微生物学实验教案.docx
- 文档编号:30305187
- 上传时间:2023-08-13
- 格式:DOCX
- 页数:29
- 大小:76.82KB
微生物学实验教案.docx
《微生物学实验教案.docx》由会员分享,可在线阅读,更多相关《微生物学实验教案.docx(29页珍藏版)》请在冰豆网上搜索。
微生物学实验教案
微生物学实验报告要求
实验报告,就是在某项科研活动或专业学习中,实验者把实验的目的、方法、步骤、结果等,用简洁的语言写成书面报告。
实验报告必须在科学实验的基础上进行。
成功的或失败的实验结果的记载,有利于不断积累研究资料,总结研究成果,提高实验者的观察能力、分析问题和解决问题的能力,培养理论联系实际的学风和实事求是的科学态度。
1、实验报告要求
实验报告书写使用实验中心统一实验报告纸。
主要内容有:
(1)实验名称
要用最简练的语言反映实验的内容。
(2)实验目的
要明确,抓住重点,可以从理论和实践两个方面考虑。
在理论上,验证定理定律,并使实验者获得深刻和系统的理解,在实践上,掌握仪器或器材的使用技能技巧。
(3)实验原理
要写明依据何种原理、定律或操作方法进行实验
(4)仪器和材料
选择主要的仪器和材料填写。
如能画出实验装置的结构示意图,再配以相应的文字说明更好。
(5)操作步骤
要写明经过哪几个具体实验操作步骤,也可用流程图说明;实验报告要简明扼要、字迹整洁。
同预习报告一样左边写步骤,右边写实验现象。
(6)实验结果
从实验中测到的数据计算结果,或从图像中观察实验结果。
(7)分析与讨论
结果即根据实验过程中所见到的现象和测得的数据,做出结论。
讨论可写上实验成功或失败的原因,对实验中的异常现象、实验(设计)后的心得体会、改进建议等等。
2、报告撰写时的注意事项
写实验报告是一件非常严肃、认真的工作,要讲究科学性、准确性、求实性。
在撰写过程中,常见错误有以下几种情况:
(1)观察不细致,没有及时、准确、如实记录。
在实验时,由于观察不细致,不认真,没有及时记录,结果不能准确地写出所发生的各种现象,不能恰如其分。
实事求是地分析各种现象发生的原因。
故在记录中,一定要看到什么,就记录什么,不能弄虚作假。
为了印证一些实验现象而修改数据,假造实验现象等做法,都是不允许的。
(2)说明不准确,或层次不清晰。
(3)尽量采用专用术语来说明事物。
例如:
“用搅拌棒在混合物里转动”一语,应用专用术语“搅拌”较好,既可使文字简洁明白,又合乎实验的情况。
(4)外文、符号、公式不准确,没有使用统一规定的名词和符号。
(5)学生应独立完成实验报告的书写,严禁抄袭、复印。
一旦发现抄袭、复印的实验报告,该学生实验报告成绩为0分。
实验一显微镜油浸系物镜的使用
一、实验目的和内容
目的:
复习显微镜低倍镜和高倍镜的使用技术,了解油浸系物镜的基本原理,掌握油浸系物镜的使用方法。
内容:
1、学习油浸系物镜的使用方法。
2、用油镜观察枯草芽孢杆菌或金黄色葡萄球菌染色装片。
二、实验材料和用具
枯草芽孢杆菌(Bacillussubitilis)、金黄色葡萄球菌(Staphylococcusaureus)的染色装片。
香柏油、二甲苯、显微镜、擦镜纸。
三、操作步骤
(一)观察前的准备
1、将显微镜置于平稳的实验台上,镜座距实验台边沿约为4cm。
坐正,用左眼观察。
2、调节光源:
将低倍物镜转到工作位置,把光圈完全打开,聚光器升至与载物台相距约1mm左右。
转动反光镜采集光源,光线较强的天然光源宜用平面镜,光线较弱的天然光源或人工光源宜用凹面镜,对光至视野内均匀明亮为止。
观察染色装片时,光线宜强;观察末染色装片时,光线不宜太强。
(二)低倍镜观察染色装片
首先上升镜简,将枯草芽孢杆菌染色装片置于载物台上,用标本夹夹住,将观察位置移至物镜正下方,物镜降至距装片0.5cm处,适当缩小光圈然后两眼从目镜观察,转动粗调节器使物镜逐渐上升(或使镜台下降)至发现物像时,改用细调节器调节到物像清楚为止。
移动装片,把合适的观察部位移至视野中心。
(三)高倍镜观察
眼睛离开目镜从侧面观察,旋转转换器,将高倍镜转至正下方,注意避免镜头与玻片相懂。
再由目镜观察,仔细调节光圈,使光线的明亮度适宜。
用细调节器校正焦距使物镜清晰为止。
将最适宜观察部位移至视野中心,绘图。
不要移动装片位置,准备用油镜观察。
(四)油镜观察
1、提起镜筒约2cm,将油镜转至正下方。
在玻片标本的镜检部位(镜头的正下方)滴一滴香柏油。
2、从侧面注视,小心慢慢降下镜筒,使油镜浸在油中至油圈不扩大为止,镜头几乎与装片接触,但不可压及装片,以免压碎玻片,损坏镜头。
3、将光线调亮,左眼从目镜观察,用粗调节器将镜筒徐徐上升(切忌反方向旋转),当视野中有物像出现时,再用细调节器校正焦距。
如因镜头下降未到位或镜头上升太快末找到物像,必须再从侧面观察,将油镜降下,重复操作直至物像看清为止。
仔细观察并绘图。
4、再次观察提起镜筒,换上金黄色葡萄球菌染色装片,依次用低倍镜、高倍镜和油镜观察,绘图。
重复观察时可比第一次少加香柏油。
(五)镜检完毕后的工作
1、移开物镜镜头。
2、取出装片。
3、清洁油镜,油镜使用完毕后,须用擦镜纸擦去镜头上的香柏油,再用擦镜纸沾少许二甲苯擦掉残留的香柏油,最后再用干净的擦镜纸擦干残留的二甲苯。
4、擦净显微镜,将各部分还原。
将接物镜呈“八”字形降下,不可使其正对聚光器,同时降下聚光器,转动反光镜使其镜面垂直于镜座。
最后套上镜罩,对号放入镜箱中,置阴凉干燥处存放。
四、注意事项
1、不准擅自拆卸显微镜的任何部件,以免损坏。
2、拿显微镜时,一定要右手拿镜臂,左手托镜座,不可单手拿,更不可倾斜拿。
3、下降镜头时,一定要从侧面注视,切忌用眼睛对着目镜,边观察
边下降镜头的错误操作,以免压碎玻片而损坏镜头。
4、观察标本时,必须依次用低、中、高倍镜,最后用油镜。
特别在使用油镜时,切不可使用粗调节器,以免压碎玻片或损伤镜面。
使用油镜后,及时用二甲苯清洁油镜和载玻片。
使用二甲苯擦镜头时,注意二甲苯不能过多,以防溶解固定透镜的树脂。
5、注意保持显微镜的洁净,对金属部分要用软布擦拭,擦镜头必须用擦镜纸,切勿用手或用普通布、纸等,以免损坏镜头。
6、显微镜应存放在阴凉干燥处,以免镜片滋生霉菌而腐蚀镜片。
五、实验报告
分别绘出在高倍镜和油镜下观察到的枯草芽孢杆菌及金黄色葡萄球菌的形态,注明物、目镜放大倍数和总放大率。
六、问题和思考
1、使用油镜应特别注意哪些问题?
为什么必须用香柏油?
2、使用显微镜绘图时,眼睛的位置。
3、镜检标本时,为什么先用低倍镜观察,而不是直接用高倍镜或油镜观察?
4、转到高倍镜和油镜时,对照明度有何要求?
应如何调节?
显微镜的基本结构与原理
普通光学显微镜由机械和光学两大部分组成。
1、机械部分
(1)镜筒
镜筒上端装目镜,下端接转换器。
镜筒有单筒和双筒两种。
单筒有直立式和后倾式两种。
双筒全是倾斜式的,其中一个筒有屈光度调节装置,以备两眼视力不同者调节使用。
两筒之间可调距离,以适应两眼宽度不同者调节使用。
(2)物镜转换器
转换器装在镜筒的下方,其上有3个孔,甚至4个或5个孔,用于安装不同规格的物镜。
(3)镜台(载物台)
又称镜台,是放置标本的地方,多数为方形和圆形的平台,中央有一通光孔;载物台上有移动器,作用是夹住和移动标本,转动螺旋可使标本前后和左右移动,其上的刻度标尺可指明标本所在位置。
(4)镜臂
镜臂支撑镜筒、载物台、聚光器和调节器。
镜臂有固定式和活动式(可改变倾斜度)。
(5)镜座
镜座连接镜臂,支撑整台显微镜,其上有反光镜。
(6)调焦装置
调节物镜和被观察物体之间距离的机件。
有镜臂调节器和镜台调节器两种,前者通过升降镜臂来调焦距,后者通过升降载物台来调焦距。
包括大、小螺旋调节器各一个,前者又称粗调节器,后者也叫微调节器,通过调节器调焦,可清晰地观察到标本。
2、光学部分
(1)物镜
是接近被观察物品(标本)的镜头,亦称接物镜。
根据物镜的放大倍数和使用方法的不同,分为低倍物镜、高倍物镜和油镜三种,低倍物镜有4×、10×、20×;高倍物镜有40×和45×;油镜有90×、95×和100×等。
数字越大,放大倍数越高。
(2)目镜
是接近观察者的眼睛的镜头,亦称接目镜。
把经物镜放大的实像再放大一次,并映入观察者的眼中。
通常有5×、10×、16×等规格。
(3)聚光器
安装在载物台下,能将平行的光线聚焦于标本,增强照明度。
聚光器可以升降。
(4)反光镜
是普通光学显微镜的取光设备,使光线射向聚光镜,分平、凹两面。
(5)内光源
是较好的光学显微镜自身带有的照明装置,安装在镜座内部,由强光灯泡发出光线,通过安装在镜座的集光镜射入聚光镜。
油镜的基本原理
(一)油镜头的辨认
油镜头上常刻有OI(oilimmersion)或HI(homogeneneousimmersion)字样,有的还刻有一圈红线或黑线标记,在低倍物镜、高倍物镜和油镜3物镜中,油镜的放大倍数和数值孔径(numericalaperture)最大,而工作距离最短。
(二)显微镜的分辨率
显微镜性能的优劣不单是看它的总放大倍数,更重要的是看它分辩率的大小。
分辨率是指显微镜能分辨出物体两点间最小距离(D)的能力。
D值愈小表明分辨率愈高。
D值与光线的波长(λ)成正比,与物镜的数值孔径(NA)成反比。
从上式可看出,缩短光波长和增大数值孔径都可提高分辨率。
数值孔径指光线投射到物镜上的最大角度(称镜口角,α)的一半正弦与介质折射率(n)的乘积;
影响数值孔径大小的因数,一是镜口角,二是介质的折射率。
当镜与装片之间的介质为空气时,由于空气(n=1.52)的折射率不同,光线会发生折射,不仅使进入物镜的光线减少,降低了视野的照明度,而且会减少镜口角(图5—2A)。
当以香柏油(n=1.515)为介质时,由于它的折射率与玻璃相近,光线经过载玻片后可直接通过香柏油进入物镜而不发生折射,不仅增加了视野的照明度,更重要的是通过增加数值孔径达到提高分辨率的目的。
可见光的波长平均为0.55μm。
当使用数值孔径为0.65的高倍镜时,它能辨别两点之间的距离为0.42μm;而使用数值孔径为1.25的油镜时,能辨别两点之间的距离则为0.22μm。
光学显微镜的成像原理(倒立的虚像)。
介质为空气与介质为香柏油时光线通过的比较。
油镜使用的原理
油镜,即油浸接物镜。
当光线由反光镜通过玻片与镜头之间的空气时,由于空气与玻片的密度不同,使光线受到曲折,发生散射,降低了视野的照明度。
若中间的介质是一层油(其折射率与玻片的相近),则几乎不发生折射,增加了视野的进光量,从而使物象更加清晰。
实验二细菌的革兰氏染色
一、目的要求
1.学习并初步掌握细菌的革兰氏染色法。
2.了解革兰氏染色法的原理及其在细菌分类鉴定中的重要性。
二、实验材料
1.菌种:
金黄色葡萄球菌(Staphylococcusaureus)大肠杆菌(E.coli)
2.试剂:
草酸铵结晶紫、路哥氏碘液、95%乙醇、番红液
3.其他:
显微镜、载玻片、接种环、酒精灯、无菌水、香柏油、二甲苯等。
三、实验原理
革染氏染色法是细菌学中最重要的鉴别染色法。
是1884年由丹麦病理学家ChristainGram创立的。
通过革兰氏染色可把细菌区分为两大类。
革染氏染色的基本步骤:
先用结晶紫初染、次经碘液媒染、再用95%乙醇脱色、最后用蕃红复染。
经过此法染色后,细胞保留初染剂蓝紫色的细菌为革染氏阳性菌;如果细胞染上复染的红色的细菌为革染氏阴性菌。
大肠杆菌是标准的革染氏阴性菌,金黄色葡萄球菌是标准的革染氏阳性菌。
革染氏染色的机理,与细菌细胞壁的化学组成和结构有关。
经结晶紫初染以后,所用的细菌都被染成蓝紫色。
碘作为媒染剂,它能与结晶紫结合形成复合物,从而增强了染料与细菌的结合力。
当用乙醇脱色时,两类细菌的脱色效果是不同的,革染氏阳性细菌的细胞壁主要由肽聚糖形成的网状结构组成、壁厚、类脂含量低,用乙醇脱色处理时细胞壁脱水、使肽聚糖层的网状结构孔径缩小,透性降低,从而使结晶紫-碘的复合物不易被洗脱而保留在细胞内;革染氏阴性细菌的细胞壁中肽聚糖层在内层且较薄、类脂含量高,所以当脱色处理时,类脂被乙醇溶解、细胞壁透性增加,使结晶紫-碘的复合物被洗脱出来。
用蕃红复染时染上红色。
四、操作步骤
1.细菌的活化:
将细菌接种营养琼脂斜面,培养约24h。
2.制片:
取菌种培养物常规涂片、干燥、固定。
3.初染:
于制片上滴加结晶紫染液,染色1min后,用水洗去剩余染料。
4.媒染:
用碘液冲去残水,并用碘液覆盖约1min,水洗。
5.脱色:
用滤纸吸去玻片上的残水,将玻片倾斜,在白色背景下,直接用95%乙醇从载玻片上端冲洗脱色,直到流下的酒精无明显的紫色时,立即水洗。
酒精的浓度、用量及涂片厚度都会影响脱色速度。
脱色是革兰氏染色中最关键的一步。
6.复染:
滴加番红液,染色2min,水洗。
7.用滤纸吸干,油镜镜检。
五、注意事项
为了保证革染氏染色结果的正确性,制片过程中要注意:
要选用活跃生长的幼培养物作革染氏染色,涂片不宜过厚,火焰固定不宜过热,脱色时间的控制。
另外,可选用标准的革染氏阳性菌和革染氏阴性菌和未知菌一起混合涂片和染色。
六、实验内容
1.分别对金黄色葡萄球菌和大肠杆菌进行革兰氏染色
2.对上述两种菌进行混合涂片,再进行革兰氏染色。
七、实验报告
1.图示所观察到的菌体细胞的形态与革兰氏染色结果;
2.在下表中依次填入革兰氏染色所用染料的名称,并填上革兰氏阳性和革兰氏阴性菌在每步染色后菌体所呈的颜色。
在不影响革兰氏反应的前提下,哪一步可被省略?
3.填写下列表格
步骤
所用染料
菌体所呈颜色
革兰氏阳性菌
革兰氏阴性菌
1
2
3
4
实验三(上)酵母菌细胞大小的测定
一、实验目的
1.了解测量微生物大小的原理;
2.学习并掌握接目测微尺的校正方法及微生物大小的测定方法,增强微生物细胞大小的感性认识。
二、实验材料
1.菌种:
啤酒酵母(Saccharomycescerevisiae)菌悬液。
2.仪器或其他用具:
显微镜,目镜测微尺,镜台测微尺,载玻片,盖玻片
三、实验原理
微生物细胞的大小是微生物基本的形态特征,也是分类鉴定的依据之一。
微生物细胞个体较小,需要在显微镜下借助于特殊的测量工具—测微尺来测定其大小。
测微尺包括镜台测微尺和目镜测微尺。
镜台测微尺是一张中央部分刻有精确等分线的载玻片,专门用于校定接目镜测微尺每小格的相对长度。
通常,刻度的总长是1mm,被等分为100格,每格0.01mm(即10μm)。
镜台测微尺不直接用来测量细胞的大小。
目镜测微尺是一块可以放入接目镜的圆形小玻片,其中央有精确的等分刻度,有等分为50小格和100小格的两种。
在测量时将目镜测微尺放在目镜的隔板上,即可来测量经显微镜放大后的细胞物象。
也有专用的目镜,里面已经安放好了目镜测微尺。
由于目镜测微尺所测量的是经显微镜放大后的细胞物象,因此,在不同的显微镜或不同的目镜和物镜组合放大倍数不同,目镜测微尺每一小格所代表的实际长度也不一样。
所以,在用目镜测微尺测量微生物大小之前,必须先用镜台测微尺校定目镜测微尺,以确定该显微镜在特定放大倍数的目镜和物镜下,目镜测微尺每一小格所代表的实际长度,然后根据微生物细胞相当于的目镜测微尺格数,计算出微生物细胞的实际大小。
四、操作步骤
1.装目镜测微尺:
取下显微镜的目镜,换上专用目镜。
如果没有专用的目镜,则取下显微镜的目镜,旋下透镜,将目镜测微尺刻度朝下放在目镜的隔板上,再旋上目镜透镜,将装有测微尺的目镜装回镜筒。
2.目镜测微尺的标定:
1)放镜台测微尺:
将镜台测微尺刻度面朝上固定在显微镜的载物台上,注意不可放反。
2)标定:
将低倍镜转入光路,镜台测微尺有刻度的部分移至视野中央,调节焦距,当清晰地看到镜台测微尺的刻度后,转动目镜使目镜测微尺与镜台测微尺的刻度相平行。
利用移动钮移动镜台测微尺,使两尺在某一区域内两线完全重合,然后分别数出两重合线之间镜台测微尺和目镜测微尺所占的格数。
(使目镜测微尺的一条刻度线与镜台测微尺的一条刻度线相重合,再寻另一重合线,分别数出其间镜台测微尺和目镜测微尺所占的格数)
3)用同样的方法,分别在高倍镜和油镜下对目镜测微尺进行标定。
(观察时光线不宜过强,否则难以找到镜台测微尺的刻度,换高倍镜和油镜标定时,务必十分细心,防止接物镜压坏镜台测微尺和损坏镜头)
4)计算:
已知镜台测微尺每格长10μm,根据下列公式即可分别计算出在不同放大倍数下,目镜测微尺每格所代表的长度。
目镜测微尺每格长度(μm)=10n/m
n:
两重合线间镜台测微尺格数
m:
两重合线间接目测微尺格数
3.微生物细胞大小的测量
目镜测微尺标定完毕后,取下镜台测微尺,换上微生物标本片,将其固定在载物台上,先用低倍镜找到标本片图象,然后根据不同的微生物对象分别转换到高倍镜或油镜下,用目镜测微尺测量微生物细胞的直径或宽和长所占的格数,再依据所标定的高倍镜或油镜下每一格的实际长度计算细胞的实际大小。
通常测定对数生长期菌体来代表该菌的大小,为了尽量减小实验误差,应在同一标本片上测量10~20个细胞,取其平均值作为该菌的大小。
维护:
测量完毕,换上原有的显微镜目镜(或取出目镜测微尺,目镜放回镜筒),用擦镜纸将测微尺擦拭干净后放回盒内保存,并按照显微镜的使用和维护方法擦拭物镜。
五、实验内容
1.分别在低倍镜、高倍镜下对目镜测微尺进行标定。
2.高倍镜下测定酿酒酵母细胞的大小。
六、实验报告
1.目镜测微尺标定结果:
低倍镜下倍目镜测微尺每格长度是μm。
高倍镜下倍目镜测微尺每格长度为μm。
2.菌体大小测定结果:
菌号
酿酒酵母细胞测定结果
目镜测微尺格数
实际长度
宽
长
宽
长
1
2
3
4
5
6
7
8
9
10
平均值
实验三(下)酵母菌细胞数量的测定
一、目的要求
1.学习并掌握血球计数板计数的原理;
2.掌握利用血球计数板进行微生物计数的方法。
二、实验材料
1.菌种:
酿酒酵母(Saccharomycescerevisiae)麦芽汁培养液
2.其它:
显微镜、血球计数板、手动计数器、擦镜纸、吸水纸等
三、基本原理
利用血球计数板在显微镜下直接计数,是一种常用的微生物计数方法。
该方法是将菌悬液放在血球计数板与盖玻片之间容积一定的计数室中,在显微镜下进行计数,然后根据计数结果计算单位体积内的微生物总数目。
血球计数板是一块特制的载玻片,其上由4条槽构成3个平台。
中间较宽的平台又被一短横槽隔成两半,每一边的平台上各刻有一个方格网,每个方格网共分为9个大方格,中间的大方格即为计数室。
计数室的边长为1mm,中间平台下陷0.1mm,故盖上盖玻片后计数室的容积为0.1mm3。
常见血球计数板的计数室有两种规格:
一种是16×25型,即计数室共分为16个中方格,每个中方格又分为25个小方格;另一种是25×16型,即计数室先被分成25个中方格,每个中方格又分为16个小方格。
但无论是哪一种规格的血球计数板,其计数室的小方格都是400个。
我们采用的是25×16型。
计数时,通常数5个中方格的总菌数,再换算成1ml菌液中的总菌数。
计算公式:
1ml菌液中总菌数=5×104A·B
A为5个中方格中的总菌数,B为稀释倍数。
四、操作步骤
1.菌悬液的制备:
以无菌生理盐水将酿酒酵母培养物制成浓度适当的菌悬液。
2.加样品:
将清洁干燥的血球计数板盖上盖玻片,再用无菌的毛细滴管将摇匀的酵母菌悬液由盖玻片边缘滴一小滴,让菌液沿缝隙靠毛细作用自动进入计数室(注意取样前要摇匀菌液;加样时计数室不可有气泡产生)。
3.找计数室:
加样后静止5min,然后将血球计数板置于显微镜载物台上,先用低倍镜找到计数室所在位置,然后换成高倍镜进行计数(注意调节显微镜光线强弱,使菌体和计数室线条清晰)。
4.显微镜计数:
取左上、右上、左下、右下和中央5个中方格进行计数。
位于中方格边线上的菌体一般只计上边和右边线上的(或只计左边和下边线上的)。
如遇到酵母出芽,芽体大小达到母细胞一半以上时,即作为两个菌体计数。
计数一个样品要从上下两个计数室中得到的平均数值来计算样品的含菌量。
5.清洗血球计数板:
使用完毕后,将血球计数板在水龙头上用水冲洗干净,切勿用硬物洗刷,洗完后自行晾干或用吹风机吹干。
镜检,观察计数室内是否有残留菌体或其它沉淀物。
若不干净,则必须重复洗涤至干净为止。
五、实验内容
按上述方法及步骤测定所给酿酒酵母培养液的细胞浓度。
六、实验报告
1.将结果记录于下表中。
各中方格菌数
A
B
二室
平均值
菌数/ml
1
2
3
4
5
第一室
第二室
2.根据你的体会,说说用血球计数板计数的误差主要来自哪些方面?
应如何尽量减少误差,力求准确?
3.能否用血球计数板在油镜下对细菌进行计数?
为什么?
实验四培养基的制备与灭菌
一、目的要求
1.掌握培养基(牛肉膏蛋白胨培养基)的配置方法。
2.掌握高压蒸汽灭菌的操作方法。
二、基本原理
正确掌握培养基的配制方法是从事微生物学实验工作的重要基础。
由于微生物种类及代谢类型的多样性.因而用于培养微生物的培养基的种类也很多,它们的配方及配制方法虽各有差异。
但一般培养基的配制程序却大致相同.例如器皿的准备,培养基的配制与分装,棉塞的制作,培养基的灭菌,斜面与平板的制作以及培养基的无菌检查等基本环节大致相同。
三、实验材料
1.药品:
待配各种培养基的组成成分、琼脂、1mol/L的NaOH和HCl溶液。
2.仪器及玻璃器皿:
天平、高压蒸汽灭菌锅、移液管、试管、烧杯、量筒、三角瓶、培养皿等。
3.其他物品:
药匙、称量纸、pH试纸、记号笔、棉花等。
四、操作步骤
(一)玻璃器皿的洗涤
玻璃器皿在使用前必须洗刷干净。
将三角瓶、试管、培养皿、量筒等浸入含有洗涤剂的水中.用毛刷刷洗,然后用自来水及蒸馏水冲净。
移液管先用含有洗涤剂的水浸泡,再用自来水及蒸馏水冲洗。
洗刷干净的玻璃器皿置于烘箱中烘干后备用。
(二)液体及固体培养基的配制过程
1.液体培养基配制
(1)称量:
一般可用0.01g天平称量配制培养基所需的各种药品,先按培养基配方计算出各成分的用量.然后进行准确称量。
(2)溶解:
将称好的药品置于一烧杯中,先加入少量水(根据实验需要可用自来水或蒸馏水),用玻璃棒搅动,加热溶解。
(3)定容:
待全部药品溶解后,倒入一量筒中,加水至所需体积。
如某种药品用量太少时,可预先配成较浓溶液,然后按比例吸取一定体积溶液,加入至培养基中。
(4)调pH:
一般用pH试纸测定培养基的pH。
用剪刀剪出一小段pH试纸,然后用镊子夹取此段pH试纸,在培养基中蘸一下,观看其pH范围,如培养基偏酸或偏碱时,可用1mol/LNaoH或1mol/LHCl溶液进行调节。
调节pH时,应逐滴加入NaOH或HCI溶液,防止局部过酸或过碱,破坏培养基中成分。
边加边搅拌,并不时用PH试纸测试,直至达到所需pH为止。
(5)过滤:
用滤纸或多层纱布过滤培养基。
一般无特殊要求时,此步可省去。
2.固体培养基的配制
配制固体培养基时,应将已配好的液体培养基加热煮沸,再将称好的琼
- 配套讲稿:
如PPT文件的首页显示word图标,表示该PPT已包含配套word讲稿。双击word图标可打开word文档。
- 特殊限制:
部分文档作品中含有的国旗、国徽等图片,仅作为作品整体效果示例展示,禁止商用。设计者仅对作品中独创性部分享有著作权。
- 关 键 词:
- 微生物学 实验 教案