不可重复使用。
运送容器具有安全稳妥的密封装置,其密封装置易于操作和开启;
尿液标本应避免经血、白带、精液、粪便等混入。
此外,还应注意避免烟灰、糖纸等异物混入;
标本留取后,应及时送检,以免细菌繁殖、细胞溶解等;
尿胆红素和尿胆原等化学物质可因光分解或氧化而减弱。
标本送检时应避光。
3.5尿液防腐与保存:
标本收集2小时内无法进行尿液分析,或尿液中所要分析的成分不稳定,标本可加入特定的化学防腐剂,常用尿液防腐方法。
①冷藏不干扰常规筛查,放在4℃冰箱可保存6小时,在24小时内可抑制细菌生长。
主要检测:
电解质、肌酐、葡萄糖、总蛋白、白蛋白、重金属、药物筛查、促卵泡激素、雌三醇等。
②甲醛具有还原性,不适合尿糖等化学成份检查。
主要检测:
管型、细胞检查,用法:
每100mL尿加入400g/L的甲醛0.5mL。
③甲苯
主要检测:
尿糖、尿蛋白的防腐,用法:
每100mL尿加入甲苯0.5mL。
④硼酸保护蛋白质和有形成份,在24小时内可抑制细菌生长。
有尿酸盐沉淀。
干扰常规筛查的PH。
主要检测:
蛋白质(白蛋白、氨基酸等)、尿酸、5-羟吲哚乙酸、羟脯氨酸、皮质醇、雌激素、类固醇等检查。
用法:
每L尿中约加10g。
⑤盐酸不能用于常规筛查,破坏有形成份,沉淀溶质,杀菌。
主要检测:
钙、磷酸盐、δ-氨基乙酰丙酸、草酸盐、尿17酮类固醇、儿茶酚胺等。
用法:
每L尿中加10mL浓盐酸。
⑥氟化钠能防止糖酵解,不能用于常规筛查。
主要检测:
尿葡萄糖。
⑦碳酸钠保护卟啉和尿胆原,不能用于常规筛查。
主要检测:
卟啉和尿胆原。
用法:
24小时尿中加碳酸钠4g。
⑧麝香草酚保护有形成份、干扰蛋白沉淀试验、抑制细菌和霉菌。
主要检测:
有形成份。
用法:
每100mL加入量<0.1g。
⑨冰醋酸
主要检测:
24小时尿醛固酮。
用法:
每24小时尿加入约5~10mL。
4.痰液标本采集
4.1痰液的一般检查应收集新鲜痰,病人起床后刷牙,漱口(用3%H2O2及清水3次),用力咳出气管深处真正呼吸道分泌物,而勿混入唾液及鼻咽分泌物;
4.2幼儿痰液收集困难时,可用消毒棉拭纸刺激喉部反射,用棉拭子采取标本;
4.3痰液标本收集容器须加盖,痰液勿污染容器外(用不吸水容器盛留)。
5.粪便标本采集
5.1收集粪便标本的方法因检查目的不同而有差别,一般检验留取指头大小(约5g)新鲜粪便即可,放入干燥、清洁、无吸水性的有盖容器内送检。
容器最好用内层涂脂的硬纸盒,便于检查后焚毁;
5.2血吸虫毛蚴孵化则留新鲜粪便不少于3g。
细菌检查的粪便标本应收集于灭菌封口的容器内,勿混入消毒剂及其他化学药品,并立即送检检查;
5.3检查蛲虫卵需要用软粘透明纸拭子,在清晨排便前由肛门四周拭取标本,也可用棉拭子拭取,但均须立即镜检;
5.4检查寄生虫及虫卵计数,可用清洁、无尿污染的便盆收集24小时粪便送检;
5.5隐血试验,应嘱患者于收集标本前3天前起禁食动物性食物,连续检查3天,并取外表及内层粪便。
收集标本后须迅速进行检测,以免因长时间放置使隐血反应的敏感度降低;
5.6粪胆原定量检查应收集3天的粪便,混合称量,从其中取出约20g送检。
查胆汁成份的粪便不应在室温中长时间放置,以免阳性率减低;
5.7细菌检验用标本应全部用无菌操作收集。
收集容器须加盖,勿污染容器外(用不吸水容器盛留),立即送检。
6.体液标本采集
6.1脑脊液:
标本收集后应立即送检,一般不超过1小时。
收到标本后应立即检验,久置后可致细胞破坏,影响细胞计数及分类检查;葡萄糖含量降低;病原菌破坏或溶解。
细胞计数应避免标本凝固,遇高蛋白标本时,可用EDTA抗凝。
6.2浆膜腔积液:
穿刺取得的标本为防止细胞变性、出现凝块或细菌破坏溶解等,送检及检查必须及时;为防止凝固,最好加入EDTA抗凝,每0.1mL可抗凝6mL积液;PH测定应用肝素抗凝专用采样器。
6.3滑膜液:
应用消毒注射器,正常时滑膜液量甚少,病理时则可多达3~10mL,因检查项目不同、容器不同,故应事先准备有关标本容器,微生物培养应置于灭菌消毒试管,显微镜镜检应用肝素抗凝标本,每mL约用肝素钠25单位(不可采用肝素锂、草酸盐或EDTA干粉,以免人为形成晶体,干扰显微镜检查),收集后立即送检。
6.4精液标本:
①在3个月内检查2次至数次,2次之间间隔应>7天,但不超过3周;
②采样前至少禁欲3天,但不超过7天;
③采样后1小时内送检;
④用清洁干燥广口塑料或玻璃小瓶收集精液,不宜采用避孕套内的精液;
⑤应将射清清液全部送检;
⑥传送时温度应在20~40℃;
⑦和所有体液一样,精液也必须按照潜在生物危害物质处理,因为精液内可能含有肝炎病毒、人类免疫缺陷病毒和疱疹病毒等。
7.微生物学检验标本
7.1标本采集、运送这、验收和处理注意事项
①标本采集:
A.申请单必须清楚(姓名、性别、年龄、临床诊断、标本来源、采集时间、检查项目、抗生素应用情况等),以便实验室合理选用培养基。
B.尽量在抗生素应用前采集标本。
C.标本采集应严格执行无菌操作。
D.采集标本的容器必须经灭菌处理或使用一次性无菌专用容器。
②标本运送
标本采集后尽快送微生物室。
③标本验收
A.实验室只能接收和处理合格标本。
B.实验室对不合格标本退回时,须注明原因,并及时与临床联系。
7.2微生物检验标本采集和处理
⑴尿液标本采集和处理:
通常留取晨起第一次心潮澎湃液,及时送检,并保证2小时内接种,不能及时送检时,标本应置冰箱保存,并于8小时内送检。
怀疑沙门氏菌感染时,应于发病2周左右采集标本;怀疑钩端螺旋体感染时,应于发病后2周左右采集标本。
常用的标本采集方法如下:
A.中段尿采集法:
成年男性和女性分别用肥皂水清洗尿道口和外阴部,再用灭菌水冲洗尿道口,然后排尿弃去前段尿液,于带盖的无菌试管中留取中段尿液5~10mL。
B.尿尿法:
用导尿法取5~10mL尿液于无菌试管中,长期留置导尿管者应更换导尿管留尿;留置导尿时,用无菌消毒法消毒导尿管外部及导管口,用无菌注射器通过导尿管抽取尿液送检,不可采集尿液收集袋中的尿液送检。
C.其它方法:
膀胱穿刺或肾盂尿采集法须由临床医师采集。
⑵粪便标本采集和处理:
A.采集时间:
腹泻患者处于急性期,尽量在用药前采集;怀疑伤寒患者在发病前两周以后采集;怀疑霍乱时应立即采集送检。
B.采集方法:
一般患者,取新鲜粪便的粘液、脓血或絮状物等有意义成份2~3g或1~3mL,盛无菌容器内送检;难以获得粪便或排便困难的患者和婴幼儿,可用直肠拭子采集,再插入灭菌试管中送检。
⑶痰及下呼吸道标本采集和处理:
A.自然咳痰法:
晨痰为佳;先嗽口,清洁牙齿和口腔;再用力咳出呼吸道深部的痰;痰量不得少1mL;咳痰困难者可先做雾化处理。
B.小儿取痰法:
用弯压舌向后压舌,将拭子深入咽部,小儿因压舌板刺激引起咳嗽,喷出的肺或气管分泌物粘在拭子上送检。
C.支气管镜、支气管穿刺、支气管肺泡灌洗等采集法:
,由临床医师实施。
⑷血液及骨髓培养标本:
A.抗生素治疗前,严格无菌静脉采血3~5mL(儿童1~4mL);骨髓1~2mL。
B.无菌注入专用培养瓶中送检。
C.如已用抗生素不能停用时,可在48小时内分别于下次抗生素使用前,多次采集血液标本送检。
D.疑为心内膜炎时,为提高阳性检出率,可酌情不同部位、不同时间多次采血送检。
⑸脑脊液培养标本:
A.怀疑脑膜炎时应立即采集脑脊液,最好在抗生素使用前采集。
B.无菌腰穿采集脑脊液1~2mL,立即送检。
⑹穿刺液培养标本:
A.包括胸水、腹水、心包液、关节液、鞘膜液等。
B.在抗生素使用前采集或在停用抗生素2~3天后采集。
无菌穿刺采集,可在无菌容器中加入适量灭菌肝素。
⑺胃液及胆汁培养:
A.采集方法:
抽取空腹胃液5mL,置无菌管内送检;胆汁培养标本由十二指肠引流法、胆囊穿刺法或手术中留取胆汁5mL,置无菌管内送检。
B.标本采集后必须立即送检。
⑻脓汁和病灶分泌物培养:
A.标本采集前,先对病灶周围消毒,然后用无菌法采取脓汁或病灶分泌物和组织。
B.标本采集后立即置无菌管内送检。
⑼眼、耳、鼻、咽拭子分泌物培养标本:
A.用无菌拭子常规采集标本。
B.标本采集过程中应注意避免被粘膜上正常菌群污染。
C.标本采集后连同拭子一起置无菌管内送检。
⑽泌尿生殖道培养标本:
A.尿道分泌物:
清洗尿道后采取尿道溢出的脓性分泌物,或用无菌拭子插入尿道2~4mL处轻轻转动后取出,置无菌试管中立即送检。
B.阴道、宫颈分泌物:
通过阴道扩张器,用灭菌拭子采取阴道口或宫颈管1~2mL处分泌物,置无菌试管中送检。
C.前列腺液:
清洗尿道、膀胱后用前列腺按摩法采集前列腺液于无菌试管中,立即送检。
D.精液:
受检者应5天以上未排精,清洗尿道后用手淫法或体外排精法,射精于无菌管中立即送检。
E.溃疡分泌物:
灭菌生理盐水清洗患处,用无菌拭子取其边缘或基底部的分泌物,置无菌试管中立即送检。
⑾烧伤感染培养标本:
烧伤12小时后用无菌棉拭子采集标本:
要注意从多个创面取样;烧伤严重感染时易发生败血症,创面取样的同时应采集血样做血培养。
⑿真菌感染培养标本:
浅部真菌感染标本采集:
皮癣者常规消毒皮肤,从皮损边缘刮取鳞屑,置无菌平皿中送检;皮肤溃疡则采集皮损周围脓汁或组织;毛发则采集其根部折断处,至少5~6根送检;指(趾)甲;消毒指(趾)甲并去掉其表面部分,取可疑病变部分,用刀片修成小薄片5~6片,置无菌容器中送检。
深部真菌感染标本采集:
血液:
无菌采集血3~5mL,注入血培养瓶中,立即送检;如不能立刻送检时血培养瓶应放室温,但不可超过8小时。
及脊液:
采样量不少于3mL,分别注入两支无菌试管中送检(一支做真菌培养和墨汁染色,另一支做普通培养)。
呼吸道及泌尿生殖道标本:
采集方法同普通培养。
⒀厌氧菌感染培养标本:
标本采集:
严格执行无菌操作,避免标本污染和与空气接触;用注射器抽取胸水、腹水、心包液、关节液、胆汁、脑脊液或无菌手术抽取脓液;抽出液体标本后,要尽快排除注射器内的空气。
标本运送:
标本采集后不得冰箱储存,必须尽快(半小时内)送检;标本运送可采用注射器(已驱氧)或含运送培养基的无氧小瓶以及厌氧罐。
⒁特殊项目的标本采集要求
A.糖耐量试验:
①病人准备:
试验前3日,每日食物总糖含量不低于150g,维持正常活动,影响试验的药物(如:
咖啡因、口服避孕药、水杨酸盐等)应在3日前停用,试验前病人应10~16小时不进食。
②标本采集:
临床上常用方法是清晨抽空腹血后,口服75g无水葡萄糖,再于给糖后0.5、1、1.5、2小时各采血1次,每次采集2mL,尽快分离血清。
B.人乳头瘤病毒DNA(HPV-DNA)分型检测:
①病人准备:
3天内不能做阴道冲洗或使用阴道内药物,24小时内不能有性生活,非月经期采样检测。
②标本采集:
放置阴道扩张器,用专用取样刷置于子宫颈口与粘膜交界处逆时针转三圈,停留10秒钟;
③将取样刷放于专用试管中,在切口处折断多余部分;
④拧紧盖子送检。
尽量避免保存液在取样过程中溢出,否则样本量不够无法检测。
标本保存:
4℃可保存3周,-20℃可保存半年。
C.高血压项目:
①病人准备:
β-阻断剂、血管扩张药、利尿剂及甾体激素、甘草等影响体内肾素水平,一般要在停药后3周测定。
不适合停药的病人改服胍乙啶等的影响PRA较小的降压药。
钠摄入量影响机体PRA水平,故病人测定PRA前3天应适当减少盐报入量,最好同时测定取血前24小时的尿钠含量,以供分析PRA结果时参考。
②标本采集:
肘静脉取血5mL,迅速注入放在水浴冷却的酶抑制剂的专用抗凝管中,摇匀,即刻现放回冰水浴中冷却,待离心时取出。
1000rpm离心5分钟(最好4℃离心)分离血浆。
此操作应在15分钟内完成。
(外送时,取2mL血浆送检)。
③标本保存:
低温冰箱保存(-20℃以下),可保存2个月。
④注意事项:
卧位血是指病人早晨醒来未下床活动前采集的血标本:
立位血是指病人早晨下床活动3小时后采集的血标本。
标本未及时分离血浆、反复冻融、溶血、保存不当、使用过期抗凝剂均可影响结果。
四、标本送出前的处理和保存
1.标本的交接检查:
本科工作人员与送检者当场交接样本,履行交接程序。
不合格的样本当场拒收,对有疑义的样本,与临床协商后处理。
样本上条码与检验申请单上条码是否一致
样本是否溶血
抗凝血有无凝块
检验申请单填写是否完整
血液样本有无脂血
样本量是否符合要求
样本使用容器是否正确(是否抗凝、所用抗凝剂种类,特殊项目是否使用专用容器或采集管)。
2.样本离心
绝大多数血液中成份在不分离血细胞的情况下能够在24小时内保持稳定,但外送检验项目必须分离血清或血浆后送检。
溶血对一些项目影响很大,发生中度以上溶血的下列项目不能检验:
钾、钠、氯、钙、镁、磷、谷草转氨酶、谷丙转氨酶、胰岛素、C肽、肌酸激酶、神经元特异性烯醇化酶、碱性磷酸酶、乳酸脱氢酶、叶酸、血常规等。
注:
因许多成份在红细胞和血清/血浆间浓度有差异,有的差异很大,样本在运输、储存过程中,血细胞代谢、微生物降解等会影响标本质量,另如标本在运输过程中处理不慎(颠簸等)易引起溶血。
3.样本保存:
不能及时送检的样本,一般情况下应放冰箱冷藏,但部分项目要室温保存。
.
4.样本密封:
为保护样本不挥发、污染、溢出和生物安全考虑,盛样本的容器应密封,所有样本都应按照生物安全的要求谨慎处理。
建议:
对于要外送检验的项目,将血液样本分离血清/血浆后送检(需要用全血检测的项目除外)。
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