二标本采集.docx

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二标本采集

第一章概述

实践证明，为保证临床检验质量，必须做到全过程质量控制,即对实验室检查的全过程进行全面的质量控制和质量管理。

这里包括：

实验前（分析前）、实验中（分析中）和实验后（分析后）三个阶段的质量控制,其中实验前质量控制是全面质量控制的前提。

国内外均有报道,检验结果误差中70%左右来自实验前（分析前）,而且实验前（分析前）误差是仪器、试剂、质控品和标准品等再好也无法解决的。

因此,必须注意做好实验前质量管理。

一、实验前质量控制

（一）患者准备

根据所采标本的类型和所分析的物质而定。

标本采集前患者的状态对检测结果有一定的影响，不同检测项目对标本采集前患者的状态有不同的要求。

许多非疾病因素，如是否空腹、精神状况、体力活动、使用药物等都可能影响检验结果。

因此，在标本采集前，要根据需要对患者做好相应的准备。

一般要求患者处于安静状态；晨起时的精神、体力、情绪等因素的影响较小，是大部分标本采集的最佳时间；如可能，患者最好停服干扰检测的药物；根据项目和标本类别选择相应的容器。

许多检测对饮食、饮水和药物有特殊要求，如：

静脉采血前至少要空腹8小时；血脂测定须禁食12-14h后采血；情绪紧张会使血糖升高；吗啡、可卡因可使淀粉酶（AMY）升高；微生物培养最好在使用抗生素之前；采血样之前按摩前列腺可引起酸性磷酸酶的升高；醛固酮检测要在起床活动前取卧位血，起床后活动2小时取立位血；尿液检查按不同项目分别留取晨尿、随机尿、计时尿；大便潜血检查前要素食，禁食含动物血的食物等。

具体要求后述。

（二）标本采集

1、正确的采集标本是保证检验质量的基础。

要注意以下问题：

（1）避免干扰物污染，特别是定量分析标本；

（2）标本采集部位和方法要正确；

（3）标本标识一定要清晰无误；

（4）无人为的溶血和混浊因素：

如收集标本用力震荡或用玻璃棒及木棍搅拌会导致溶血；餐后采血会出现脂血而致血清、血浆混浊；

（5）合理使用抗凝剂及防腐剂；

（6）收集区温度最好不超过20℃；

（7）微生物检验标本采集严格无菌概念；

（8）标本采集后要尽快送至实验室。

2、标本采集时间

（1）空腹标本：

一般指空腹8h后采集的标本。

清晨空腹血液标本常用于临床生化定量测定，受饮食、体力活动、生理活动等的影响较小，易于发现和观察病理情况，而且重复性较好。

（2）随时或急诊标本：

指无时间限制或无法规定时间而必须采集的标本，被检者一般无法进行准备。

随时或急诊标本主要用于体内代谢比较稳定以及受体内因素干扰少的物质的检查，或者急诊、抢救病人必须做的检查。

（3）指定时间标本：

即指定采集时间的标本，根据不同的检测要求有不同的指定时间，如24h尿蛋白定量、葡萄糖耐量试验、内分泌腺的兴奋或抑制试验、肾脏清除率试验等。

3.采集方法：

具体方法见第二部分内容。

（三）标本储存

标本采集后应尽快送至实验室，若不能及时送检，已采集的标本要按检验规定的贮存条件，如室温、冷藏、冰浴、温浴或防腐贮存，将标本直立置于稳定、干燥、避光、密闭的环境中，避免振摇，以免标本渗漏或溶血影响检测结果。

血液标本采集后应及时分离血清或血浆，否则可发生红细胞与血清之间成分的相互转移，或红细胞中的某些酶分解待测物等，从而影响检验结果。

中心已检标本的保存条件和保存时间明细表请见附录1。

（四）标本运送

必须保证运送后标本所分析的结果与刚采集标本后分析的结果一致。

1、标本运送要注意防止标本外溢、蒸发和污染，用有盖容器采集、运送标本；

2、严格控制温度,如遗传系列检测标本需要置于18-25℃环境运输,不可冷藏和冰冻。

3、运输过程中对于所有感染性物质（包括血液）的溢出物，可采用以下清除程序：

（1）戴好手套。

（2）用布或纸巾覆盖并吸收溢出物。

（3）向布或纸巾上倾倒消毒剂，包括其周围区（通常可用含氯消毒剂）。

（4）使用消毒剂时，从溢出区域的外围开始，朝向中心进行处理。

（5）经约30分钟后，清除这些物质。

如果现场有碎玻璃或其他锐器，则用畚箕或硬质纸板收集并将其存放于防刺穿容器内以待处理。

（6）对溢出区进行清洁和消毒（如有必要，重复第2-5步）。

（7）将受污染的材料置于防漏、防刺穿的废弃物处理容器内。

（8）经成功的消毒后，向主管机构通报溢出事件，并说明已经完成现场清除污染工作。

（五）标本送出及签收

临床工作人员从病人采集标本并将标本从临床运送到实验室及实验室人员接收临床标本，均应按标准化要求进行，并且一定要做到认真核对，包括标本来源、标本属性、检查项目、标本采集和运送是否合乎要求等，标本送出人员和标本接收人员都要做认真的记录并签字存档。

（六）标本处理

1、实验室接收标本后应及时正确地予以处理，否则会影响检测结果的准确性。

2、如取血后未尽快转送或分离血清、血浆，血清与血细胞长时间接触可发生以下变化：

（1）由于血细胞的酵解作用，血糖以每小时5％-15％的速率降低，即使在真空采血管中在较低温度下每小时也会降低1.9％，糖酵解产物乳酸和丙酮酸升高。

（2）由于红细胞膜通透性增加和溶血加重，红细胞内化学成分发生转移和释放，酶活性受影响，血清无机磷、钾、铁、乳酸脱氢酶、天门冬氨酸转移酶、肌酸激酶等升高。

（3）由于酯酶作用，胆固醇酯因分解而减少，游离脂肪酸增加。

（4）酸性磷酸酶测定血标本室温放置1-2h测定结果降低50%。

（5）电解质测定血标本未及时分离血清和血浆，可导致血钾测定结果偏高。

3、实验室接收标本后的处理应注意以下事项：

（1）时间：

实验室接受标本后应尽快给予分类和离心。

①促凝标本采血后5-15min尽早处理；②抗凝标本可采血后立即离心；③非抗凝（无促凝）标本采血30-60min后离心；④抗凝全血标本（全血细胞分析、ESR、TnT等）不需要离心。

（2）温度：

一般标本为室温（最好是22~25℃）放置；冷藏标本（对温度依赖性分析物）应保持2-8℃直到温度控制离心。

（3）采血管放置：

应管口（盖管塞）向上，保持垂直立位放置。

（4）采血管必须封口：

管塞移去后会使血PH改变，影响结果，如可使PH、Ca2+增高，使ACP减低；封口可以减少污染、蒸发、喷溅和溢出等。

（七）已知的和需考虑的生物因素和干扰因素

分析前的可变因素：

1、生物因素：

可引起所检测物质在体内的变化，此种变化与检测方法无关，分为可变的因素和固定的生物因素：

（1）可变的生物因素：

包括营养、禁食、饮酒、体重、肌肉重量、体力活动、姿势、气候、身高、作息规律、治疗药物；

（2）固定的生物因素：

包括性别、年龄、种族和遗传因素。

2、干扰因素：

在收集和分析标本过程中，干扰因素常导致分析结果与被测物真实浓度不符。

将内在干扰因素即机体内自身的因素和外在的干扰因素区别开来。

内在干扰因素主要包括：

（1）溶血、脂血、胆红素血；

（2）内源性物质如抗凝药物、治疗药物及其代谢产物、输注液等；

（3）外源性物质与标本混合在一起，如抗凝剂、残留的洗液、细菌、霉菌。

二、标本采集基本原则

1、申请单填写要点

每个检验项目或组合检验项目送一份标本，每一份标本附一张申请单。

按照检验项目申请单的要求，采集特定的标本，并将标本送到指定的实验室。

因此，检验申请单是实验检查的第一步。

（1）病人身份识别信息：

申请者必需清楚填写病人的姓名、性别、年龄、或其它有效识别身份的编号；

（2）病人的病历信息：

申请者必需清楚填写病人所在临床科室名称、病历号、床号、临床诊断、临床样本、样本的采集日期和时间（年、月、日、时、分）、申请者姓名、申请检验日期；

（3）申请的检验项目：

申请者必需清楚填写检验项目名称，项目名称应规范、准确，特别是申请组套项目时，一定要与本中心《检验目录》的组套内容一致，否则需填写具体单项；

（4）追加检测项目时限：

在样本有效保存期间和检测结果不受影响的情况下，客户可申请追加检测项目，追加申请需填写检验申请单。

可传真和电话委托客服追加检测项目，但事后一周内需补填《标本接收单》；

（5）修改报告单病人全名：

因字迹不清要求修改的由客服直接修改，如果与原申请单上的名字出入很大的要求修改，需要提供医院证明！

（6）有艾迪康专用的申请单（如病理、遗传等检测），请使用专用申请单。

备注:

有关的临床和治疗信息，特别是用药信息是检验师评价结果的必要条件。

药物可能在体外影响分析方法或在体内引起病理变化，因此，要特别注意在申请单上提供此类信息。

2、采集标本前，首先要核对申请单病人基本信是否属实；然后核对收集标本用容器、标识与申请单上信息是否相符合，查对合格后再采集或收集标本。

3、收集足够的标本于适当的容器内封好口后及时送检。

采集静脉血时要正确使用真空采血管取血至刻度，在取下采血管的同时立即将该采血管轻轻颠倒混匀5-8次，使试管内预置的添加剂与血样充分混匀，但不可剧烈摇晃以免造成标本溶血。

4、已采集的标本若不能及时送检，要严格按检验规定的贮存条件暂存。

未按要求采集、储存、运送的标本将被视为不合格标本处理。

5、在标本采集、送检的过程中遇到任何不明或失误之处，请及时与相应检验专业组联系，以避免或减少差错发生。

6、禁止利用患者申请单送检其他人或动物标本。

7、不详之处或新开展项目请预先联系。

三、实验室标本拒收的暂行规定

实验室专业负责人同意并有项目检验人员签字，及时与临床沟通，有下列情况时可考虑标本拒收：

1、标本属性不清、标记错误或无标记、标本标识与申请单标识不符；

2、抗凝剂比例错误；

3、标本收集管使用错误：

（1）ESR、血清D-二聚体应使用枸橼酸钠（黑帽）抗凝管；

（2）血醛固酮应使用肝素（绿帽）抗凝管；

（3）K+、Na+、Ca2+可用非抗凝血，绝对不能使用草酸钾、草酸钠抗凝管；

（4）血NH4+和含氮物质测定用草酸氨抗凝是错误的，应用血清管（红帽）；

（5）全血细胞分析、ABO血型测定必须用EDTA（紫帽）抗凝管。

4、微生物室拒收标本：

（1）储存、运送不当（该冷藏而未冷藏的标本），被污染的微生物标本；

（2）痰、便标本已干；

（3）尿标本未用无菌瓶留取；

（4）厌氧培养标本未按要求取材及送检；

（5）其他无菌部位取材及送检时已被污染的标本。

5、病理实验室拒收标本：

（1）送检标本上无条形码或条形码与病理检查申请单上的不符；

（2）仅有标本而无相应病理标本送检单、仅有送检单而无相应标本或标本瓶内无标本；

（3）送检标本上无病人名字，或送检单与标本病人名字不符合；

（4）标本容器内无固定液、固定不佳导致标本自溶、腐败、干涸；

（5）拒绝接收不完整手术标本（部分标本），以防止未有病变部位（如肿瘤部分缺失）引起误诊；

（6）送检单不规范者（如用处方、便条等填写），病理标本送检单重要项目（如病史、手术所见等）不填写、填写不全或字迹潦草难以辨认者；

（7）标本种类或数量与送检单中所提供的不一致者，或标本其它特点（如体积、形态等）与送检单中的明显不符者；

（8）本中心暂未开展的特殊病理项目。

6、其它各种未按标准留取、送检的标本。

四、异常情况处理流程

1、标本量及性状异常时的处理流程

（1）标本量少，无法按要求完成所有项目的检测，本中心将优先检测24小时报告的项目，敬请谅解。

（2）重度溶血的标本对K、GLU、TP、CK、CK-MB、LDH、HBDH、AST、r-GT、AFU、微量元素等项目的结果影响较大，中心建议重新送检。

2、复查的处理流程

若客户对结果有疑问，请在标本的保存期内提出（详见本册后附录2的已检标本保存期），中心评估后，予以复查。

3、标本补送的处理流程

（1）由于标本量少、标本污染、性状不符合等原因造成无法完成检测，本中心将通知客户补送标本；

（2）客户补送标本时，接收员提供新的条形码以区别于原标本，并在单据上填写“补送”字样；

（3）实验室根据相应信息，安排检测。

4、项目加做的处理流程

（1）如果客户要求加做项目，请联系客服部，客服部通知实验室评估标本量等；

（2）评估合格后，客服部将通知标本接收员填写标本接收单，请客户签字，随当天接收的标本一起运送至中心；

（3）报告时间以项目册上承诺的时间为准。

5、其他

如客户来电要求或申请单注明需要当晚立即报告结果的，请务必提供准确的联络方式，本中心核对信息后进行口头报告，书面报告单按正常程序发送。

第二章检验科标本采集原则及注意事项

一、病人准备

1、血液检查前的准备：

（1）住院病人静脉血标本原则上应清晨空腹抽取。

（2）门诊病人应避免疾走、跑步等剧烈运动，并应静坐半小时以上后再采集标本。

（3）采血前一天忌用烟、酒、茶、咖啡，并应尽可能避免服用任何药物，不能停用的药物应予以注明，如抗生素、激素、维生素及其它影响代谢或干扰测试反应的药物，以便解释结果时参考。

（4）血清脂质或脂蛋白测定应在空腹12-14小时采集血液标本。

（5）为提高对糖尿病筛查和诊断的敏感性，测定早餐后2小时血糖优于空腹血糖。

糖尿病治疗监测和疗效评价，有时须分别测定空腹和餐后血糖。

2、尿液检查前的准备

（1）病人在做尿液检查前，应做到如：

清洁标本采集部位、明确标记；避免月经、阴道分泌物、粪便清洁剂等各种物质的污染；使用合格容器，细菌培养的标本，应使用消毒培养瓶或无菌、有盖的容器。

（2）清洁尿：

包括中段尿、导尿标本或耻骨上穿刺尿。

3、粪便检查前的准备

（1）盛标本的容器应清洁、干燥、有盖，无吸水和渗漏。

细菌学检查，粪便标本应采集于灭菌、有盖的容器内。

（2）一般采集指头大小（约3-5g）的新鲜粪便，盛于清洁、干燥、无吸水性的有盖容器内。

细菌学检验时的粪便标本应收集于无菌容器内。

（3）隐血试验时，应嘱咐患者素食3d后留取标本，禁服VitC及铁剂等药品。

4、有些特殊试验，如外周血微丝蚴检查等，请咨询相关技术人员。

5、所有检查均通知病人并获得病人或家属同意。

二、血液标本采集方法

（一）血液标本的种类和用途

1、静脉采血

静脉血是最常用的血液标本，用于绝大多数临床化学、免疫学和血清学、全血细胞计数和血细胞形态学、血液寄生虫学和病原微生物学检验等。

2、毛细血管采血

毛细血管采血可满足用血量不足200ul的检验，如血型、全血细胞计数（预稀释法）等。

3、动脉采血

用于血气分析等。

（二）采血器材

1、真空采血装置

真空管采血简便、快速、省力，可连续多管采血，免去用注射器的抽吸和转注步骤，可避免或减轻机械性溶血；无血液污染，保持手、工作台面和申请单清洁，预防交叉感染，对工作人员和患者有保护作用；抗凝剂和血液比例固定，有利于保证检验质量。

一次性真空采血管分类表

名称

采血管颜色

添加剂

适用范围

规格（ml）

血常规

紫

EDTA－K2

血常规

2

常规生化

红

巴西呋咜

凝血酶生化

5

凝血四项

蓝

枸缘酸钠

凝血机制

1.8

血沉

黑

枸缘酸钠

血沉

1.28

血液流变

绿

肝素钠

血液流变检查

5

病毒管

粉红色

无脑脊液

胸腹水等杂项

5

注：

注射器和试管塑料器材和玻璃器材，对某些试验有不同的影响。

凝血因子测定以塑料注射器采血为好，玻璃器材可加速血液凝固。

用塑料试管，因血液不易凝固，分离血清时间延长，不利于临床化学、血清学和免疫学的检验。

普通注射器抽血，由于抽吸和转注，容易引起可见和不可见的溶血。

（三）血液标本的采集方法

静脉血标本的采集：

采血部位

通常采用肘部静脉，当肘部静脉不明显时，可采用手背部、手腕部、腋窝处和外踝部静脉，婴幼儿可采用颈外静脉采血。

采血步骤

住院病人：

应携带贴有条形码或已标记好的试管采集病人标本，需核查病人姓名、床号以确保无误。

门诊病人：

1、核查内容包括核查病人姓名是否与条码或申请单一致、病人是否符合采血要求如空腹等。

若符合，贴条码或在申请单和试管上统一编号，采血垫上垫上一张新的卫生纸。

2、按检验项目的要求，准备好相应的采血器材。

3、患者取卧位或坐位，手臂伸直平放在台面垫枕上，充分显露穿刺部位。

4、采血前，采血员须用消毒剂擦手消毒。

5、找好静脉后，先用碘伏棉签由内向外顺时针方向消毒穿刺处皮肤，稍等片刻再用无菌棉签以相同方向擦去碘迹。

在采血部位上方扎上压脉带，嘱患者紧握拳头，使静脉显露。

如静脉仍不明显，可嘱咐患者反复握拳数次，促使静脉怒张。

肥胖患者，上述伸握拳数次后仍不明显，这时必须凭操作者经验，以左手食指在采血部位触摸，发现静脉走向后，试探性穿刺。

6、穿刺采血

6.1使用真空采血针采血

1）打开包装袋，取出采血针并将采血针上的护套取下，手持采血针以15°的角度刺入静脉血管，此时可在连接胶管中见回血，然后将管塞穿刺针（不要将乳胶护套取下）刺入真空采血管，血液会自动流入真空采血管中。

2）采血完后，先把采血针从静脉血管中抽出，用无菌干棉签压住伤口，然后再从真空采血管中拔出管塞穿刺针。

添加有抗凝剂的采血管须轻轻颠倒混匀6-8次，防止血液凝固。

3）再次核对病人姓名和号码，并将一次性采血器材放入一次性利器盒中。

4）取出采血垫枕上的卫生纸，换上新的一张，再用消毒剂擦手消毒，进行下一病人的采集。

5）当使用多种试管采血时依抗凝管、不含添加剂管次序进行，具体顺序如下：

血培养瓶→绿头管→蓝头管→黑头管→紫头管→红头管→其它

6.2使用注射器采血

1）操作者以左手拇指固定静脉穿刺部位的下端，右手持注射器，使针头斜面和针筒刻度向上，先以约与皮肤呈30°的位置迅速刺入皮肤，然后适当降低角度穿破静脉壁穿入静脉腔中，见回血后，顺势将针头深入少许，以免采血时针头滑出，但不可用力深刺以免穿破静脉造成血肿。

2）用右手食指将针头固定，左手缓缓抽动注射器内芯，至所需血量后停止，解开压脉带，嘱患者松拳，用无菌干棉签压住伤口，拔出针头。

3）取出针头，将血液沿管壁缓缓注入试管中，防止产生泡沫，添加有抗凝剂的采血管须轻轻颠倒混匀6-8次，防止血液凝固。

6．3注意事项：

1）溶血对许多项目的检测产生干扰（可咨询我科相关技术人员），因此必须严格防止标本溶血，造成溶血的原因有压脉带捆扎时间过长，淤血过久；穿刺不顺组织过多；抽血速度太快；抗凝血用力振荡；离心速度过快等。

2）采血前应向病人耐心解释，以消除不必要的疑虑和恐惧心理。

如遇个别病人进针时或采血后发生眩晕，应立即拔出针头让其平卧休息片刻即可恢复。

若因低血糖诱发眩晕，可立即静注葡萄糖或嘱患者口服糖水即可。

如有其它情况，应立即找医生共同处理。

3）操作时避免溢出或溅泼血液。

若血液溅出，立即用消毒液清洗消毒。

警告：

注意安全防护，所有的血标本都应视为有潜在的传染性。

主要的危险来自于通过血液传播HIV、乙肝、丙肝等病毒，应采取标准预防措施。

6．4毛细血管采血

测定项目要求血量不多的情况下一般可采用手指穿刺采血。

在下列情况下，手指穿刺采血更优于静脉采血：

1）患者静脉表浅而脆薄。

2）患者是儿童，且找不到合适的静脉穿刺，或不配合静脉采血。

然而，下列情况手指穿刺采血不适用：

①人在极度寒冷状态。

②手指穿刺采血收集血量不能达到实验要求。

测试要求血量

进行WBC分析，要求20ul血量

6．五手指毛细血管穿刺步骤

1）核查病人后，在申请单和试管上统一编号（或贴条形码）。

采血前，检验者用消毒剂擦手消毒。

2）病人手指如果寒冷、发绀、肿胀或发炎时应该避免采血。

如果病人手指寒冷需要采血，可以用温湿手巾或温水（大约42℃）预温3-5分钟，以促进血液流动。

告知病人正确的姿势后，让病人的手能舒适地放在采血垫上。

3）用拇指和食指紧捏住病人的无名指大约离指尖3cm处，轻轻按摩采血部位5-6次（使其自然充血）。

4）用蘸碘伏的棉签清洁整个指尖，待其干燥。

5）一手拿无菌采血针，一手握紧病人的手指，显露最佳采血部位。

6）使皮肤紧绷，快速而平稳的刺破皮肤。

采完后，将采血针放入一次性利器盒。

7）如果病人是0.5岁以下的儿童，一般采用大拇指采血，如果是成人，或0.5岁以上的儿童，穿刺部位应选择无名指的指腹。

8）如果血液自动流出，用棉签擦去第一滴血，并擦干切口部。

把使用后的棉签丢入“生物危害垃圾袋”（黄色垃圾袋）。

9）如果血液不自动流出，可以把病人的手指朝下轻轻加压，以促进血液的流出，但注意不要把组织液挤出混入血液中。

如果施压后血液还不能流出，换部位使用新的采血针再进行穿刺。

10）手持微量毛细管，以30-45度角接触穿刺部位，收集20ul血，用洁净棉球擦干毛细管外侧。

11）将微量毛细管中的血液立即冲入收集管中，混匀。

12）血液采集完毕，用无菌棉签轻压于病人伤口上，等待血液停止流出。

13）采血完成后，检验者用消毒剂擦手消毒，进行下一病人的采集。

6．6脚跟毛细血管穿刺

脚跟毛细血管穿刺采集血液法适用于1周岁以下的新生儿或婴儿。

注意：

行脚跟穿刺时应避免损伤，最好在儿科病房在医生指导下进行。

注意事项：

1）采血前，手必须用消毒剂擦手消毒。

2）让病人安稳的坐好，防范患者眩晕或摔倒。

3）当穿刺后，加压血液也不能流出，考虑再行穿刺时，必须更换新的采血针，旧的采血针已被污染，不能重复使用。

4）当血液采集完毕时，用无菌棉签或纱布压于伤口上，并告知病人轻压伤口直到止血为止，必要时可以提供一个创可贴。

不提倡给小孩使用以免其可能会吞下导致窒息。

5）每次采血前后，检验者必须用消毒剂擦手消毒，以防止交叉感染。

6）操作时避免溢出或溅泼血液，若血液溅出，立即用消毒液清洗消毒。

警告：

所有的血标本都应视为有潜在的传染性，主要的危险来自于通过血液传播HIV、乙肝、丙肝等病毒。

（四）不同目的的血液标本采集方法

1、血液寄生虫检验标本采集

（1）疟原虫

1.1EDTA-K2抗凝剂静脉血1-2ml,由检验人员涂片。

为保证涂片质量，推荐病房直接送EDTA-K2抗凝剂静脉血。

1.2取静脉血困难的患者，可采集新鲜末梢血，薄涂片和厚涂片各三张，立即送检，并在1小时内完成检测，如果超过1小时检测，在备注栏内提示处理时间。

1.3在治疗之前和规则发热后期采集标本，即间日疟及三日疟患者应在发作后数小时至10余小时采血，此时，早期滋养体已发育至易于鉴别形态的晚期：

恶性疟患者，应在发作后20小时左右采血。

（2）微丝蚴

2.1EDTA-K2抗凝剂静脉血1-2ml,由检验人员涂片。

为保证涂片质量，推荐病房直接送EDTA-K2抗凝剂静脉血。

2.2采血时间以晚上21:

00-24:

00时前后为宜。

2、出、凝血功能及血流变检验标本采集

血液和抗凝剂比例一定要准确。

标本要及时送检，不能久置，抽血应顺利，避免溶血或凝血。

病人在抽血前应禁食，避免脂血减低实验的敏感度。

（1）血流变检测

采集清晨空腹静脉血，用肝素抗凝。

抗凝血置室温4h内完成测定。

另外，加抽一管“血沉”和一管“血常规”标本。

（2）凝血功能测定

空腹采样，标本量要求准确，采样后充分颠倒混匀，试验前避免服用影响凝血功能的药物。

（3）血小板凝集试验

试验前7-10天内避免服用阿司匹林、保泰松、抗组胺制剂，吩噻嗪类、氯吡格雷、噻氯吡定等影响血小板功能的药物，试验当天禁用含咖啡因饮料，蓝帽真空管静脉采血。

3、血气分析标本采集

用1mL、2mL或5mL消毒注射器，按无菌手术抽取肝素0.2ml,然后将肝素来回抽动,使针管全部湿润,将多余肝素全部排出。

注射器内死腔残留的肝素即可抗凝。

皮肤消毒后穿刺股动脉、肱动脉或桡动脉，取2ml动脉血，不能有气泡。

抽出后用一块小橡皮封针头，隔绝空气。

将注射器放在手中双手来回搓动，立即送检。

三、尿液标本的采集方法

（一）尿液标本的种类：

1、晨尿：

即清晨起床后第一次排尿时收集的尿液标本。

如为