实验动物模型的制备.docx
- 文档编号:4507440
- 上传时间:2022-12-01
- 格式:DOCX
- 页数:13
- 大小:73.67KB
实验动物模型的制备.docx
《实验动物模型的制备.docx》由会员分享,可在线阅读,更多相关《实验动物模型的制备.docx(13页珍藏版)》请在冰豆网上搜索。
实验动物模型的制备
病理生理学实习指导
一、缺氧模型的实验性复制
㈠目的与原理
同时对复
发展和转归的规
通过给动物低氧环境,影响Hb的带氧能力及使组织不能利用氧等方法,复制不同类型缺氧模型,经呼吸、机能状态、皮肤粘膜颜色等指标,显示了其不同症状与特征,制模型的方法及原理又有大概的了解,有利于深入和研究各缺氧症的发生、
律。
低张性缺氧一氧化碳中毒氰化钾中毒
1低氧性缺氧
⑴将小白鼠至于250ml广口瓶(内装钠石灰吸收二氧化碳)中观察上述指标。
⑵:
将瓶塞紧,同时记录时间,每5min重复观察上述指标一次(如有变化则随时记录)
直到动物死亡为止。
2•—氧化碳中毒性缺氧
⑴如图8-3-1装好一氧化碳发生装置。
⑵)将小白鼠一只放入瓶中,观察上述指标。
⑶取甲酸3ml放入试管内,加入浓硫酸2ml,塞紧。
如气泡产生较少,可用酒精灯加热,加速一氧化碳的产生(但不可过热以至液体连续沸腾,因一氧化碳产生过快,动物迅速死亡,血液颜色改变不明显)。
⑷在整个过程中,注意观察上述指标。
(注):
一氧化碳产生原理:
H2SO4
HCOOHCOT+H2O
△
3•氰化钾中毒性缺氧
⑴称小白鼠体重,观察上述指标,预先准备1%亚硝酸钠及10%硫代硫酸钠各10mlKg-1,以备急救用。
图8-3-1一氧化碳发生装置
⑵腹腔注射0.125%氰化钾9mlKg-1,立即观察上述指标。
⑶待小白鼠出现共济失调或竖尾时,将准备好的急救药注入腹腔。
⑷重复步骤⑵,不予抢救。
⑸⑸将三种缺氧实验动物尸体打开腹腔,比较血液或肝脏颜色。
附:
硫代硫酸钠(Na2S2O3)及亚硝酸钠(NaNO2)急救机制
Na2S2O3是一种氧化剂,能使血红蛋白氧化成高铁血红蛋白,后者与氰酸根结合成氰化高铁血红蛋白,使细胞色素氧化酶解脱出来,从而恢复细胞的生物氧化功能。
Na2S2O3在体内S与HCN结合变成无毒性的HCNS由肾脏排出。
Na2S2O3+CO2+H2OCO3+NaHSO3+S
HCN+S硫氰酸酶(肝)HCNS
㈤注意事项
CO
吸取硫酸与甲酸时,注意不要溅到衣服或皮肤上。
CO中毒实验完毕后,及时处理
发生器内的残余物。
㈥思考题
注射亚硝酸盐,所观察指标有改变,为什么?
二、呼吸功能衰竭
㈠目的与原理
本实验通过复制呼吸功能衰竭的病理模型,观察血气和呼吸的变化,并分析其机制。
呼吸功能包括外呼吸、内呼吸和气体运输功能。
呼吸衰竭指的是由于外呼吸功能严重障碍,以致动脉血氧分压低于正常范围的病理过程。
肺通气障碍或/和肺换气功能障碍都可
导致呼吸功能衰竭。
㈡实验对象健康成年兔。
㈢器材与药品
兔手术台,哺乳动物手术器械一套,连接三通的动脉插管,二道生理记录仪,张力换能器,血气分析仪,输液装置。
20%氨基甲酸乙酯溶液,1%肝素生理盐水,生理盐水,10-3肾上腺素。
㈣步骤与观察
1•麻醉与固定取兔一只,称重,从耳缘静脉按5mlkg-1注射20%氨基甲酸乙酯溶液。
麻醉后将兔仰卧位固定于兔台上。
2•颈部手术剪去颈部被毛,切开皮肤,分离皮下组织,作气管插管,再分离左侧颈总动脉,作动脉插管(插管内充满肝素生理盐水)。
分离右侧颈外静脉,作静脉插管,并与
输液装置相连,缓慢输入生理盐水。
3•血气分析用2ml注射器先抽取少许肝素,润湿注射器壁后推出,使注射器死腔和
针头内充满肝素溶液,然后略松支动脉夹放血注许,冲去动脉插管内的肝素生理盐水,再用
肝素处理过的注射器与动脉插管相连,让血液自动流入注射器内(切勿进入气泡),取血1
ml,采血后迅速套上带软木塞的针头,作血气分析。
4•呼吸运动的描记将张力换能器上的挂钩钩在兔剑突部位的皮肤上,调节挂钩与换能
器敏感梁之间的牵引线,使张力适中,且牵引线须垂直。
将换能器与二道生理记录仪连接好。
二道生理记录仪的—寸间常数I置于DC,―滤波置于10Hz,灵敏度5mV/cm,走纸速度1mm/s。
描记一段正常呼吸曲线。
5•复制窒息用弹簧夹将气管插管上所套橡皮管完全夹住,使动物处于完全窒息状态
30s,取动脉血作血气分析并观察呼吸变化。
立即放开弹簧夹,等10min,待动物恢复正常。
6.复制气胸于兔右胸第4~5肋间插入一16号针头造成右侧气胸,5min~10min时取动
脉血作血气分析,同时观察呼吸变化。
用50ml注射器将胸腔内空气抽尽,拔出针头,等10min~20min,待动物呼吸恢复正常。
7•复制肺水肿从颈外静脉快速(180滴~200滴/min)输入生理盐水(100mlkg-1),滴注接近完毕时,立即向输液瓶内加入0.1%肾上腺素0.9mlkg-1,输完全部液体,观察呼吸的变化,并作血气分析。
动物出现明显的血气变化及呼吸变化后,用止血钳夹住气管,处死动物,打开胸腔,在气管分叉处结扎气管以防止水肿液流出,在结扎处以上切断气管,小心将心脏及其血管分
离,取出肺脏后用滤纸吸净肺表面,称重,计算肺系数。
正常肺系数为4~5。
肺系数=
肺重!
量(kg))
观察肺脏体积、颜色的改变,并切开肺脏,观察有无泡沫样的
液体流出。
㈤注意事项
1•取动脉血切忌与空气接触,如针管内有小气泡要立即排除。
2•复制气胸后一定将胸腔内空气完全抽出。
3•取肺脏时应避免损伤肺组织,并尽量减少对肺组织的挤压。
㈥思考题
•实验中复制肺水肿的机制是什么?
•实验中由气管插管中流出大量液体,而肺系数值增大并不明显应考虑哪些因素?
附1:
实验性肺水肿的其它复制方法
•抬高兔台头端,用2ml注射器吸取10%葡萄糖溶液1ml~2ml,将针头插入缺管插管分叉处,缓慢注入气管,造成渗透性肺水肿,5min~10min后放平兔台,取动脉血作血气分析,并观察呼吸的变化。
2•从耳缘静脉缓慢注入液体石蜡1ml或油酸0.06ml~0.08ml(用前经水浴加热至37C左
右),观察呼吸的变化,于注射后20min和40min时分别取血作血气分析。
三、急性右心衰竭病理模型制备
㈠目的与原理本实验要求掌握急性右心衰竭模型的制备方法。
观察复制过程中机体出现的表现,理解其发生机制。
由耳缘静脉缓慢注入栓塞剂,经静脉回流至肺脏,并栓塞在肺循环,引起肺动脉高压,即右心室后负荷增加。
如再输入大量生理盐水,使回心血量大大增加,则在后负荷增加的基础上,又增加了前负荷,右心功能则急剧衰竭,症状加重,甚至有腹水,直至动物死亡。
㈡实验对象健康成年兔,2.5kg以上。
㈢器材与药品兔手术台,哺乳动物手术器械,中心静脉压测定装置,呼吸描记装置,心室插管,听诊
器,注射器(20ml,5ml,1ml),二道生理记录仪与电刺激器(或MS302-PC型生物信号处理系统)。
20%氨基甲酸乙酯溶液,生理盐水,液体石蜡,2.5%尼可刹米,肝素溶液。
㈣步骤与观察
二道生理记录仪
1.兔称重、麻醉固定,二道生理记录仪参数见附1。
2•颈部剪毛,作正中切口,钝性分离颈部组织,作左侧颈总动脉插管(连接动脉压换能器)与气管插管(连接玛俐氏气鼓,并调节好玛俐氏气鼓与张力换能器的距离)。
3.右侧颈外静脉插入导管至右心房或右心房口(5cm左右)。
通过输液管连上输液瓶和中心静脉压检压计,先使导管与输液瓶相通,保持静脉插管通畅。
或有多导仪实验组用经右侧颈外静脉插入心室插管至右心室(7cm左右),插管的同时开动多导仪描记压力曲线以观察是否插入了右心室,。
此组输液从耳缘静脉处。
4•观察记录各项生理指标、心率、心音强度、肺部听诊(有无异常呼吸音)、动脉血压、
中心静脉压(见附2)或右心室内压(包括收缩与舒张期压力)、循环时间(由耳缘静脉注射尼可刹米0.2mlKg-1,作标记,然后测量从标记到呼吸加深加快这段距离,根据走纸速度计算时间,即循环时间。
5•用2ml注射器吸取液体石蜡,按0.5mlKg-1由耳缘静脉缓慢注射,同时密切观察中心静脉压(或右心室内压)、血压的变化。
如前者升高或后者下降则终止注射。
6•复测记录4各项指标。
7.待血压、呼吸稳定后,以60滴/min的速度输入生理盐水,直至血压降到8kPa以下。
8•复测记录4各项指标。
9•动物死亡后,剖开胸、腹腔(注意不要损伤脏器与大血管),观察有无胸、腹水、肠
系膜血管充盈与脏器水肿。
㈤注意事项
1.液体石蜡注入速度要慢,否则易引起急性肺栓塞,很快死亡。
2.外加因素或试剂时均要做标记。
3.输入生理盐水过程中可适当加注些液体石蜡。
4.测量动脉血压、中心静脉压每次要观察与记录实验因素前与实验因素之后的数值。
㈥思考题本右心衰竭模型机体可出现哪几型缺氧表现?
其机制是什么?
四、失血性休克
㈠实验目的
1.复制兔失血性休克模型。
2.观察兔在失血性休克时的表现及微循环变化。
3.抢救失血性休克。
4.探讨失血性休克的发生机制。
㈡实验对象
健康成年兔,体重2.5〜3.0kg。
㈢器材与药品
手术器械(手术刀,止血钳,眼科剪,眼科镊,手术镊等),输血输液装置,中心静脉压测试装置,微循环观察装置,气管插管,动脉套管,静脉导管,输尿管导管,记滴器,温度计,注射器(1ml,10ml,50ml)。
20%氨基甲酸乙酯溶液,生理盐水,微循环灌流液,0.3%肝素溶液。
㈣步骤与观察
1•取兔一只,称重后耳缘静脉麻醉。
2•将麻醉的兔仰卧位固定在兔台上,行气管插管术、左侧颈总动脉和右侧颈外静脉插管术。
3•经耳缘静脉注入0.3%肝素溶液(2mlkg-1)
4•将气管插管与呼吸描记装置连接。
5•将动脉插管接上三通管,一侧与血压描记装置连接描记血压,另一侧连上放有肝素(约
0.1g)的50ml注射器,并暂时夹闭导管,以备放血用。
6.将颈外静脉插管连接水减压计的细塑料导管(导管内充满含肝素生理盐水)。
导管的
外端用三通管连上输液瓶和水减压计,用以测中心静脉压和输液。
在测压前,阻断减压计侧管,使导管与输液瓶相通,缓慢输入生理盐水(5滴~10滴/min),保持静脉通畅。
7.行输尿管插管术。
用记滴器记录每分钟排尿的滴数。
8.在右侧腹直肌外缘作长6cm纵行的中腹部切口,钝性分离肌肉,打开腹腔后,推开大网膜,找出一段游离度较大的小肠肠袢,轻轻从腹腔拉出,放置在微循环恒温灌流盒内,用显微镜观察肠系膜的微循环。
9.放血前观察动物的各项生理指标,包括一般情况、皮肤粘膜颜色、肛温、血压、呼吸、
心率(快放记录纸)、中心静脉压、尿量、肠系膜微循环等,并作记录。
附:
中心静脉压的测量方法
⑴从颈外静脉插入静脉导管,应插到上腔静脉入右心房入口处(相当于锁骨下1cm~2cm),插入导管长度为5cm~8cm,并经三通管与输瓶和水检计相连。
⑵)测压前使输液瓶内生理盐水灌满水检压计,检压计"0"点刻度与心脏水平一致。
⑶测压时应阻断与输液瓶相通的侧管,使水检压计与静脉导管相通,观察水检压计内液面逐渐下降到某一刻度时不再下降,此时液面随呼吸上下波动,读取此时的液面刻度,即中心静脉压。
⑷测完压力后,再使检压计内充满生理盐水,然后阻断与检压计相通的侧管,使输液瓶与静脉道管相通,维持慢速输液(5滴~10滴/min),维持道管通畅。
附:
肠系膜微循环的观察
⑴向恒温水浴灌流盒内注入38C的灌流液(台氏液加入1%明胶配成)。
⑵选择一段游离度大的小肠袢,从腹腔内拉出后放入恒温灌流盒的水浴槽内,使肠系膜均匀地平铺在有机玻璃凸形观察环上,压上固定板,调整灌流盒的液面,使液面刚覆盖过肠系膜,用透射光源或侧射光源在生物显微镜下观察。
⑶在镜下选好视野,分清肠系膜各种血管,包括动脉、静脉和毛细血管(仅能通过一个红细胞的血管)。
观察血流速度,血管口径(可用测微器测定)及视野下某一固定区域内毛细血管管袢数目,找出标记血管,以便固定视野作动态的前后比较,也可用显微镜电视进行动态观察。
10.打开颈总动脉插管与注射器相连的侧管,使血液从颈总动脉流入注射器内,一直放血至血压降到5.3kPa(40mmHg)时,调节注射期内放出的血量,使血压稳定在低水平上。
11.使血压维持在5.3kPa15~25min,观察注射器中血量的增减,失血期间动物各项生理指标(同步骤9)改变,以及肠系膜微循环改变。
12.停止放血,将注射器内的血液注入输液瓶内,快速从静脉输回原血和失血量等量的生理盐水(50滴/min)进行抢救,输血、输液再复查动物的一般情况及各项生理指标和微循环是否恢复正常。
可根据休克的病理生理改变,自行设计抢救方案,再观察抢救效果。
㈤注意事项
1.麻醉要深浅适度,以免因疼痛刺激导致神经源性休克。
2.尽量减少手术出血。
3.牵拉肠袢要轻,以免引起创伤性休克。
4.动脉套管和注射器中,操作前应加一定量的肝素。
静脉导管一经插入,应立即缓慢滴注生理盐水。
5.本实验因手术较多,宜几个人分工协作,以保证实验成功率。
㈥思考题
1.兔失血性休克模型怎样制备?
2.失血性休克时兔有哪些表现?
微循环有什么变化?
3.失血性休克发生主要机制是什么?
五、肝性脑病
【实验目的】
1、掌握氨中毒复制肝性脑病动物模型的方法。
2、探讨氨在肝性脑病发生机制中的作用。
【实验原理】肝性脑病是继发于严重肝病的神经精神综合征。
有关肝性脑病的发病机制有很多学说,其中之一是氨中毒学说。
该学说认为由于肝细胞严重受损,使血氨生成增多而清除不足时,可使血氨增高。
增多的血氨通过血脑屏障进入脑组织,通过干扰脑的能量代谢,使脑内神经递质发生改变以及抑制神经细胞膜等作用,引起脑的功能障碍,病人从而出现相应的症状和体征。
本实验通过肝大部分结扎的方法,人为地阻断肝脏的血流,造成肝细胞功能急性损伤,在此基础上再经消化道输注复方氯化铵溶液,使血氨水平明显升高,从而出现抽搐、昏迷等类似肝性脑病的临床症状。
【实验对象】家兔
【器械与药品】
常规手术器械,兔固定台,50ml注射器,细导尿管,棉线
1%普鲁卡因,复方氯化铵溶液(含2.5%氯化铵,1.5%碳酸氢钠,5%葡萄糖),生理盐水
【步骤与方法】
1、取家兔一只,称重后仰卧位固定在兔台上,剪去腹部正中的被毛,沿上腹部中线用1%普鲁卡因做局部浸润麻醉。
2、自胸骨剑突下,沿腹正中线作一长约6~8cm左右的切口,分层局麻,钝性分离皮下组织,沿腹白线剪开腹壁,打开腹腔,暴露肝脏。
用左手指腹向下轻压肝脏膈面,可见在肝与膈肌之间有一薄而透明、呈三角形的镰状韧带,小心将其剪断,以增加肝脏的游离度。
观察正常的肝脏颜色,探查家兔肝脏的叶数。
3、急性肝功能不全动物模型的制备——肝大部结扎:
棉线用生理盐水浸湿后,沿肝左外叶、左中叶、右中叶和方形叶之根部围绕一周并结扎,以阻断大部分肝血流,造成家兔急性肝功能不全。
由于右外叶和尾状叶之间门脉血管为独立分支,不会同时被结扎,因而得以保留。
待上述肝叶变成暗褐色后用眼科剪在已结扎的肝叶上剪一小口,如无明显渗血,说明肝大部结扎成功,否则就要重新结扎。
4、十二指肠插管:
沿胃幽门向下找出一段十二指肠,在肠管下方血管稀疏处,用止血钳穿透肠系膜并穿两根线备用。
用眼科剪在肠壁上剪一小口,将细导尿管顺远胃端方向插入肠腔约6cm,直接连肠管一起结扎固定,防止插管脱落。
近胃
端也应用线结扎,以防胃内容物流出。
然后将肠送回腹腔内,细导尿管另一端置于腹腔之外,用止血钳夹住腹壁,关闭腹腔。
5、观察、记录家兔的一般情况、呼吸、角膜反射、四肢肌张力及对刺激(敲打兔台或用针刺)的反应。
6、制备肝性脑病动物模型:
用注射器每间隔5分钟向十二指肠插管注入复方氯化铵溶液
5ml,仔细观察家兔呼吸、肌张力等指标的变化,当出现全身性抽搐时停止注射。
停止注射。
记录出现痉挛的时间和所灌注复方氯化铵溶液总量,并计算每公斤体重的用量(kg/ml)。
7、对照组:
另取家兔一只,称重后固定于兔台上,腹部正中切口,打开腹腔,行肝大部结扎及十二指肠插管,术后每隔5分钟向十二指肠内注入5ml生理盐水,观察动物有无异常,并与注入复方氯化铵溶液的实验家兔进行比较分析。
【注意事项】
1、游离肝脏和剪破镰状韧带的动作应准确、轻柔,以免肝叶破裂出血和损伤膈肌造成气胸;
结扎肝叶应尽量靠近根部肝门处,以防拦腰结扎肝叶造成出血;结扎线松紧要适度,过紧可能造成肝叶撕裂而出血,过松达不到阻断血流的目的。
2、十二指肠插管要插入一定深度,必须牢固固定,因家兔并为全身麻醉,以防实验中家兔挣扎或剧烈抽搐时插管滑脱,复方氯化铵溶液漏入腹腔。
3、关闭腹腔前,检查液体注入管道是否通畅,有无渗漏。
(先推注5ml后再关闭腹腔)
4、动物经输入一定量氯化铵后,一般会出现抽搐,但由于动物未做全身麻醉,实验期间可能出现挣扎,误判为抽搐。
故实验中要注意与氨中毒抽搐的鉴别。
【思考题】
1、从肠道注入复方氯化铵溶液为什么可使家兔的血氨升高?
2、灌注复方氯化铵溶液后,家兔的呼吸如何变化?
如何解释这些变化?
3、家兔氨中毒后,发生昏迷的机理是什么?
4、给家兔体内注入复方氯化铵溶液后,家兔出现痉挛的机制是什么?
5、肠道灌注生理盐水的家兔是否出现异常表现?
其实验结果有何意义?
6、为什么本实验注入的是复方氯化铵制剂?
7、你对本实验的实验设计思路、方法与步骤安排及救治原理设计等,有什么更好的想法与建议?
六、高钾血症
【实验目的】
1、掌握家兔高钾血症模型的复制方法;
2、观察高钾血症家兔心电图变化的特征;
3、了解血钾升高后,对心肌细胞的毒性作用;
4、通过实验进一步了解高钾血症产生的原因、机理和抢救措施,并比较各抢救治疗方案的效果。
【实验原理】
血钾浓度升高可对心肌细胞产生毒性作用,干扰正常心肌细胞的电生理活动,引发多种心律失常,尤其是心室纤颤和心跳骤停。
本实验旨在通过静脉给钾,复制高血钾症,通过观测心电图变化,了解高血钾症对心脏的影响。
【实验对象】家兔(雌雄不限)
【器材与药品】20%乌拉坦,生理盐水,5%及10%氯化钾生理盐水溶液,4%碳酸氢
钠溶液,5%氯化钙溶液,30%葡萄糖溶液
婴儿秤,兔手术台,BL—410生物实验系统多媒体,心电针形电极,输液装置一套,手术器械一套,气管插管,5ml、10ml、20ml注射器。
【步骤与方法】
1、称重、麻醉和固定动物家兔称重后,经耳缘静脉缓慢推注20%乌拉坦(5ml/kg))行全
身麻醉,仰卧位固定于兔台上。
2、心电描记:
标II导联导线连接的方法:
在动物四肢远端显露部位分别用金属注射针头刺
入皮下(不能刺入肌肉,以防止肌颤的干扰),进针约2cm。
按右前肢(白),右后肢(黑),左后肢(红)的顺序联接,电极另一端连接计算机的任一通道。
打开BL.410系统,在—输入信号I菜单中相应通道选中―、电II启动实验,描记实验前正常心电图,观察心电波形:
区分P、QRS主波波群以及T波。
观察记录输入氯化钾前的
心电。
观察过程中,做好标记,如:
—正常I—注射5%KCI第一次等,以便于比较分析。
3、颈部手术:
⑴气管切开术;⑵颈外静脉插管术:
缓慢输入生理盐水,(5〜10滴/min),以保持管道通畅
4、高钾血症的复制(耳缘静脉推注法)以lml/min速度经耳缘静脉缓慢推注5%氯化钾溶液
lml/kg,间隔5分钟再推注同等剂量氯化钾共3次。
然后每间隔5min推注10%氯化钾溶
液1ml/kg共3次。
注射氯化钾的过程中,注意观察心电图波形的变化规律。
观察到高血钾的心电图异常改变(高尖T波,P波低平、增宽,QRS波群低压变宽,出现心室扑动或颤动)
后,立即停止注射,并开始实施抢救措施。
5、高钾血症的抢救在滴注氯化钾生理盐水溶液之前,必须选择和准备好抢救药物,包括:
(1)单独用30%葡萄糖溶液静脉缓慢滴注;
(2)4%碳酸氢钠5ml/kg快速静脉滴注,严重者
可缓慢静脉注射;(3)5%氯化钙2ml/kg缓慢静脉推注。
事先选择好耳缘静脉输注通道,在心电图出现典型高血钾改变后立即实施抢救,通过耳缘静脉快速注入抢救药物。
如果10秒内无法输入抢救药物,救治效果欠佳。
实施各项抢救项目,同时观察心电图恢复状态。
6、致死作用观察当心电图基本恢复正常后,迅速打开胸腔,暴露心脏,肉眼直接观察心
脏活动情况。
静脉推注致死剂量的10%氯化钾(3ml/kg),边注射边观察心电波形的改变,
出现室颤或成一直线时停止注射,观察心室纤颤及心脏停搏时的状态。
【实验结果记录】
心电图变化特点
注射前
注入KCI
严重心律失常
抢救
4%NaHC03溶
液
5%CaCl2溶液
30%葡萄糖溶液
10%KCI致死作用观察
【注意事项】
1、动物麻醉深浅要适度,麻醉过深易抑制呼吸,过浅时动物疼痛则易引起肌肉颤动,对心电图记录造成干扰。
2、保持静脉导管的通畅,确保各种液体能及时,准确地输入。
3、针型电极剌入部位要对称,位于皮下,导线避免纵横交错,实验台上的液体要及时擦拭
干净。
由于动物的个体差异,有时T波会融合在ST段中而不呈现正向波,很难观察到典型
的高尖T波,需要更换动物。
若记录心电图时出现干扰信号,应及时找出原因并排出干扰。
4、严格控制推注KCI溶液的浓度、速度,必须缓慢、匀速推注,要随时观察各项指标的变化。
当各项指标急剧变化时,应减慢速度。
如发现动物突然挣扎或呼吸急促,要立即停止注
射。
防止滴入速度太快导致动物突然发生心室纤颤而死亡,动物对注入氯化钾溶液耐受性有
个体差异,有的动物需注入较多的氯化钾才出现异常心电图改变,遇到这种情况时,应适当
调整注入氯化钾的浓度和间隔时间。
5、电极用毕用75%酒精擦净,以保持良好的导电状态。
【讨论思考题】
1、血钾升高会出现哪些心电图变化?
发生机制是什么?
用相关理论加以说明。
2、分析你所选择的药物抢救高钾血症的机制。
它们是否都能降低血钾的浓度?
3、严重高钾血症使心脏停搏在何种状态?
为什么?
- 配套讲稿:
如PPT文件的首页显示word图标,表示该PPT已包含配套word讲稿。双击word图标可打开word文档。
- 特殊限制:
部分文档作品中含有的国旗、国徽等图片,仅作为作品整体效果示例展示,禁止商用。设计者仅对作品中独创性部分享有著作权。
- 关 键 词:
- 实验 动物 模型 制备