引物设计条黄金法则 十.docx
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引物设计条黄金法则 十.docx
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引物设计条黄金法则十
引物设计条黄金法则十
1质粒扩增
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质粒扩增是大量获取质粒的一种化学生物学方法,通常包括将细菌质粒转化到大肠杆菌中,然后从大肠杆菌中收获大量质粒的过程。
2步骤
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细菌铺板:
让细菌在LB培养基上生长,培养基上为了防止杂菌生长,会加入抗生素,而含有目标质粒的细菌带有抗生素的抗性,能够正常生长,从而保证板子上长出来的会是目标菌落。
挑选菌落:
从LB培养基上挑选菌落备用
细菌培养():
将挑好的菌落放到大肠杆菌培养液当中,并于37摄氏度培养箱中以250rpm摇动8~12h,使大肠杆菌繁殖
裂解抽提:
采用细胞裂解的方式,从含目标质粒的大肠杆菌菌液中将质粒提取出来
3用途介绍
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这一实验主要用于获取较多的质粒,质粒扩增需要的源头质粒量非常小,1微克的质粒都已经能够满足扩增的需要,这也使得质粒的使用和赠送变得非常容易。
质粒的用途往往是用于转染细胞,通过转染的方式让细胞表达质粒中携带的基因,从而研究该基因对应蛋白的性能。
在基础细胞生物学研究中起着非常重要的作用。
PCR引物设计的11条黄金法则
2008-08-1908:
12:
52|分类:
分子生物学知识|举报|字号订阅
1.引物最好在模板cDNA的保守区内设计。
DNA序列的保守区是通过物种间相似序列的比较确定的。
在NCBI上搜索不同物种的同一基因,通过序列分析软件(比如DNAman)比对(Alignment),各基因相同的序列就是该基因的保守区。
2.引物长度一般在15~30碱基之间。
引物长度(primerlength)常用的是18-27bp,但不应大于38,因为过长会导致其延伸温度大于74℃,不适于TaqDNA聚合酶进行反应。
3.引物GC含量在40%~60%之间,Tm值最好接近72℃。
GC含量(composition)过高或过低都不利于引发反应。
上下游引物的GC含量不能相差太大。
另外,上下游引物的Tm值(meltingtemperature)是寡核苷酸的解链温度,即在一定盐浓度条件下,50%寡核苷酸双链解链的温度。
有效启动温度,一般高于Tm值5~10℃。
若按公式Tm=4(G+C)+2(A+T)估计引物的Tm值,则有效引物的Tm为55~80℃,其Tm值最好接近72℃以使复性条件最佳。
4.引物3′端要避开密码子的第3位。
如扩增编码区域,引物3′端不要终止于密码子的第3位,因密码子的第3位易发生简并,会影响扩增的特异性与效率。
5.引物3′端不能选择A,最好选择T。
引物3′端错配时,不同碱基引发效率存在着很大的差异,当末位的碱基为A时,即使在错配的情况下,也能有引发链的合成,而当末位链为T时,错配的引发效率大大降低,G、C错配的引发效率介于A、T之间,所以3′端最好选择T。
6.碱基要随机分
布。
引物序列在模板内应当没有相似性较高,尤其是3’端相似性较高的序列,否则容易导致错误引发(Falsepriming)。
降低引物与模板相似性的一种方法是,引物中四种碱基的分布最好是随机的,不要有聚嘌呤或聚嘧啶的存在。
尤其3′端不应超过3个连续的G或C,因这样会使引物在GC富集序列区错误引发。
7.引物自身及引物之间不应存在互补序列。
引物自身不应存在互补序列,否则引物自身会折叠成发夹结构(Hairpin)使引物本身复性。
这种二级结构会因空间位阻而影响引物与模板的复性结合。
引物自身不能有连续4个碱基的互补。
两引物之间也不应具有互补性,尤其应避免3′端的互补重叠以防止引物二聚体(Dimer与Crossdimer)的形成。
引物之间不能有连续4个碱基的互补。
引物二聚体及发夹结构如果不可避免的话,应尽量使其△G值不要过高(应小于4.5kcal/mol)。
否则易导致产生引物二聚体带,并且降低引物有效浓度而使PCR反应不能正常进行。
8.引物5′端和中间△G值应该相对较高,而3′端△G值较低。
△G值是指DNA双链形成所需的自由能,它反映了双链结构内部碱基对的相对稳定性,△G值越大,则双链越稳定。
应当选用5′端和中间△G值相对较高,而3′端△G值较低(绝对值不超过9)的引物。
引物3′端的△G值过高,容易在错配位点形成双链结构并引发DNA聚合反应。
(不同位置的△G值可以用Oligo6软件进行分析)
9.引物的5′端可以修饰,而3′端不可修饰。
引物的5′端决定着PCR产物的长度,它对扩增特异性影响不大。
因此,可以被修饰而不影响扩增的特异性。
引物5′端修饰包括:
加酶切位点;标记生物素、荧光、地高辛、Eu3+等;引入蛋白质结合DNA序列;引入点突变、插入突变、缺失突变序列;引入启动子序列等。
引物的延伸是从3′端开始的,不能进行任何修饰。
3′端也不能有形成任何二级结构可能。
10.扩增产物的单链不能形成二级结构。
某些引物无效的主要原因是扩增产物单链二级结构的影响,选择扩增片段时最好避开二级结构区域。
用有关软件(比如RNAstructure)可以预测估计mRNA的稳定二级结构,有助于选择模板。
实验表明,待扩区域自由能(△G°)小于58.6lkJ/mol时,扩增往往不能成功。
若不能避开这一区域时,用7-deaza-2′-脱氧GTP取代dGTP对扩增的成功是有帮助的。
11.引物应具有特异性。
引物设计完成以后,应对其进行BLAST检测。
如果与其它基因不具有互补性,就可以进行下一步的实验了。
值得一提的是,各种模板的引物设计难度不一。
有的模板本身条件比较困难,例如GC含量偏高
或偏低,导致找不到各种指标都十分合适的引物;用作克隆目的的PCR,因为产物序列相对固定,引物设计的选择自由度较低。
在这种情况只能退而求其次,尽量去满足条件。
做RealTime时,用于SYBRGreenI法时的一对引物与一般PCR的引物,在引物设计上所要求的参数是不同的。
引物设计的要求:
1)避免重复碱基,尤其是G.
2)Tm=58-60度。
3)GC=30-80%.
4)3'端最后5个碱基内不能有多于2个的G或C.
5)正向引物与探针离得越近越好,但不能重叠。
6)PCR扩增产物长度:
引物的产物大小不要太大,一般在80-250bp之间都可;80~150bp最为合适(可以延长至300bp)。
7)引物的退火温度要高,一般要在60度以上;
要特别注意避免引物二聚体和非特异性扩增的存在。
而且引物设计时应该考虑到引物要有不受基因组DNA污染影响的能力,即引物应该跨外显子,最好是引物能跨外显子的接头区,这样可以更有效的不受基因组DNA污染的影响。
至于设计软件,PRIMER3,PRIMER5,PRIMEREXPRESS都应该可以的。
做染料法最关键的就是寻找到合适的引物和做污染的预防工作。
对于引物,你要有从一大堆引物中挑出一两个能用的引物的思想准备---寻找合适的引物非常不容易。
关于BLAST的作用应该是通过比对,发现你所设计的这个引物,在已经发现并在GENEBANK中公开的不物种基因序列当中,除了和你的目标基因之外,还有没有和其他物种或其他序列当中存在相同的序列,如和你的目标序列之外的序列相同的序列,则可能扩出其他序列的产物,那么这个引物的特异性就很差,从而不能用。
关于引物设计的体会
2008-08-1908:
11:
39|分类:
分子生物学知识|举报|字号订阅
第一贴
记得当时搞引物设计的时候,还是我的大师兄领入门的,在此谢过了。
师兄教了一些基本原则后,就放羊了。
接着自己捣鼓来捣鼓去,在导师的实验室内设计了十几条引物,用起来还蛮好的,逐渐赚了点名气。
后来,就和上海鼎安合作了,帮别人设计引物在他们公司订购引物,拿点回扣。
别人拿给我设计的引物,都是很头痛。
因为客户往往都是自己捣鼓一下,不行了才到我这。
到现在已经成功设计了四五十对引物了。
不过至今money颗粒无收,就不了了之,主要是客户拖欠的问题,不过不后悔,毕竟是不错的经历啊。
所以,也算是有点个人观点,和大家分享,不对的地方请指正。
我用Primer5.0搜索引物、Oligo6.0评估引物,这是根据各自所长定的。
但有个朋友,他就只用Oligo,说设计的引物也还可以。
Primer5.0搜索引物:
1.PrimerLength我常设置在18-30bp,短了特异性不好,长了没有必
要。
当然有特殊要求的除外,如加个酶切位点什么的。
2.PCRProductsize最好是100-500bp之间,小于100bp的PCR产物琼脂糖凝胶电泳出来,条带很模糊,不好看。
至于上限倒也不必要求苛刻。
3.Searchparameters还是选Manual吧,Searchstringency应选High,GC含量一般是40-60%。
其它参数默认就可以了。
4.搜索出来的引物,按Rating排序,逐个送Oligo软件里评估。
当然,搜索出的引物,其扩增产物很短,你可以不选择它,或是引物3端≥2个A或T,或引物内部连续的G或C太多,或引物3端≥2个G或C,这样的引物应作为次选,没得选了就选它。
对于这样的引物,如果其它各项指标还可以,我喜欢在引物末端去掉一个不满意的或加上一个碱基,看看引物的评估参数有没有变好点。
Oligo6.0评估引物:
1.在analyze里,DuplexFormation不管是上游引物、下游引物还是上下游引物之间,Themoststable3’-Dimer绝对值应小于4.5kcal/mol,ThemoststableDimeroverall绝对值一般应小于多少kcal/mol跟PCR退火温度有关,我几次实验感觉在PCR退火温度在65°的时候,ThemoststableDimeroverall6.7kcal/mol没有问题。
2.HairpinFormation根据黄金法则
3.Falseprimingsites:
Primer的primingefficiency应该是错配地方的4倍左右,更多当然更好。
4.在PCR栏,个人感觉其所显示的optimalannealingtemperature数值值得参考。
在PCR摸索条件的时候,退火温度为其数值加减2的范围就可以了。
5.Internalstability很重要:
我们希望引物的内部稳定性是中间高、两边低的弧形,最起码保证3端不要过于稳定。
下图1引物3端过于稳定,很容易导致不适当扩增。
△G参照黄金法则,这其实很好理解:
把一滴水放到大海里,这滴水就会不停的扩散分布,扩散的越厉害越稳定,所以△G绝对值越大结构越稳定。
最后说一句,敢于尝试就会成功。
第二贴
--科室工作很多,小医生了,没有办法,所以肯怕不能满足很多战友的要求(qq聊或帮助设计),在此表示抱歉。
就楼上的问题我试着回答一下,不一定正确,供参考吧。
--1、两个评价系统不一样,个人感觉oligo评价引物好点,primer出来的引物,我一般按效率排序,再结合退火温度和引物长度,选择引物到oligo测试。
这是初步的选择,其实引物到了oligo里,退火温度也不一样。
--2、3端的二聚体应该避免,这个要看你的退火温度决定,一个50°的退火温度肯定和65°对二聚体的影响不一样了,一般来讲尽量控制在-4.5kcal/mol以下(个人观点,很多东西真得还是需要自己摸索)。
--3、个人感觉3端有A无A影响不大,3端有T的没有经验。
有T是不是一定不行,个人感觉不见得。
软件是评估,法
则也不是没有例外,不是1+1=2那么确定。
--4、错配和二聚体谁轻谁重,个人觉得“到致命的程度”谁都重要,我也说不好。
我设计的时候,尽量两个都不得罪。
--5、GC含量并非不重要,它直接影响引物各端稳定性,3端来两个G或C,稳定性就上去了,粘在模板上很牢。
所以我设计的时候,尽量避免这样的情况出现。
谈一下我学这个引物设计的过程吧:
入门--前面我说过是我的大师兄把我领进门的,之后我就自己捣鼓。
一开始严格按照引物设计的黄金法则来,primer搜出来的引物oligo评估,我就这样一条引物一条引物地反复评估,不厌其烦,到处查阅资料,一做就是几个小时,幸运的是捣鼓出来一两条符合标准的引物。
提高--有了成功的经验后,就继续做,当时我们实验室要定很多引物,我就有了练手的素材,这也很重要--什么东西不是练出来?
!
设计多了,问题也多了。
有些引物按黄金法则来,行不通了,怎么办?
1、我就把引物3端或5端延长或缩短一个或几个碱基,再反复评估
2、有些引物还不行,我就把5端突变一个碱基,再反复评估
3、再不行,我就放宽条件。
放宽到什么样可以,不好说,自己摸索。
有的一对引物,其中一条错配很厉害,而另一条很可以,在没有其它选择的情况下为什么不可以。
有的人担心,这不一定跑的出来啊。
对自己要有信心啊,原因有二:
1.自己的引物谁有功夫帮你设计?
所以啊,当时我就被“赶鸭子上架了”,反反复复搜索评估的基础上,出来的应该是目前最好的;2、还有,我经常看国外文章的引物,有的评估起来表面上差的要命,人家照用,结果还不是出来了。
我就分析这样的引物,得出经验,胆子也大了。
当然失败肯定是有一两次的。
当然,有人说我就设计那么一条引物,输不起。
那只好说Sorry了!
总之,我的经验就是:
立即上手,遇到问题再解决问题,不厌其烦,不就是个软件嘛,还征服不了?
!
第三贴
个人觉得引物很有必要在NCBI上BLAST一下,看看非特异性引发如何!
楼主说得很对,设计引物的最后一步就是验证引物的特异性,我有一贴就是说引物验证的,在此不赘述,见下:
鉴于BLAST界面已改变,本人更新了依医战友的“图解BLAST引物验证教程”
注:
个人感觉一对引物设计出来,即使不做blast,非特异性引发的可能性也不是很大,当然这一步在设计引物里是不可省略的。
怎样增加blast检测中非特异性引发的可能性,我想也许可以增加expect值(见教程参数设置),给它设置成2000、3000、5000.....。
老版本,原来有个short片断blast的,可以用来验证引物,里面Ex
pect(期望值)默认是1000,我试过5000,没有看出有什么可观的改变,所以1000够了。
我猜想,Expect值增大,"非特异性引发的可能性"能够更好地被检测出,感兴趣的战友可以试试。
申明:
个人意见,或对或错,有兴趣的战友可以自己测试一下
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