微生物的生长与生存因子.docx
- 文档编号:6525280
- 上传时间:2023-01-07
- 格式:DOCX
- 页数:15
- 大小:32.18KB
微生物的生长与生存因子.docx
《微生物的生长与生存因子.docx》由会员分享,可在线阅读,更多相关《微生物的生长与生存因子.docx(15页珍藏版)》请在冰豆网上搜索。
微生物的生长与生存因子
第五章微生物的生长与生存因子
一、目的要求
要求学生掌握微生物生长的研究方法,了解调控微生物生长繁殖的因素。
二、教学内容
1微生物纯培养的生长
2测定微生物生长的方法
3微生物的生长规律
4影响微生物生长的因素
三、重点内容
微生物的生长测定与微生物生长的规律
四、教学方法
采用多媒体教学
微生物在适宜的条件下,不断地吸收营养物质并按照自己的代谢方式进行代谢活动,如同化作用大于异化作用,则细胞质的量不断增加,体积得以加大,于是表现为生长。
所谓生长就是指生物个体由小到大的增长,即表现为细胞组分与结构在量方面的增加;繁殖是指生物个体数目的增加。
但是在单细胞微生物中,生长繁殖的速度很快,而且两者始终交替进行,个体生长与繁殖的界限难以划清,因此实际上常以群体生长作为衡量微生物生长的指标。
群体生长的实质是包含着个体细胞生长与繁殖交替进行的过程。
第一节微生物纯培养的获得
微生物在自然界中不仅分布很广,而且都是混杂地生活在一起。
要想研究或利用某一种微生物,必须把它众混杂的微生物类群分离出来,以得到只含有一种微生物的培养。
微生物学中将在实验条件下,从一个细胞或同种细胞群繁殖得到的后代称为纯培养。
纯培养的获得有下列几种方法。
一、平板划线分离法
有接种环以菌操作沾取少许待分离的材料,在无菌平板表面进行平行划线、扇形划线或其他形式的连续划线,微生物细胞数量将随着划线次数的增加而减少,并逐步分散开来,如果划线适宜的话,微生物能一一分散,经培养后,可在平板表面得到单菌落。
二、稀释倒平板法
先将待分离的材料用无菌水作一系列的稀释(如1∶10、1∶100、1∶1000、1∶10000…),然后分别取不同稀释液少许,与已溶化并冷却至45℃左右的琼脂培养基混合,摇匀后,倾入灭过菌的培养皿中,待琼脂凝固后,制成可能含菌的琼脂平板,保温培养一定时间即可出出菌落。
如果稀释得当,在平板表面或琼脂培养基中就可出现分散的单个菌落,这个菌落可能就是由一个细菌细胞繁殖形成的。
随后挑取该单个菌落,或重复以上操作数次,便可得到纯培养。
三、单孢子或单细胞分离法
采取显微分离法从混杂群体中直接分离单个细胞或单个个体进行培养以获得纯培养,称为单细胞(单孢子)分离法。
单细胞他离法的难度与细胞或个体的大小成反比,较大的微生物如藻类、原生动物较容易,个体较小的细菌则较难。
在显微镜下使用单孢子分离器进行机械操作,挑取单孢子或单细胞进行培养。
也可以采用特制的毛细管在载玻片的琼脂涂层上选取单孢子并切割下来,然后移到合适的培养基进行培养。
单细胞分离法对操作技术有比较高的要求,多限于高度专业化的科学研究中采用。
四、利用选择性培养基分离法
各种微生物对不同的化学试剂、染料、抗生素等具有不同的抵抗能力,利用这些特性可配制合适某种微生物而限制其它微生物生长的选择培养基,用它来培养微生物以获得纯培养。
另外,还可以将样品预处理,消除不希望分离到的微生物。
如加温杀死营养菌体而保留芽孢,过滤去除丝状菌体而保留单孢子。
微生物纯培养分离方法的比较
分离方法
应用范围
平皿划线法
方法简便,多用于分离细菌
稀释倒平皿法
即可定性,又可定量,用途广泛
单细胞挑取法
局限于高度专业化的科学研究
利用选择培养基法
适用于分离某些生理类型较特殊的
第二节微生物生长的测定
微生物生物情况可以通过测定单位时间里微生物数量或生物量的变化来评价。
通过微生物生长的测定可以客观地评价培养条件、营养物质等对微生物生长的影响,或评价不同的抗菌物质对微生物产生抑制(或杀死)作用的效果,或客观反应微生物的生长规律。
因此微生物生长的测量在理论上和实践上有着重要的意义。
微生物生长的测量有计数、重量和生理指标等方法。
1.计数法
此法通常用来测定样品中所含细菌、孢子、酵母菌等单细胞微生物的数量。
计数法又分为直接计数法和间接计数两类。
(1)直接计数
这类方法是利用血球计数板,在显微镜下计算一定容积里样品中微生物的数量。
此法的缺点不能区分死菌与活菌。
计数板是一块特制的载玻片,上面有一个特定的面积1mm2和高o.1mm的计数室,在1mm2的面积里又被刻划成25个(或16个)中格,每个中格进一步划分成16个(或25个)小格,但计数室都是由400个小格组成。
将稀释的样品滴在计数板上,盖上盖玻片,然后在显微镜下计算4-5个中格的细菌数,并求出每个小格所含细菌的平均数,再按下面公式求出每毫升样品所含的细菌数。
每毫升原液所含细菌数=每小格平均细菌数×400×l0000×稀释倍数
(2)间接计数法
此法又称活菌计数法,其原理是每个活细菌在适宜的培养基和良好的生长条件下可以通过生长形成菌落。
将待测样品经一系列10倍稀释,然后选择三个稀释度的菌液,分别取0.2ml放入无菌平皿,再倒入适量的已熔化并冷至45℃左右的培养基,与菌液混匀,冷却、待凝固后,放入适宜温度的培养箱或温室培养,长出菌落后,计数,按下面公式计算出原菌液的含菌数:
每毫升原菌液活菌数=同一稀释度三个以上重复平皿
菌落平均数×稀释倍数×5
此法还可以将稀释的菌液取0.2m1加到已制备好的平板上,然后用无菌涂棒将菌液涂布整个平板表面,放入适宜温度下培养,计算菌落数,再按上公式计算出每毫升原菌液的所含活菌总数。
此法可因操作不熟练造成污染,或因培养基温度过高损伤细胞等原因造成结果不稳定。
尽管如此,由于该方法能测出样品中微量的菌数,仍是教学、科研和生产上常用的一种测定细菌数的有效方法。
土壤、水、牛奶、食品和其他材料中所含细菌、酵母、芽抱与抱子等的数量均可用此法测定。
但不适于测定样品中丝状体微生物,例如放线菌或丝状真菌或丝状蓝细菌等的营养体等。
除上述两种常用的计数方法外,还有膜过滤法、比浊法。
膜过滤法是当样品中菌数很低时,可以将一定体积的湖水、海水或饮用水等样品通过膜过滤器。
然后将滤膜干燥、染色,并经处理使膜透明,再在显微镜下计算膜上(或一定面积中)的细菌数;比浊法原理是在一定范围内,菌的悬液中细胞浓度与混浊度成正比,即与光密度成正比,菌越多,光密度越大。
因此可以借助于分光光度计,在一定波长下,测定菌悬液的光密度,以光密度(O.D.)表示菌量。
实验测量时一定要控制在菌浓度与光密度成正比的线性范围内,否则不准确。
微生物计数法,发展迅速,现有多种多样的快速、简易、自动化的仪器和装置等方法。
2.重量法
此法的原理是根据每个细胞有一定的重量而设计的。
它可以用于单细胞、多细胞以及丝状体微生物生长的测定。
将一定体积的样品通过离心或过滤将菌体分离出来,经洗涤,再离心后直接称重,求出湿重,如果是丝状体微生物,过滤后用滤纸吸去菌丝之间的自由水,再称重求出湿重。
不论是细菌样品还是丝状菌样品,可以将它们放在已知重量的平皿或烧杯内,于105℃烘干至恒重,取出放入干燥器内冷却,再称量,求出微生物干重。
如果要测定固体培养基上生长的放线菌或丝状真菌,可先加热至50℃,使琼脂熔化,过滤得菌丝体,再用50℃的生理盐水洗涤菌丝,然后按上述方法求出菌丝体的湿重或干重。
除了干重、湿重反映细胞物质重量外,还可以通过测定细胞中蛋白质或DNA的含量反映细胞物质的量。
蛋白质是细胞的主要成分,含量也比较稳定,其中氮是蛋白质的重要组成元素。
从一定体积的样品中分离出细胞,洗涤后,按凯氏定氮法测出总氮量。
蛋白质含氮量为16%,细菌中蛋白质含量占细菌固形物的50%一80%,一般以65%为代表,有些细菌则只占13%一14%,这种变化是由菌龄和培养条件不同所产生的。
因此总含氮量与蛋白质总量之间的关系可按下列公式计算:
蛋白质总量=含氮量×6.25
核酸DNA是微生物的重要遗传物质,每个细菌的DNA含量相当恒定,平均为8.4×10-5ng。
因此从一定体积的细菌悬液中所含的细菌中提取DNA,求得DNA含量,再计算出这一定体积的细菌悬液所含的细菌总数。
3.生理指标法
对于一些非溶液的样品,要测定微生物数量除了用活菌计数法外,还可以用生理指标测定法进行测定。
生理指标包括微生物的呼吸强度、耗氧量、酶活性、生物热等。
这是根据微生物在生长过程中伴随出现的这些指标,样品中微生物数量多或生长旺盛,这些指标愈明显,因此可以借助特定的仪器如瓦勃氏呼吸仪、微量量热计等设备来测定相应的指标。
这类测定方法主要用于科学研究,分析微生物生理活性等。
第三节微生物的生长规律
一、细菌群体生长规律
细菌接种到均匀的液体培养基后,当细菌以二分裂法繁殖,分裂后的子细胞都具有生活能力。
在不补充营养物质或移去培养物,保持整个培养液体积不变条件下,以时间为横坐标,以菌数为纵坐标,根据不同培养时间时细菌数量的变化,可以作出一条反映细菌在整个培养期间菌数变化规律的曲线,这种曲线称为生长曲线称为生长曲线(growthcurve)。
一条典型的生长曲线至少可以分为迟缓期、对数期、稳定期和衰亡期等四个生长时期。
1.迟缓期(1agphase).
又称延滞期、适应期。
细菌接种到新鲜培养基而处于一个新的生长环境,因此在一段时间里并不马上分裂,细菌的数量维持恒定,或增加很少。
此时胞内的RNA、蛋白质等物质含量有所增加,相对地此时的细胞体最大,说明细菌并不是处于完全静止的状态。
产生迟缓期的原因,认为是微生物接种到一个新的环境,暂时缺乏足够的能量和必需的生长因子,“种子”老化(即处于非对数生长期)或未充分活化,接种时造成的损伤等。
在工业发酵和科研中迟缓期会增加生产周期而产生不利的影响,但是迟缓期无疑也是必需的,因为细胞分裂之前,细胞各成分的复制与装配等也需要时间,因此应该采取一定的措施:
①通过遗传学方法改变种的遗传特性使迟缓期缩短;②利用对数生长期的细胞作为“种子”;③尽量使接种前后所使用的培养基组成不要相差太大;④适当扩大接种量等方式缩短迟缓期,克服不良的影响。
2.对数生长期(logphase)
又称指数生长期(exponentialPhase)。
细菌经过迟缓期进入对数生长期,并以最大的速率生长和分裂,导致细菌数量呈对数增加,而且细菌内各成分按比例有规律地增加,此时期内的细菌生长是平衡生长。
对数生长期细菌的代谢活性、酶活性高而稳定,大小比较一致,生活力强,因而它广泛地在生产上用作“种子”和在科研上作为理想的实验材料。
3.稳定生长期(stationaryphase)
由于营养物质消耗,代谢产物积累和pH等环境变化,逐步不适宜于细菌生长,导致生长速率降低直至零(即细菌分裂增加的数量等于细菌死亡数量),结束对数生长期,进入稳定生长期。
稳定生长期的话细菌数最高并维持稳定。
如果及时采取措施,补充营养物质或取走代谢产物或改善培养条件,如对好氧菌进行通气、搅拌或振荡等可以延长稳定生长期,获得更多的菌体物质或代谢产物。
4.衰亡期(decline或deathPhase)
营养物质耗尽和有毒代谢产物的大量积累,细菌死亡速率逐步增加和活细菌逐步减少,标志进入衰亡期。
该时期细菌代谢活性降低,细菌衰老并出现自溶。
该时期死亡的细菌以对数方式增加,但在衰亡期的后期,由于部分细菌产生抗性也会使细菌死亡的速率降低。
此外,不同的微生物,甚至同一种微生物对不同物质的利用能力是不同的。
有的物质可直接被利用(例如葡萄糖或NH4+等);有的需要经过一定的适应期后才能获得利用能力(例如乳糖或NO3-等)。
前者通常称为速效碳源(或氮源),后者称为迟效碳源(或氮源)。
当培养基中同时含有这两类碳源(或氮源)时,微生物在生长过程中会产生二次生长现象。
二、同步培养
微生物个体生长是微生物群体生长的基础。
但群体中每个个体可能分别是处于个体生长的不同阶段,因而它们的生长、生理与代谢活性等特性不一致,出现生长与分裂不同步的现象。
同步培养(synchronousculture)是一种培养方法,它能使群体中不同步的细胞转变成能同时进行生长或分裂的群体细胞。
以同步培养方法使群体细胞能处于同一生长阶段,并同时进行分裂的生长方式称为同步生长。
通过同步培养方法获得的细胞被称为同步细胞或同步培养物。
同步培养物常被用来研究在单个细胞上难以研究的生理与遗传特性和作为工业发酵的种子,它是一种理想的材料。
用一般培养方法获得的细胞通常是不完全同步的细胞,就是同步培养方法获得的同步细胞经几次传代之后,也会出现不同步的现象。
如何使不同步转变为同步,以及如何使用同步细胞能较长时间地保持同步,这是同步培养中要研究的课题。
同步培养方法很多,可归纳为机械法与环境条件控制两类。
1.机械方法
这是一类根据微生物细胞在不同生长阶段的细胞体积与质量或根据它们同某种材料结合能力不同的原理设计出来的方法。
其中常用的有:
(1)离心方法
将不同步的细胞培养物悬浮在不被这种细菌利用的糖或葡聚糖的不同梯度溶液里,通过密度梯度离心将不同细胞分布成不同的细胞带,每一细胞带的细胞大致是处于同一生长期的细胞,分别将它们取出进行培养,就可以获得同步细胞。
(2)过滤分离法
将不同步的细胞培养物通过孔径大小不同微孔滤器,从而将大小不同的细胞分开,分别将滤液中的细胞取出进行培养,获得同步细胞。
(3)硝酸纤维素滤膜法
根据细菌能紧紧结合到硝酸纤维素滤膜上的特点,将细菌悬液通过垫有硝酸纤维素滤膜的过滤器,然后将滤膜颠倒过来,再将培养基流过滤器,以洗去末结合的细菌,然后将滤器放入适宜条件
下培养一段时间,其后仍将培养基流过滤器,这时新分裂产生的细菌被洗下,分部收集并通过培养获得同步细胞。
2.环境条件控制技术
这类技术是根据细菌生长与分裂对环境因子要求不同的原理设计的一类获得同步细胞的方法。
(1)温度
最适生长温度有利于细菌生长与分裂,不适宜温度如低温不利于细菌生长与分裂。
通过适宜与不适宜温度的交替处理之后,通过培养可获得同步细胞。
(2)培养基成分控制
培养基中的碳、氮源或生长因子不足,可导致细菌缓慢生长直至生长停止。
因此将不同步的细菌在营养不足的条件下培养一段时间,然后转移到营养丰富的培养基里培养,能获得同步细胞。
另外也可以将不同步的细胞转接到含有一定浓度的,能抑制蛋白质等生物大分子合成的化学物质如抗生素等的培养基里,培养一段时间后,再转接到完全培养基里培养也能获得同步细胞。
(3)其他
对于光合细菌可以将不同步的细菌经光照培养后再转到黑暗中培养,这样通过光照和黑暗交替培养的方式可获得同步细胞;对于不同步的芽孢杆菌培养至绝大部分芽孢形成,然后经加热处理,杀死营养细胞,最后转接到新的培养基里,经培养可获得同步细胞。
环境条件控制获得同步细胞的机理不完全了解。
这种处理可能是导致胞内某些物质合成,它合成和积累可导致细胞分裂,从而获得同步细胞。
三、连续培养
连续培养(continouscultureofmicroorganisms)是在微生物的整个培养期间,通过一定的方式使微生物能以恒定的比生长速率生长并能持续生长下去的一种培养方法。
根据生长曲线,营养物质的消耗和代谢产物的积累是导致微生物生长停止的主要原因。
因此在微生物培养过程中不断的补充营养物质和以同样的速率移出培养物是实现微生物连续培养的基本原则。
在连续培养里,培养容器中细菌的数量一方面以比生长速率的数量增加,同时又在以稀释率的数量减少。
连续培养有两种类型,恒化器连续培养和恒浊器连续培养。
前者是在整个培养过程中通过控制培养基中某种营养物质的浓度基本恒定的方式,保持细菌的比生长速率恒定,使生长“不断”进行。
培养基中的某种营养物质通常是作为细菌比生长速率的控制因子,这类因子一般是氨基酸、氨和铵盐等氮源,或是葡萄糖、麦芽糖等碳源或者是无机盐,生长因子等物质。
恒化器连续培养通常用于微生物学的研究,筛选不同的变种。
后者主要是通过连续培养装置中的光电系统控制培养液中菌体浓度恒定、使细菌生长连续进行的一种培养方式。
菌液浓度大小通过光电系统调节稀释率来维持菌数恒定,此种培养方式一般用于菌体以及与菌体生长平行的代谢产物生产的发酵工业,从而获得更好的经济效益。
恒浊器连续培养与恒化器连续培养的比较
装置
控制对象
培养基
培养基流速
生长速率
产物
应用范围
恒浊器
菌体密度
无限制生长因子
不恒定
最高速率
大量菌体或与菌体相平行的代谢产物
生产为主
恒化器
培养基流速
有限制生长因子
恒定
低于最高速率
不同生长速率的菌体
实验室为主
连续培养如用于生产实践上,就称为连续发酵,连续发酵与单批发酵相比有许多优点:
①高效,它简化了装料,灭菌、生产时间和提高了设备的利用率;②自控,便于利用各种仪表进行自动控制;③产品质量较稳定;④节约了大量动力、人力等资源。
连续培养或连续发酵也有其缺点。
最主要的是菌种易于退化。
其次易遭杂菌污染。
此外营养的利用率一般亦低于单批培养。
在生产实践上,连续培养技术已广泛用于酵母菌体的生产,乙醇、乳酸和丙酮-丁醇等发酵。
以及用假丝酵母进行石油脱蜡或是污水处理中。
第四节环境对微生物生长的影响
生长是微生物同环境相互作用的结果。
在液体培养中生长曲线是在正常培养条件下,反映微生物接种后的培养过程中菌数变化同培养时间之间的关系。
微生物在培养过程中,环境的变化会对微生物生长产生很大的影响。
一、环境对微生物生长的影响
影响微生物生长的主要因素有营养物质、水的活性、温度、pH和氧等。
1.营养物质
营养物质不足导致微生物生长所需要的能量、碳、氮源、元机盐等成分不足,此时机体一方面降低或停止细胞物质合成,避免能量的消耗,或者通过诱导合成特定的运输系统,充分吸收环境中微量的营养物质以维持机体的生存;另一方面机体对胞内某些非必要成分或失效的成分进行降解以重新利用,这些非必需成分是指胞内贮存的物质、无意义的蛋白质与酶、mRNA等。
例如在氮、碳源缺乏时,机体内蛋白质降解速率比正常条件下的细胞增加了7倍,同时减少tRNA合成和降低DNA复制的速率,导致生长停止。
2.水的活性
水是机体中的重要组成成分,它是一种起着溶剂和运输介质作用的物质,参与机体内水解、缩合、氧化与还原等反应在内的整个化学反应,并在维持蛋白质等大分子物质的稳定的天然状态上起
着重要作用。
微生物在生长过程中,对培养基的aw有一定的要求,每种微生物生长都有最适的aw,高于或低于所要求的aw值,都会通过影响培养基的渗透压力变化而影响微生物的生长速率。
微生物不同,生长所需要的最适配w值也不同。
3.温度
根据微生物生长的最适温度不同,可以将微生物分为嗜冷、兼性嗜冷、嗜温、嗜热和超嗜热等五种不同的类型。
它们都有各自的最低、最适和最高生长温度范围。
微生物类型生长温度/℃
最低最适最高
嗜冷微生物0以下1520
兼性嗜冷微生物020-303;
嗜温微生物15—2020-4545以上
嗜热微生物4555-6580
超嗜热或嗜高温微生物6580-90100以上
表中列出不同微生物生长温度的一些典型例子。
温度的变化都会对每种类型微生物的代谢过程产生影响,通过改变它们的生长速率。
以适应温度的变化而生存。
温度对微生物生长的影响具体表现在:
①影响酶活性,微生物生长过程中所发生的一系列化学反应绝大多数是在特定酶催化下完成的,每种酶都有最适的酶促反应温度,温度变化影响酶促反应速率,最终影响细胞物质合成;②影响细胞质膜的流动性,温度高流动性大,有利于物质的运输,温度低流动性降低,不利于物质运输,因此温度变化影响营养物质的吸收与代谢产物的分泌;⑦影响物质的溶解度,物质只有溶于水才能被机体吸收或分泌,除气体物质以外,温度上升物质的溶解度增加,温度降低物质的溶解度降低,最终影响微生物的生长。
4.pH
微生物生长过程中机体内发生的绝大多数的反应是酶促反应,而酶促反应都有一个最适pH范围,在此范围内只要条件适合,酶促反应速率最高,微生物生长速率最大,因此微生物生长也有一个最适生长的pH范围。
此外微生物生长还有一个最低与最高的pH范围,低于或高出这个范围,微生物的生长就被抑制,微生物不同生长的最适、最低与最高的pH范围也不同。
微生物
最低PH
最适PH
最高PH
细菌
3-5
6.5-7.5
8-10
酵母菌
2-3
4.5-5.5
7-8
霉菌
1-3
4.5-5.5
7-8
pH通过影响细胞质膜的透性、膜结构的稳定性和物质的溶解性或电离性来影响营养物质的吸收,从而影响微生物的生长速率。
质子是一种唯一不带电子的阳离子,它在溶液里能迅速地与水结合成水合氢离子(H3O+等)。
在偏碱性条件下,OH-占优势,水合氢离子和OH-对营养物质的溶解度和离解状态,细胞表面电荷平衡和细胞的胶体性质等方面均会产生重大影响;在酸性条件下H+可以与营养物质结合,并能从可交换的结合物或细胞表面置换出某些阳离子,从而影响细胞结构的稳定性;同时由于PH值较低,CO2溶解度降低,某些金属离子如Mn2+、Ca2+、Mo2+等溶解度增加,导致它们在溶液中的浓度增加,从而对机体产生不利的作用。
5.氧
根据氧与微生物生长的关系可将微生物分为好氧、微好氧、耐氧型、兼性厌氧和专性厌氧五种类型,它们在液体培养基试管中的生长特征见图。
因此,在培养不同类型的微生物时,一定要采取相应的措施保证不同类型的微生物能正常生长。
例如培养好氧微生物可以通过振荡或通气等方式使之有充足的氧气供它们生长;培养专性厌氧微生物则要排除环境中的氧,同时通过在培养基中添加还原剂的方式降低培养基的氧化还原电势;培养兼性厌氧或氧的耐氧型微生物,可以用深层静止培养的方式等。
微生物与氧的关系
微生物类型
最适生长的O2体积分数
好氧
微好氧
氧的忍耐型
兼性厌氧
专性厌氧
等于或大于20%
2%一lO%
2%以下
有氧或无氧
不需要氧、有氧时死亡
氧对于好氧微生物生长虽然可以通过好氧呼吸产生更多的能量,满足机体的生长需要,但另一方面,氧对一切生物都会使其产生有毒害作用的代谢产物,如超氧基化合物与H2O2,这两种代谢产物互相作用还会产生毒性很强的自由基OH.。
自由基是一种强氧化剂,它与生物大分子互相作用,可导致产生生物分子自由基,从而对机体产生损伤或突变作用,直至死亡。
氧之所以对专性厌氧微生物以外的其他四种类型微生物不产生致死作用,是因为它们具有超氧物歧化酶,可催化起氧化基化合物分解,最终分解成水。
第五节微生物生长繁殖的控制
在适宜条件下,对数生长期的微生物能以最大的比生长速率进行生长繁殖,产生大量的新个体,例如每个E.coli细胞的重量虽然大约只有10-12g,但是,如果一个E.coli在肉汤培养基和在适宜条件下,培养48h产生的新个体的总重量可超过地球重量的4000倍!
实际上生长是微生物与环境相互作用的结果。
在自然界电离辐射、太阳、温度、湿度、营养物质消耗和代谢产物积累等环境影响下,E.coli不可能以最大比生长速率无限制地生长下去,再加上E.coli噬菌体作用,一些E.coli也会被裂解而死亡,使细菌数量不会无限增加。
另一方面微生物中有不少是动物、植物和人类的病原菌,也必须对这类病原菌进行控制。
因此,如何控制微生物的生长速率或消灭不需要的微生物,在实际应用中具有重要的意义。
有关的术语
抑制(inhibition):
抑制是在亚致死剂量因子作用下导致微生物生长停止,但在移去这种因子后生长仍可以恢复的生物学现象。
死亡(death):
死亡是在致死剂量因子或在亚致死剂量因子长时间作用下,导致微生物生长能力不可逆丧失,即使这种因子移去后生长仍不能恢复的生物学现象。
防腐(antisepsis):
防腐是在某些化学物质或物理因子作用下,能防止或抑制微生物生长的一种措施,它能防止食物腐败或防止其他物质霉变。
例如日常生活中以干燥、低温、盐腌或糖渍等防腐方法是保藏食品(物)的主要方式。
具有防腐作用的化学物质称为防腐别。
消毒(disinfec
- 配套讲稿:
如PPT文件的首页显示word图标,表示该PPT已包含配套word讲稿。双击word图标可打开word文档。
- 特殊限制:
部分文档作品中含有的国旗、国徽等图片,仅作为作品整体效果示例展示,禁止商用。设计者仅对作品中独创性部分享有著作权。
- 关 键 词:
- 微生物 生长 生存 因子