β胡萝卜素介孔纳米材料新型载药体系的制备与稳定性研究.docx
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β胡萝卜素介孔纳米材料新型载药体系的制备与稳定性研究
β―胡萝卜素介孔纳米材料新型载药体系的制备与稳定性研究
[摘要]以1,3,5-三甲基苯(1,3,5-TMB)作为扩孔剂,对介孔纳米材料MCM-41(mobilcompanyofmatter)进行了扩孔改性,采用有机溶剂浸渍法将非水溶性的β-胡萝卜素载入到扩孔后的MCM-41的介孔孔道中,得到了β-胡萝卜素/MCM-41新型载药体系。
分别利用TEM,FT-IR,元素分析和低温N2吸附-解吸附对MCM-41以及载药体系进行了表征;研究了载药体系中β-胡萝卜素的最佳载药时间,载药量以及体外稳定性等。
通过表征,发现采用水热合成法制备的MCM-41具有良好的球形度,规则的孔径结构;扩孔改性后的MCM-41作为药物载体具有较短的载药时间且药物的载药量有明显提高,并且组装体中β-胡萝卜素的稳定性得到了一定程度的改善。
该新型载药体系的研究为β-胡萝卜素的广泛应用提供了新的思路。
[关键词]扩孔改性;MCM-41;β-胡萝卜素;稳定性
Preparationandstabilityofβ-caroteneloadedusingmesoporoussilica
nanoparticlesascarrierssystem
LIUJing,RENZhi-hui,WANGHai-yuan,JINXing-hua*
(SchoolofPharmaceuticalScienceandTechnology,TianjinUniversity,Tianjin300072,China)
[Abstract]1,3,5-Trimethylbenzene(1,3,5-TMB)wasusedasthepore-enlargingmodifiertoexpandtheporesizeofMCM-41(mobilcompanyofmatter)mesoporoussilicananoparticles.Thesolventimpregnationmethodwasadoptedtoassemblenon-water-solubleβ-caroteneintotheporechannelofMCM-41.TheMCM-41anddrugassemblieswerecharacterizedbyTEM,FT-IR,elementalanalysisandN2adsorption-desorption.TheresultsshowedthatMCM-41hasgoodsphericityandregularporestructure.Theresearchalsoinvestigatedtheoptimalloadingtime,thedrugloadingandthevitrostabilityoftheβ-carotene.Asadrugcarrier,themodifiedMCM-41showingashorterdrugloadingtime,thedrugloadingashighas85.58%andthestabilityofβ-caroteneindrugassemblieshasimproved.Thestudyofthisnewformulationprovidesanewwayforβ-caroteneapplication.
[Keywords]pore-enlargedmodification;MCM-41;β-carotene;atability
doi:
10.4268/cjcmm20151812
β-胡萝卜素是应用最为广泛的天然食品着色剂[1],它既是天然色素,又是人体健康必不可少的一类化合物[2]。
β-胡萝卜素分子中存在多个共轭双键结构,对许多物理、化学、生物等因素都不稳定,例如光辐射、高温、酸、碱、游离卤素、水分等,但氧是影响β-胡萝卜素稳定性的最主要因素[3-4]。
因此寻找增加其载药量和稳定性的药物载体具有十分重大的意义。
由于介孔纳米材料MCM-41具有比表面积大、无毒副作用、生物兼容性良好等特点[5-7],故本实验考虑采用MCM-41来包载β-胡萝卜素以增加其生物利用度。
研究发现,将MCM-41作为药物载体的研究中多采用难溶性的小分子作为模型药物,而脂溶性很强、分子体积较大的药物对于MCM-41的选择性更高。
由于介孔纳米材料MCM-41具有择形选择性,所以本研究采用1,3,5-TMB作为扩孔改性剂,对介孔分子筛MCM-41的孔径进行精心的调变,使β-胡萝卜素分子的大小能够与分子筛的孔道大小与形状相匹配,以增加β-胡萝卜素的载药量,并在一定程度上改善β-胡萝卜素体外稳定性,为介孔纳米材料作为非水溶性药物的载体展开新的思路。
1材料与方法
1.1试剂与仪器
β-胡萝卜素(纯度>82%,天津光复精细化工研究所);正硅酸乙酯(TEOS)(分析纯,天津市博迪化工有限公司);十六烷基三甲基溴化铵(CTAB)(分析纯,天津光复精细化工研究所);NaOH(分析纯,天津市江天化工技术有限公司);超纯水(Milli-QAcademic);甲醇(色谱纯,天津康科德科技有限公司);氯仿、丙酮、无水乙醇等均为分析纯。
AgilentCary60紫外分光光度计,Agilent1200高效液相色谱仪(美国Agilent公司);AnkeTGL-16G高速台式离心机(上海安亭科学仪器厂);MettlertoledoXS105型电子天平(美国Mettler公司);SX2-4-10马弗炉(天津天有利科技有限公司)。
1.2MCM-41的合成[8]
制备MCM-41的各原料CTAB,TEOS,NaOH,H2O的摩尔比为1∶7.564∶2.551∶4652。
具体制备过程如下:
用量筒量取360mL超纯水置于500mL三口瓶中,加热到80℃后,在搅拌的条件下,向三口瓶中加入1.5gCTAB,搅拌均匀后加入2mol?
L-1NaOH溶液5.25mL,搅拌反应3min,溶液呈均相后,缓慢加入7.5mLTEOS,保持80℃,不断搅拌反应2h。
反应后溶液冷却至室温,抽滤泵抽滤,并分别用水和无水乙醇洗涤3次,65℃下过夜干燥。
将得到的MCM-41放入马弗炉中,550℃下煅烧5h,得到MCM-41,并标记为M0。
1.3MCM-41的扩孔改性
各原料CTAB,TMB,TEOS,NaOH,H2O的摩尔比为1∶2∶7.564∶2.551∶4652(y/x=1,2,3)。
具体制备过程如下:
用量筒量取360mL超纯水置于500mL三口瓶中,加热到80℃后,在搅拌的条件下,向三口瓶中加入1.5gCTAB,搅拌均匀后加入2mol?
L-1NaOH溶液5.25mL(pH10.5),搅拌反应3min,溶液呈均相后,向三口瓶中加入0.6mL扩孔剂1,3,5-TMB,并缓慢加入7.5mLTEOS,保持80℃温度下,不断搅拌反应2h。
反应液冷却至室温,将产物过滤、洗涤(无水乙醇、超纯水各洗涤3次),105℃下过夜干燥。
将得到的MCM-41放入马弗炉中,550℃下煅烧5.5h,得到大孔径的MCM-41成品,并标记为M1。
1.3.1β-胡萝卜素在介孔纳米材料MCM-41中的组装β-胡萝卜素的组装采用有机溶剂浸渍法。
称取50mgM0及M1分别加入到有机溶剂中,密封,避光,放入37℃恒温震荡器中震荡一定时间后,9000r?
min-1离心5min,取上清,用紫外分光光度测定β-胡萝卜素的载药量,β-胡萝卜素的最大吸收波长为445nm。
β-胡萝卜素的载药量(DL)=(Ct-Cf)/(Ct-Cf+C0)×100%,式中,Cf为离心后上清液中剩余的β-胡萝卜素的含量,Ct为加入的β-胡萝卜素的总含量,C0为介孔材料的质量。
载药后得到了β-胡萝卜素/MCM-41载药体系,经9000r?
min-1离心5min,收集下层沉淀,将收集到的粉末密封,避光保存于真空干燥器中,备用。
1.3.2浸渍溶剂的选择本研究考察了氯仿、丙酮、二氯甲烷、氯仿-丙酮(9∶1)对于β-胡萝卜素载药量的影响。
设定β-胡萝卜素-MCM-41(1∶1),于37℃恒温震荡器中震荡24h。
离心,吸取上清液,测定β-胡萝卜素的载药量。
1.3.3β-胡萝卜素标准曲线的建立配制β-胡萝卜素标准溶液,质量浓度分别为0.5,1,2,3,4,5mg?
L-1。
以浸渍溶剂作为空白,紫外扫描范围300~650nm,在446nm处β-胡萝卜素有最大吸收。
标准曲线方程A=0.2316C+0.0015,R2=0.9995,线性范围0.5~5mg?
L-1。
1.3.4最大载药量的确定将50mgM1置于1.0,2.0,3.0,4.0,5.0g?
L-1的50mLβ-胡萝卜素氯仿-丙酮(9∶1)溶液中,搅拌24h,过滤,9000r?
min-1离心5min,吸取上清液,稀释后利用紫外分光光度法测定β-胡萝卜素的残留量,计算出药物组装体中β-胡萝卜素的含量。
1.3.5最佳载药时间的确定将50mgM1置于4.0g?
L-1的β-胡萝卜素氯仿-丙酮(9∶1)50mL溶液中,搅拌2,4,8,10,21,24h,过滤,9000r?
min-1离心5min,吸取上清液,稀释后利用紫外分光光度法测定β-胡萝卜素的残留量,计算出药物组装体中β-胡萝卜素的含量。
1.4药物组装体中β-胡萝卜素稳定性的测定
分别将50mgβ-胡萝卜素、β-胡萝卜素/MCM-41的载药体系(包括扩孔前与扩孔后的载药体系)避光、敞口放置于30℃下,每天取样观察,并利用HPLC测定β-胡萝卜素的含量。
精密称定2mg上述待测β-胡萝卜素/MCM-41载药体系的粉末,加入1.0mL氯仿,超声使载药体系中的β-胡萝卜素浸出。
9000r?
min-1离心5min,将上清液转移至5mL量瓶中。
下层固体中再次加入1.0mL氯仿,进行二次提取。
反复提取β-胡萝卜素3次,合并上清液,用氯仿定容至5mL,获得β-胡萝卜素提取液。
利用高效液相色谱法进行测定,从而得出储存过程中制剂中β-胡萝卜素的含量,β-胡萝卜素的保留率(RR)=An/A0×100%,式中,An为储存第n天后组装体中β-胡萝卜素的峰面积,A0为第0天组装体中β-胡萝卜素的峰面积。
HPLC测定β-胡萝卜素的液相条件[12]:
AgilentZORBAX-C18色谱柱(4.6mm×150mm,5μm);检测波长445nm;流动相100%甲醇;柱温25℃。
2结果与讨论
2.1MCM-41的表征
2.1.1透射电子显微镜(TEM)煅烧去除模板后的介孔分子筛M0和经过扩孔改性后得到的介孔纳米材料M1透射电子显微镜图片见图1。
合成的MCM-41呈球形,其粒径大约分布在200~300nm,且球形均匀。
经过扩孔改性后的MCM-41仍然保持着良好的球形形貌,这说明扩孔改性剂没有对介孔分子筛的形貌产生影响。
2.1.2傅里叶变换红外光谱(FT-IR)M0与M1在去除模板后的傅里叶变换红外光谱图见图2,波数区间为400~4000cm-1。
在图谱上,3421cm-1处的吸收峰为Si-OH和吸附水分子的特征峰;与硅骨架有关的谱峰出现在1096,810cm-1,分别为硅氧键Si-O-Si不对称与对称伸缩振动;460cm-1处的谱峰为Si-O键的弯曲振动。
从以上分析可知,孔改性后的介孔分子筛M1仍保持良好的介孔孔道结构。
2.1.3N2吸附-解吸附M0,M1的N2吸附-解吸附等温线图见图3。
M0,M1均呈现典型的Ⅵ型等温线特征,这说明致孔剂的加入没有改变材料的孔道结构,材料均具有圆柱形细长孔道结构。
当P/P0为0.2~0.4时,M0和M1的N2吸附量均迅速增加,出现一个突跃,这是N2在介孔内产生的毛细凝聚所致,吸附量的迅速增加表明介孔结构的存在且孔径均匀。
经过扩孔改性后的MCM-41吸附量明显增加,M0和M1的结构参数证实了经过扩孔改性后得到的M1,孔径增加,比表面积减小,见表1。
滞后环的大小反映了孔径分布的宽窄。
在吸附过程中,孔径较窄的中孔内首先发生毛细凝聚,孔径较宽的孔内最后发生毛细凝聚;而在脱附过程中,由于孔中凝聚的液体的相平衡压力与孔径尺寸成正比,所以相对压力较高时,宽孔中的液体首先脱附,而窄孔中的液体只有在相对压力降到足够低时才能脱附。
由此可推测,滞后环上下端闭合的早晚反应样品中孔径分布的宽窄,上下两端闭合点相距越远,孔径分布越宽;反之,上下两端闭合点相距越近,孔径分布越窄[10]。
对比图3a和图3b可以发现,M1的滞后环比M0的滞后环要大,且上下两端闭合点相距稍远,说明加入扩孔剂之后制备的MCM-41孔径分布变宽。
原因主要是,将1,3,5-TMB作为扩孔剂添加到反应混合物中时,1,3,5-TMB会进入表面活性剂的憎水基团内部,使胶束的体积因其填充而增大,从而达到增大孔尺寸的目的,但随着TMB添加量的增加,其在胶束内部的分散程度不完全均一,就会导致合成的MCM-41孔径分布变宽[11]。
2.2药物组装体的表征
2.2.1元素分析为了证实β-胡萝卜素成功载入到介孔材料内,对组装β-胡萝卜素后的纳米材料样品中碳(C)和氮(N)元素含量进行分析。
在组装β-胡萝卜素后,对比β-胡萝卜素/M0和β-胡萝卜素/M1中的C含量可以发现,β-胡萝卜素/M0中的C含量虽有增加,但增加量不如β-胡萝卜素/M1,见表2。
可以推断出,增加的C含量主要来自于β-胡萝卜素,同时经过扩孔后得到的MCM-41能够负载更多的β-胡萝卜素,说明孔径扩大后,使更多的β-胡萝卜素能够进入到介孔孔道内,初步证明了β-胡萝卜素已成功负载到介孔材料中。
2.2.2傅里叶变换红外光谱(FT-IR)介孔材料组装β-胡萝卜素后的红外谱图见图4。
波数区间400~4000cm-1。
组装β-胡萝卜素后的M1在1080,810,460cm-1附近处均出现了硅基介孔材料骨架结构的吸收峰,说明组装β-胡萝卜素后介孔材料的结构没有发生变化。
在β-胡萝卜素/M1的红外谱图上,3000cm-1附近出现了β-胡萝卜素的特征吸收峰,进一步证明β-胡萝卜素已经组装到介孔材料上。
2.3浸渍溶剂的选择
本文考察了4种常见的浸渍溶剂:
氯仿、丙酮、二氯甲烷以及氯仿-丙酮(9∶1)对于β-胡萝卜素载药量的影响,结果见图5。
浸渍溶剂对于β-胡萝卜素的溶解度及溶剂的介电常数见表3。
浸渍溶剂筛选的原则主要是在对β-胡萝卜素有一定溶解度的基础上,恰当的溶剂介电常数能够增加溶剂在介孔分子筛中的渗透性,因此筛选出合适的介电常数的溶剂有利于提高β-胡萝卜素的载药量[13-14]。
当采用丙酮作为浸渍溶剂时,虽然丙酮的极性较大,但对β-胡萝卜素的溶解度较低,故β-胡萝卜素的包封率低;当采用二氯甲烷作为浸渍溶剂时,虽然二氯甲烷的极性比较适中,但是β-胡萝卜素在二氯甲烷中的溶解度大,β-胡萝卜素与二氯甲烷的相互作用较强,使得其很难在介孔分子筛与溶剂之间达到分配平衡,β-胡萝卜素的包封率较低;当采用三氯甲烷作为溶剂时,由于其溶解性适中,只是极性略小,得到的β-胡萝卜素的载药量已经有较大程度的提高,但为了进一步提高三氯甲烷作为浸渍溶剂时β-胡萝卜素的载药量,选择采用混合溶剂,将三氯甲烷与丙酮按9∶1混合,在尽可能保持β-胡萝卜素在混合溶剂中的溶解度的前提下,改善三氯甲烷的极性,提高β-胡萝卜素的载药率。
2.4β-胡萝卜素载药量的测定
β-胡萝卜素的浓度与β-胡萝卜素载药量的关系曲线见图6。
当M1为50mg时,β-胡萝卜素的载药量随β-胡萝卜素浓度的增加而增大。
当β-胡萝卜素溶液中β-胡萝卜素的总量达到200mg(此时,β-胡萝卜素溶液的质量浓度为4.0g?
L-1)时,β-胡萝卜素的载药量基本保持不变。
这是由于当增加β-胡萝卜素与MCM-41质量比时,介孔孔道内外的β-胡萝卜素的浓度差逐渐增大,则进入到介孔孔道中的β-胡萝卜素也随之增加。
然而,β-胡萝卜素的浓度越大,由于MCM-41巨大的比表面积,β-胡萝卜素会吸附于MCM-41的表面而未能进入到介孔孔道中,则会造成测定的β-胡萝卜素的载药量不准确。
因此,4.0g?
L-1为β-胡萝卜素最佳组装浓度。
载药时间与β-胡萝卜素载药量的关系曲线见图7。
当M1与β-胡萝卜素的投药比为1∶4,载药时间<16h时,β-胡萝卜素与MCM-41之间的吸附-解吸附过程没有达到平衡,故进入到MCM-41孔道内的β-胡萝卜素量比较少,载药量较低;当载药时间在16h左右时,曲线发生突跃,这可能是由于MCM-41的介孔孔径与β-胡萝卜素分子之间的吸附-解吸附过程达到平衡,β-胡萝卜素分子开始进入到介孔孔道内,故当载药时间>16h,β-胡萝卜素的载药量逐渐增加,24h以后,β-胡萝卜素的载药量略有降低,可能的原因是介孔孔道是开放性孔道,载药时间过长会导致β-胡萝卜素的泄漏。
通过比较图7b与图7a发现,β-胡萝卜素与M0达到吸附-解吸附平衡所需的时间更长。
这是由于M0的孔径大小与β-胡萝卜素的分子大小匹配度低于M1,β-胡萝卜素难以进入到M0的介孔孔道内,故平衡时间更长,载药量低于β-胡萝卜素/M1组装体。
因此,24h为M1组装β-胡萝卜素的最佳时间。
2.5MCM-41包封β-胡萝卜素的稳定性
将β-胡萝卜素及β-胡萝卜素/MCM-41组装体避光、敞口放置于30℃下,在贮藏期间β-胡萝卜素保留率的变化过程见图8。
由于在贮藏期间β-胡萝卜素及β-胡萝卜素/MCM-41组装体受到氧气、水分等因素的综合影响,β-胡萝卜素发生了降解;当没有被组装时,β-胡萝卜素完全暴露于空气中,降解的速率较快。
当β-胡萝卜素与M0进行组装后,相比于空白的β-胡萝卜素,发现β-胡萝卜素的降解速度更快,见图8b,这可能是由于此时未加入扩孔剂,所以只能够将很少的β-胡萝卜素载入到介孔孔道的内部,大部分的β-胡萝卜素仅仅是被吸附于介孔分子筛的表面,又由于介孔分子筛具有巨大的比表面积,促进了β-胡萝卜素与空气中的氧气接触,因此更加快了β-胡萝卜素的降解速率。
当β-胡萝卜素与M1进行组装后,β-胡萝卜素的降解速率明显降低,见图8c,说明此时的孔径能够与β-胡萝卜素分子大小形状相匹配,β-胡萝卜素被组装进入了介孔孔道内,少部分β-胡萝卜素吸附于介孔表面,故开始时β-胡萝卜素降解较快;但由于介孔孔道能够将β-胡萝卜素与外界环境隔离,所以组装于介孔孔道内部的β-胡萝卜素能够减少并尽量避免与空气中的氧气及水分接触,降解速率减慢,提高了β-胡萝卜素的稳定性。
3结论
通过1,3,5-TMB扩孔改性制备的介孔纳米材料MCM-41具有规则的孔道结构,合适的孔径,可以作为β-胡萝卜素的药物载体。
经过组装,得到了既能保证载体的高载药性,又能有效地提高β-胡萝卜素稳定性的β-胡萝卜素/MCM-41新型载药。
该新型制剂的研究对于提高β-胡萝卜素的生物利用度具有十分重要的意义。
本课题研究了介孔分子筛MCM-41作为药物载体的潜在应用,为β-胡萝卜素的广泛应用提供了实验依据。
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[责任编辑马超一]
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