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荧光抗体技术
第二节荧光抗体技术
一、荧光抗体的制备
(一)抗体的荧光素标记
用于标记的抗体,要求是高特异性和高亲和力的。
所用抗血清中不应含有针对标本中正常组织的抗体。
一
般需经纯化提取igg后再作标记。
作为标记的荧光素应符合以下要求:
①应具有能与蛋白质分子形成共价
健的化学基团,与蛋白质结合后不易解离,而未结合的色素及其降解产物易于清除。
②荧光效率高,与蛋
白质结合后,仍能保持较高的荧光效率。
③荧光色泽与背景组织的色泽对比鲜明。
④与蛋白质结合后不影
响蛋白质原有的生化与免疫性质。
⑤标记方法简单、安全无毒。
⑥与蛋白质的结合物稳定,易于保存。
常用的标记蛋白质的方法有搅拌法和透析法两种。
以fitc标记为例,搅拌标记法为:
先将待标记的蛋白质溶液用0.5ml/lph9.0的碳酸盐缓冲液平衡,随后在磁力搅拌下逐滴加入fitc溶液,在室温持续搅拌4〜6h
后,离心,上清即为标记物。
此法适用于标记体积较大,蛋白含量较高的抗体溶液。
优点是标记时间短,荧光素用量少。
但本法的影响因素多,若操作不当会引起较台强的非特异性荧光染色。
透析法适用于标记样品量少,蛋白含量低的抗体溶液。
此法标记比较均匀,非特异染色也较低。
方法为:
先将待标记的蛋白质溶液装入透析袋中,置于含fitc的0.01mol/lph9.4碳酸盐缓冲液中反应过夜,以后再对pbs透析法去除游离色素。
低速离心,取上清。
标记完成后,还应对标记抗体进一步纯化以去除未结合的游离荧光素和过多结合荧光素的抗体。
纯化方法可采用透析法或层析分离法。
二)荧光抗体的鉴定
荧光抗体在使用前应加以鉴定。
鉴定指标记包括效价及荧光素与蛋白质的结合比率。
抗体效价可以用琼脂
按公式计算。
按公式计算。
A ■RB200)F/P—譽 f/p值越高,说明抗体分子上结合的荧光素越多,反之则越少。 一般用于固定标本的荧光抗体以f/p=1.5为 宜,用于活细胞染色的以f/p=2.4为宜。 抗体工作浓度的确定方法类似elisa间接法中酶标抗体的滴定。 将荧光抗体自1: 4〜1: 256倍比稀释,对切 片标本作荧光抗体染色。 以能清晰显示特异荧光、且非特异染色弱的最高稀释度为荧光抗体工作浓度。 荧光抗体的保存应注意防止抗体失活和防止荧光猝灭。 最好小量分装,-20'C冻存,这样就可放置3〜4 年。 在4C中一般也可存放1〜2年。 二、免疫荧光显微技术 免疫荧显微技术的基本原理是: 使荧光抗体与标本切片中组织或细胞表面的抗原进行反应,洗涤除去游离的荧光抗体后,于荧光显微镜下观察,在黑暗背景上可见明亮的特异荧光。 (一)标本的制作荧光显微技术主要靠观察切片标本上荧光抗体的染色结果作为抗原的鉴定和定位。 因此标本制作的好坏直接影响到检测的结果。 在制作标本过程中应力求保持抗原的完整性,并在染色、洗涤和封埋过程中不发生 溶解和变性,也不扩散至临近细胞或组织间隙中去。 标本切片要求尽量薄些,以利抗原抗体接触和镜检。 标本中干扰抗原抗体反应的物质要充分洗去,有传染性的标本要注意安全。 常见的临床标本主要有组织、细胞和细菌三大类。 按不同标本可制作涂片、印片或切片。 组织材料可制备 成石蜡切片或冷冻切片。 石蜡切片因操作烦琐,结果不稳定,非特异反应强等已少应用。 组织标本也可制 成印片,方法是用洗净的玻片轻压组织切面,使玻片粘上1〜2层组织细胞。 细胞或细菌可制成涂片,涂片 应薄而均匀。 涂片或印片制成后应迅速吹干、封装。 置-10C保存或立即使用。 (二)荧光抗体染色 于已固定的标本上滴加经适当稀释的荧光抗体。 置湿盒内,在一定温度下温育一定时间,一般可用25〜 37°C30min,不耐热抗原的检测则以4'C过夜为宜。 用pbs充分洗涤,干燥。 (三)荧光显微镜检查 经荧光抗体染色的标本,需要在荧光显微镜下观察。 最好在染色当天即作镜检,以防荧光消退,影响结果。 荧光显微镜检查应在通风良好的暗室内进行。 首先要选择好光源或滤光片。 滤光片的正确选择是获得良好 荧光观察效果的重要条件。 在光源前面的一组激发滤光片,其作用是提供合适的激发光。 激发滤光片有两 种。 mg为紫外光滤片,只允许波长275〜400nm的紫外光通过,最大透光度在365nm;bg为蓝紫外光滤片,只允许波长325~500nm的蓝外光通过,最大透光度为410nm。 靠近目镜的一组阻挡滤光片(又称吸 收滤光片或抑制滤光片)的作用是滤除激发光,只允许荧光通过。 透光范围为410〜650nm,代号有og(橙 黄色)和gg(淡绿黄色)两种。 观察fitc标记物可选用激发滤光片bg12,配以吸收滤光片og4或gg9 观察rb200标记物时,可选用bg12与og5配合 (四)实验的类型 1•直接法用特异荧光抗体直接滴加于标本上,使之与抗原发生特异性结合(图17-1)。 本法操作简便, 特异性高,非特异荧光染色因素少;缺点是敏感度偏低,每检查一种抗原需制备相应的特异荧光抗体。 待检荧光标记抗体 图17-1直接免疫荧光法原理示意图 2•间接法可用于检测抗原和抗体,原理见图17-2。 本法有两种抗体相继作用,第一抗体为针对抗原的特 异抗体,第二抗体(荧光抗体)为针对第一抗体的抗抗体。 本法灵敏度高,而且在不同抗原的检测中只需应用一种荧光抗体。 图17-2间接免疫荧光法原理示意图 图17-3补体结合免疫荧光法原理示意图 3•补体结合法本法是间接法的第一步抗原抗体反应时加入补体(多用豚鼠补体),再用荧光标记的抗补体抗体进行示踪(图17-3)。 本法敏感度高,且只需一种抗体。 但易岀现非特异性染色,加之补体不稳定,每次需采新鲜豚鼠血清,操作复杂。 因此较少应用。 4•标记法本法用fitc及罗丹明分别标记不同的抗体,而对同一标本作荧光染色。 在有两种相应抗原存在时,可同时见到橙红和黄绿两种荧光色泽。 三、在医学检验中的应用 荧光抗体技术在临床检验上已用作细菌、病毒和寄生虫的检验及自身免疫病的诊断等。 在细菌学检验中主要用于菌种的鉴定。 标本材料可以是培养物、感染组织、病人分泌排泄物等。 本法较其他鉴定细菌的血清学方法速度快、操作简单、敏感性高,但在细菌实验诊断中,一般只能作为一种补充手段使用,而不能代替常规诊断。 荧光抗体染色法对脑膜炎奈氏菌、痢疾志贺菌、霍乱弧菌、布氏杆菌和炭疽杆菌等的实验诊断有较好效果。 荧光间接染色法测定血清中的抗体,可用于流行病学调查和临床回顾诊断。 免疫荧光用于梅毒螺旋体抗体的检测是梅毒特异性诊断常用方法之一。 免疫荧光技术在病毒学检验中有重要意义,因为普通光学显微镜看不到病毒,用荧光抗体染色法可检岀病毒及其繁殖情况。 ifat)是当前公认的最 在寄生虫感染诊断中,间接荧光抗体染色法有非常广泛的应用。 间接免疫荧光试验(有效的检测疟疾抗体的方法。 常用抗原为疟疾患者血液中红内期裂殖体抗原。 ifat对肠外阿米巴、尤其是阿米巴肝脓肿也有很高的诊断价值,所用抗原是阿米巴培养物悬液或提取的可溶性抗原。 免疫荧光法还是检测自身抗体的好工具,在自身免疫病的实验诊断中应用广泛。 其突出优点是能以简单方 法同时检测抗体和与抗体起特异反应的组织成分,并能在同一组织中同时检查抗不同组织成分的抗体。 主要有抗核抗体、抗平滑肌抗体和抗线粒体抗体等。 抗核抗体的检测最常采用鼠肝作核抗原,可做成冰冻切片、印片或匀浆。 用组织培养细胞如hep-2细胞或hela细胞涂片还可检出抗着丝点抗体、抗中性粒细胞浆抗体等。 应用免疫荧光技术可以检出的其他自身抗体有抗(胃)壁细胞抗体、抗双链dna抗体、抗甲状腺 球蛋白抗体、抗甲状腺微粒体抗体、抗骨髓肌抗体及抗肾上腺抗体等。 荧光抗体技术的一种特殊应用是流式细胞分析(flowcytometry)。 在这种分析方法中检测仪器不是荧光显微镜,检测对象不是固定了的标本,而是将游离细胞作荧光抗体特异染色后,在特殊设计的仪器中通过喷嘴逐个流出,经单色激光照射发出的荧光信号由荧光检测计检测,并自动处理各处数据。 这种方法可用于检测细胞大小、折散率、粘滞度等,更常用于t细胞亚群等的检测。 免疫荧光技术 免疫荧光技术(Immunofluorescencetechnique)又称荧光抗体技术。 它是在免疫学、生物化学和显微镜技术的基础上建立起来的一项技术。 免疫荧光技术包括荧光抗体技术和荧光抗原技术,因为荧光色素不但能与抗体球蛋白结合,用于检测或定位各种抗原,也可以与其他蛋白质结合,用于检测或定位抗体,但是在实际工作中荧光抗原技术很少应用,所以人们习惯称为荧光抗体技术,或称为免疫荧光技术。 该技术的主要特点是: 特异性强、敏感性高、速度快。 主要缺点是: 非特异性染色问题尚未完全解决,结果判定的客观性不足,技术程序也还比较复杂。 (一)原理与方法免疫学的基本反应是抗原-抗体反应。 由于抗原抗体反应具有高度的特异性,所以当抗原抗体发生反应时,只要知道其中的一个因素,就可以查出另一个因素。 免疫荧光技术就是将不影 (二)荧光抗体的制备 1.免疫血清的制备及免疫球蛋白的提纯制备高效价的特异性抗血清是免疫荧光技术成功 的前提。 为此,用于免疫的抗原必须高度提纯,尽可能不含其他非特异性的抗抗原物质,血清的效价与特异性是矛盾的,通常以高效价的免疫血清为好,因为用这种血清制备荧光抗体,即使其中含有少量非特异抗体,也可以通过稀释法将其除去。 为提高血清效价,在制备免疫原时,通常采用大剂量加佐剂,长程免疫,其中以弗氏不完全佐剂最常用。 即按抗原1份,无水羊毛脂1份,液体石蜡2份混合,待充分乳化后,免疫动物,即可能获得高效价的免疫血清。 用于荧光素标记的免疫血清,需提纯后使用,这样不但可以提高抗体的效价,而且还可以排除丫球蛋白以外的蛋白质,减少非特异性荧光的出现。 从免疫血清中将特异性抗体提 纯于荧光素标记是免疫荧光技术的关键一环。 在免疫荧光技术中所应用的特异性抗体,主要是IgG类,其提纯方法很多,但以饱和硫酸铵盐析法比较简便,也可用分子筛层析法(即葡聚糖凝胶过滤),以及离子交换层析法等,或先用盐析法精提,然后再经过层析柱进一步纯化。 2.荧光色素的标记能够产生明显荧光并能作为染料使用的有机化合物称为荧光色素或荧 光染料。 用于标记抗体的荧光色素,必须具有化学上的活性基因,能与蛋白质稳定结合,且不影响标记抗体的生物活性及抗原抗体的特异性结合。 适于标记蛋白的荧光色素主要有异硫氰酸荧光黄(fluoresceinisothiocyanate,FITC),四乙基罗达明(rho-damineB200,RB200)和四甲基异硫氰基罗达明(tetramethylrhodamineisotheynate,TMRITC)。 实际上目前应用最多的只有异硫氰酸荧光黄一种。 (1)FITC标记FITC为黄色结晶形粉末,分子量为389,易溶于水和酒精等溶剂中,溶解后呈黄绿色荧光,最大吸收光谱为490-495nm,FITC的溶液不稳定,易因水解或迭聚而变质,故需在配好后2h内应用。 FITC含有异硫氰基,在碱性条件下能与IgG的自由氨基(主要是赖氨酸的&氨基)结合, 形成荧光抗体结合物。 一个分子的IgG有86个赖氨酸残基,但一般最多只能标记15-20个。 1直接标记法取抗体球蛋白溶液10ml,碳酸盐缓冲液3ml,生理盐水17ml,混合,在4C 电磁搅拌下加FITC3mg(先溶解在3ml缓冲液中),在4C继续搅拌4-6h,将结合物通过已平衡好的SephadexG25柱,以除去未结合的游离荧光素。 2透析标记法将抗体球蛋白溶液用碳酸盐缓冲液(0.25mol/L,pH9.0调动1%(W/V),并 装入透析袋中,按蛋白质量的1/20称取FITC溶于10倍抗体溶液量的碳酸盐缓冲液中,将 透析袋浸没于FITC液中,于4C搅拌16-18h取出透析袋于0.01mol/L,pH7.2PBS中透析4h,将结合物通过已平衡好的SephadexG25柱,去除游离荧光素。 (2)RB200标记本品为无定形褐红色粉末,不溶于水,易溶于酒精和丙酮,性质稳定,可 长期保存,分子量为580,最大吸收光谱为570nm,呈明亮的橙色荧光,因与FITC的黄绿 色有明显区别,故被广泛用于对比染色或用于两种不同颜色的荧光抗体的双重染色。 方法为: 取1gRB200及五氯化磷(PCL5)2g放乳钵中研磨5min(在毒气操作橱中),加10ml无水丙酮,放置5min,随时搅拌,过滤,用所得溶液进行结合。 将每亳升血清用1ml生理盐水 及1ml碳酸盐缓冲液(0.5mol/L,pH9.5)稀释,逐滴加入0.1mlRB200溶液,随加随搅拌,在0-4C继续搅拌12-18h。 (3)TMRITC标记TMRITC为紫红色粉末,性能比较稳定,分子量为443,最大吸收光谱 为550nm,呈橙红色荧光。 其结合方法与FITC的直接标记法相同,只是所加色素量为蛋白 质量的1/30-1/40,结合时间持续16-18h。 (4)影响标记的主要因素温度、时间、酸碱度和标记量4个因素。 温度低,标记时间长,温度高,标记时间应短。 FITC0-4C以6-12h为宜,20-25C以1-2h为宜,37C30-45min为宜。 pH低时,标记较慢,pH值偏高(大于10),抗体易变性,pH值9.0-9.5最为适宜。 抗体蛋白含量低,标记慢,以每毫升含20-25mg蛋白为宜。 至于标记方法,各有特点,但均不能去除非特异荧光染色因素。 透析法适用于小体积的标记。 3.标记抗体的纯化抗体标记以后,应立即进行纯化处理,以消除或降低非特异性染色和特异交叉染色。 其步骤如下: 标记抗体溶液 J透析或凝胶过滤 去除游离荧光色素 (粗制荧光抗体) JDEAE纤维素层析 去除过度标记的蛋白分子 (精制荧光抗体) 航原交叉吸收或组织制剂吸收 去除特异交叉反应的标记杭体 免疫纯荧光抗体) 根据免疫荧光试剂的具体用途,纯化的方法可以不同,并不是每一种荧光试剂都须经过以上全部过程。 对于某些细菌诊断试剂,只要除去游离荧光素就可以,检测病毒抗原的荧光抗体一般要求下述处理: (1)游离荧光素的去除去除标记过程中未与蛋白质结合的游离荧光素,是纯化标记试剂的最基本要求,不经过这一步处理,任何免疫荧光试剂都不能应用。 ①半透膜透析法利用荧光色素分子可以通过半透膜,而蛋白分子则因分子量大不能通过的原理,逐步将游离色素除去。 先将标记好的抗体溶液装于透析袋或玻璃纸袋内,注意使液面上留有一定空间,扎紧袋口,先用流动自来水透析5min,再转入PBS(0.01mol/L,pH7.2)或生理盐水中继续透析,外液量至少大于内液量100倍,透析应在低温(0-4C)下进行, 每天换液3-4次,整个透析时间约需1周左右,时间过长容易造成蛋白质变性,影响荧光抗体的质量。 取透析液(外液)以紫外线灯检查,若无荧光出现,即可停止透析。 ②凝胶过滤法利用荧光色素分子和蛋白质分子量的悬殊差别,通过分子筛除去游离荧光 素,一般1h以内即能完成操作,但最好与透析法结合进行。 先将标记抗体溶液透析4h,除 去大部分游离荧光素和其他小分子物质以后,再进行凝胶过滤,这样有利于保护凝胶柱,延长使用时间。 凝胶柱sephadexG25和G50装好后,以洗脱液(0.001mol/L或0.005mol/LPBS,pH7.0-7.2)平衡,然后加入样品,样品与柱床容积的比例1: 2以下皆可。 样品全部进入柱床 后,即可进行洗脱。 应用此法可使游离荧光素完全除去,同时荧光抗体可以100%回收。 (2)过度标记的蛋白分子的去除去除游离荧光素后,结合物中存在的未标记的和过度标记 的蛋白质,是降低染色效价和出现非特异性染色的主要因素。 常用的方法是DEAE-纤维素 或DEAD-葡聚糖凝胶层析,结合物通过层析柱后,过度标记的部分(易出现非特异性)被吸附,过低标记的或未标记的部分(易降低敏感性)自由流出,从而可以得到荧光素与蛋白质结合比最适的部分。 DEAD-纤维柱用PBS平衡后,柱上端放一大小合适的滤纸片,打开下口,调解流速至每分钟10-20滴左右,待柱上液面剩一薄层PBS时,用吸管滴加标记样品,样品进入柱床尚离一薄层时,用适量PBS冲洗管壁,然后用大量0.01mol/L,pH7.2PBS洗脱,用20%磺基水杨酸液试测洗脱液。 待蛋白出现阳性反应时即可收集,蛋白反应阴转时停止收集,该洗脱液即为纯化的标记抗体。 (3)特异交叉或额外应用性标记抗体的去除去除特异交叉或额外应用标记抗体,常用组织粉末吸收法,最常用的是肝粉,这一步处理对标记的抗体来说,损失是很大的,一般可省去这一步。 4.标记抗体的鉴定经过以上各种程序所获得的精制荧光抗体,使用前须做特异性测定、敏感性鉴定以及纯度测定后,才可正式用于荧光抗体染色。 参考文献 1989 [1]殷震、刘景华、动物病毒学,科学出版社,1985[2]刘玉斌、敬仕金,动物免疫学实验技术,吉林科学技术出版社, [4]杜平,医用实验病毒学,人民军医出版社,1995 [5]北京医学院微生物学教研室,实验免疫,人民卫生出版社,1980 [6]南京农业大学,家畜传染病学(第二版),农业出版社,1986 一、荧光素荧光是指一个分子或原子吸收了给予的能量后即刻引起发光,停止能量供给,发光也瞬时停止(一般持续 10-7~10-8s)。 可以产生明亮荧光的染料物质,称荧光色素。 目前主要常用的荧光色素有以下3种: (一)异硫氰酸荧光素(Fluorescein isothiocyanate,GITC) 呈黄色、橙黄或褐黄色粉末或结晶,性质稳定,在室温下能保存2年以上,在低温中可保存多年。 易溶于 水和酒精。 最大吸收光谱为490〜495nm,最大发射光谱为520〜530nm,呈现黄绿色荧光,分子量为398.4 (图3-5)。 在碱性条件下,FITC的异硫氰酸基在水溶液中与免疫球蛋白的自由氨基经碳酰胺化而形成硫碳氨基键,成 为标记荧光免疫球蛋白,即荧光抗体。 反应式如下(图3-6): 一个lg分子上最多能标记15〜20个FITC分子 图3-5FITC的吸收光谱和发射光谱 JI S tFfTVj 图3-6抗体的FITC标记反应式 (二)四乙基罗达明(tetraethylrodamine B200,RB200) 570nm,最大发 呈褐红色粉末,不溶于水,易溶于酒精和丙酮,性质稳定,可长期保存。 最大吸收光谱为射光谱为595 600nm,呈明亮橙红色荧光。 分子量为580(图3-7) 8氨基反 RB200在五氯化磷(PCI5)作用下转变成磺酰氯(SO2CI),在碱性条件下易与蛋白质的赖氨酸应结合而标记在蛋白分子上。 化学反应式如下(图3-8)。 图3-7RB200在可见光区的吸收图3-8 RB200标记抗体反应 光谱和荧光光谱 图3-8RB200标记抗体反应 (三)四甲基异硫氰酸罗达明(tetramethylrhodamineisothiocyanate,TMRITC) 它是一种紫红色粉末,较稳定。 其最大吸收光谱为550nm,最大发射光谱620nm,呈橙红色荧光,与FITC的黄绿色荧光对比清晰(图3-9),与蛋白质结合方式同TITC。 它可用于双标记示踪研究。 化学结构式如 下(图3-10)。 图3-9TMRITC在可见光区的吸收 光谱和发射光谱 图3-10TMRITC结构式 、荧光素标记抗体的方法 (一)FITC标记抗体的方法 1.Marsshall氏法 (1)材料: 抗体球蛋白溶液、0.5mol/L pH9.0碳酸盐缓冲液、无菌生理盐水、异硫氰酸荧光素、1%硫柳汞水溶液、三角烧瓶(25〜50ml)、冰及 冰槽(或1000ml烧杯)、电磁搅拌器、灭菌吸管、透析袋、玻棒、棉线及烧杯(500ml八pH7.2或8.0 的0.01mol/LPBS等。 (2)方法及步骤: 1抗体的准备: 取适量已知球蛋白浓度之溶液,置入三角烧瓶中,加入生理盐水及碳酸盐缓冲液,使最后 蛋白浓度为20mg/ml,缓冲液容量为总量的1/10,混匀,将三角烧瓶置冰槽中,电磁搅拌(速度适当以不起泡沫为宜)5〜10min 荧光素,用分析天平准确称所取所需的异硫氰酸荧光素粉末。 ③结合(或称标记): 边搅拌边将称取的荧光色素渐渐加入球蛋白溶液中,避免将荧光素粘于三角烧瓶壁 或搅拌玻棒上(大约5〜10min内加完),加毕后,继续搅拌12〜18h。 结合期间应保持蛋白溶液于4'C左 图3-11SephadexG-25对FITC 图3-12 FITC与家兔IgG球蛋白在25C和2°C时结合的动力学(Kawamura 1964) 洗脱液: 0.01mol/L磷酸盐缓冲液(pH7.2);过滤量: 12ml标记全球蛋白液(过滤前未透析);收集量: 20 ml(稀释1.7倍)。 分别以1mgFITC溶于2份1mol 0.5mol/L碳酸重碳酸盐缓冲液(分别为pH9.5和pH9.0),于2C下搅拌将其各加入100mg家兔IgG生 理盐水溶液中,搅匀后立即将每份分为两半。 一半保留于2C下,另一半置25C下。 间隔一定时间后各取 出0.5ml通过sephadex G-25去游离FITC,由上计算出5mg家兔IgG结合的FITC量。 2.Chadwick氏法 Ph8.0磷酸盐缓冲盐水、1%硫柳汞、离心机及离心管、三角烧瓶(25ml)、冰槽、无菌吸管及毛细滴管、烧杯(500ml)、透析袋、棉线、玻棒等。 (2)方法及步骤: 1抗体准备: 用o〜4C pH8.0磷酸盐缓冲盐水将球蛋白溶液稀释至浓度为30〜40mg/ml,置入三角烧瓶内,放于冰槽中。 2荧光色素准备: 按每毫克蛋白加入荧光素0.01mg计算,称取所需之荧光素量,用3%重碳酸钠水溶液溶解。 3将准备之抗体与荧光色素溶液等量混合,充分搅匀,在0〜4C,冰箱中结合18〜24h。 4透析和柱层析: 方法同Marshall 氏法。 3.改良法(1963年)根据Marshall 氏法取高价的抗人球蛋白兔免疫血清,分离球蛋白,用盐水(0.15mol/L NaCl)及缓冲液(0.15mol/L NaHC03-la2CO3PH9.0)稀释使每毫升内含蛋白10mg,缓冲液为总量的10%,降温至4°C,加入异硫 氰酸盐荧光素,(蛋白: 荧光素=50〜80mg: 1mg),在0〜4C下电磁搅拌12〜14h。 然后用半饱和和硫酸铵将标记球蛋白沉淀分离,除去未结合的荧光素,再用缓冲盐水透析,除去硫酸铵(用 0.01%, Nessler氏试剂测验至隔夜透析之盐水无氨离子及荧光色素为止)。 将制备好的荧光抗体加叠氮钠 分装在1ml安瓿中,或冻干,保存于冰箱中(4C)可以用半年以上,-20C保存可达2年以上。 【附一】0.01mol/LpH7.2PBS配法: NaCl 18g、Na2HPO41.5g、KH2PO4 0.2g,溶于2000ml蒸馏水中,校定pH至7.2。 【附
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- 荧光 抗体 技术