012 土壤和沉积物 挥发性有机物的测定 吹扫补集气相色谱质谱法 作业指导书.docx
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012土壤和沉积物挥发性有机物的测定吹扫补集气相色谱质谱法作业指导书
XX公司
作业指导书
土壤和沉积物挥发性有机物的测定吹扫捕集/气相色谱-质谱法
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XX
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XX
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第一版第0次修订
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受控□不受控□
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1编制依据
本方法依据《土壤和沉积物挥发性有机物的测定吹扫补集/气相色谱—质谱法》(HJ605-2011)编制。
2适用范围
本标准规定了测定土壤和沉积物中挥发性有机物的吹扫捕集/气相色谱-质谱法。
本标准适用于土壤和沉积物中65种挥发性有机物的测定。
若通过验证本标准也可适用于其他挥发性有机物的测定。
当样品量为5g,用标准四级杆质谱进行全扫描分析时,目标物的方法检出限为0.2~3.2μg/kg,测定下限为0.8~12.8μg/kg,详见附录A。
3术语和定义
下列术语和定义适用于本标准。
3.1
内标internalstandards
指样品中不含有,但其物理化学性质与待测目标物相似的物质。
一般在样品分析之前加入,用于目标物的定量分析。
3.2
替代物surrogatestandards
指样品中不含有,但其物理化学性质与待测目标物相似的物质。
一般在样品提取或其他前处理之前加入,通过回收率可以评价样品基体、样品处理过程对分析结果的影响。
3.3
基体加标matrixspike
指在样品中添加了已知量的待测目标物,用于评价目标物的回收率和样品的基体效应。
3.4
校准确认标准溶液calibrationverificationstandards
指浓度在校准曲线中间点附近的标准溶液,用于确认校准曲线的有效性。
3.5
运输空白tripblank
采样前在实验室将一份空白试剂水放入样品瓶中密封,将其带到采样现场。
采样时不开封,之后随样品运回实验室,按与样品相同的操作步骤进行试验,用于检查样品运输过程中是否受到污染。
3.6
全程序空白wholeprogramblank
采样前在实验室将一份空白试剂水放入样品瓶中密封,将其带到采样现场。
与采样的样品瓶同时开盖和密封,之后随样品运回实验室,按与样品相同的操作步骤进行试验,用于检查从样品采集到分析全过程是否受到污染。
4方法原理
样品中的挥发性有机物经高纯氦气(或氮气)吹扫富集于捕集管中,将捕集管加热并以高纯氦气反吹,被热脱附出来的组分进入气相色谱并分离后,用质谱仪进行检测。
通过与待测目标物标准质谱图相比较和保留时间进行定性,内标法定量。
5试剂和材料
5.1空白试剂水:
二次蒸馏水或通过纯水设备制备的水
使用前需经过空白检验,确认在目标物的保留时间区间内无干扰色谱峰出现或其中的目标物浓度低于方法检出限。
5.2甲醇(CH3OH):
农药残留分析纯级。
5.3标准贮备液:
ρ=1000mg/L~5000mg/L
可直接购买市售有证标准溶液,或用标准物质配制。
5.4标准使用液:
ρ=10.0~100.0mg/L
易挥发的目标物如二氯二氟甲烷、氯甲烷、三氯氟甲烷、氯乙烷、溴甲烷和氯乙烯等标准使用液需单独配制,保存期通常为一周,其他目标物的标准使用液保存期为一个月,或参照制造商说明配制。
5.5内标标准溶液:
ρ=25μg/ml
宜选用氟苯、氯苯-d5和1,4-二氯苯-d4作为内标。
可直接购买市售有证标准溶液,或用高浓度标准溶液配制。
5.6替代物标准溶液:
ρ=25μg/ml
宜选用二溴氟甲烷、甲苯-d8和4-溴氟苯作为替代物。
可直接购买市售有证标准溶液,或用高浓度标准溶液配制。
5.74-溴氟苯(BFB)溶液:
ρ=25μg/ml
可直接购买市售有证标准溶液,或用高浓度标准溶液配制。
5.8氦气:
纯度为99.999%以上。
5.9氮气:
纯度为99.999%以上。
注:
以上所有标准溶液均以甲醇为溶剂,在4℃以下避光保存或参照制造商的产品说明保存方法。
使用前应恢复至室温、混匀。
6仪器和设备
6.1样品瓶:
具聚四氟乙烯-硅胶衬垫螺旋盖的60ml棕色广口玻璃瓶(或大于60ml其他规格的玻璃瓶)、40ml棕色玻璃瓶和无色玻璃瓶。
6.2采样器:
一次性塑料注射器或不锈钢专用采样器。
6.3气相色谱仪:
具分流/不分流进样口,能对载气进行电子压力控制,可程序升温。
6.4质谱仪:
电子轰击(EI)电离源,一秒内能从35amu扫描至270amu;具NIST质谱图库、手动/自动调谐、数据采集、定量分析及谱库检索等功能。
6.5吹扫捕集装置
吹扫装置能够加热样品至40℃,捕集管使用1/3Tenax、1/3硅胶、1/3活性炭混合吸附剂或其他等效吸附剂。
若使用无自动进样器的吹扫捕集装置,其配备的吹扫管应至少能够盛放5g样品和10ml的水。
6.6毛细管柱:
30m×0.25mm,1.4μm膜厚(6%腈丙苯基94%二甲基聚硅氧烷固定液);或使用其他等效性能的毛细管柱。
6.7天平:
精度为0.01g。
6.8气密性注射器:
5ml。
6.9微量注射器:
10μl、25μl、100μl、250μl和500μl。
6.10棕色玻璃瓶:
2ml,具聚四氟乙烯-硅胶衬垫和实芯螺旋盖。
6.11一次性巴斯德玻璃吸液管。
6.12铁铲。
6.13药勺:
聚四氟乙烯或不锈钢材质。
6.14一般实验室常用仪器和设备。
7样品
7.1样品的采集
土壤和沉积物样品的采集分别参照HJ/T166和GB17378.3的相关规定。
可在采样现场使用用于挥发性有机物测定的便携式仪器对样品进行目标物含量高低的初筛。
所有样品均应至少采集3份平行样品,并用60ml样品瓶(或大于60ml其他规格的样品瓶)另外采集一份样品,用于测定高含量样品中的挥发性有机物和样品含水率。
7.1.1手工进样方式的采样方法
本采样方法适用于无自动进样器的吹扫捕集装置。
用铁铲或药勺将样品尽快采集至60ml样品瓶(或大于60ml其他规格的样品瓶)中,并尽量填满。
快速清除掉样品瓶螺纹及外表面上粘附的样品,密封样品瓶。
7.1.2自动进样方式的采样方法
本采样方法适用于带有自动进样器的吹扫捕集装置。
采样前,向每个40ml棕色样品瓶中放一个清洁的磁力搅拌棒,密封,贴标签并称重(精确到0.01g),记录其重量并在标签上注明。
采样时,用采样器采集适量样品到样品瓶中,快速清除掉样品瓶螺纹及外表面上粘附的样品,密封样品瓶。
注1:
若使用一次性塑料注射器采集样品,针筒部分的直径应能够伸入40ml样品瓶的颈部。
针筒末端的注射器部分在采样之前应切断。
一个注射器只能用于采集一份样品。
若使用不锈钢专用采样器,采样器需配有助推器,可将土壤推入样品瓶。
注2:
若初步判定样品中目标物含量小于200μg/kg时,采集约5g样品;若初步判定样品中目标物含量大于等于200μg/kg时,应分别采集约1g和5g样品。
7.2样品的保存
样品采集后应冷藏运输。
运回实验室后应尽快分析。
实验室内样品存放区域应无有机物干扰,在4℃以下保存时间为7d。
7.3样品含水率的测定
取5g(精确至0.01g)样品在105±5℃下干燥至少6h,以烘干前后样品质量的差值除以烘干前样品的质量再乘以100,计算样品含水率w(%),精确至0.1%。
8分析步骤
8.1仪器参考条件
8.1.1吹扫捕集装置参考条件
吹扫流量:
40ml/min;吹扫温度:
40℃;预热时间:
2min;吹扫时间:
11min;干吹时间:
2min;预脱附温度:
180℃;脱附温度:
190℃;脱附时间:
2min;烘烤温度:
200℃;烘烤时间:
8min;传输线温度:
200℃。
其余参数参照仪器使用说明书进行设定。
8.1.2气相色谱参考条件
进样口温度:
200℃;载气:
氦气;分流比:
30:
1;柱流量(恒流模式):
1.5ml/min;升温程序:
38℃(1.8min)→10℃/min→120℃→15℃/min→240℃(2min)。
8.1.3质谱参考条件
扫描方式:
全扫描;扫描范围:
35~270amu;离子化能量:
70eV;电子倍增器电压:
与调谐电压一致;接口温度:
280℃;其余参数参照仪器使用说明书进行设定。
注3:
为提高灵敏度,也可选用选择离子扫描方式进行分析,其特征离子选择参照附录B。
8.2校准
8.2.1仪器性能检查
用微量注射器移取1~2μlBFB溶液(5.7),直接注入气相色谱仪进行分析或加入到5ml空白试剂水(5.1)中通过吹扫捕集装置注入气相色谱仪进行分析。
用四级杆质谱得到的BFB关键离子丰度应符合表1中规定的标准,否则需对质谱仪的参数进行调整或者考虑清洗离子源。
若仪器软件不能自动判定BFB关键离子丰度是否符合表1标准时,可通过取峰顶扫描点及其前后两个扫描点离子丰度的平均值扣除背景值后获得关键离子丰度,并应符合表1标准。
背景值的选取可以是BFB出峰前20次扫描点中的任意一点,该背景值应是柱流失或仪器背景离子产生的。
注4:
使用离子阱或其他类型质谱仪时,BFB关键离子丰度标准可参照仪器制造商的说明执行。
8.2.2校准曲线的绘制
用微量注射器分别移取一定量的标准使用液(5.4)和替代物标准溶液(5.6)至空白试水(5.1)中,配制目标物和替代物浓度分别为5.00、20.0、50.0、100和200μg/L的标准系列。
用气密性注射器分别量取5.00ml上述标准系列至40ml样品瓶中(若无自动进样器,则直接加入至吹扫管中),分别加入10.0μl内标标准溶液(5.5),使每点的内标浓度均为50.0μg/L。
按照仪器参考条件(8.1),从低浓度到高浓度依次测定,记录标准系列目标物及相对应内标的保留时间、定量离子(第一或第二特征离子)的响应值。
图1为在本标准规定的仪器条件下,目标物的总离子流色谱图。
8.2.2.1用平均相对响应因子绘制校准曲线
标准系列第i点中目标物(或替代物)的相对响应因子(RRFi),按照公式
(1)进行计算。
标准系列目标物(或替代物)相对响应因子(RRF)的相对标准偏差(RSD)应小于等于20%。
8.2.2.2用最小二乘法绘制校准曲线
若标准系列中某个目标物相对响应因子(RRF)的相对标准偏差(RSD)大于20%,则此目标物需用最小二乘法校准曲线进行校准。
即以目标物和相对应内标的响应值比为纵坐标,浓度比为横坐标,绘制校准曲线。
注5:
若标准系列中某个目标物相对响应因子(RRF)的相对标准偏差(RSD)大于20%,则此目标物也可以采用非线性拟合曲线进行校准,其相关系数应大于等于0.99。
8.3测定
测定前,先将样品瓶从冷藏设备中取出,使其恢复至室温。
8.3.1低含量样品的测定
若初步判定样品中挥发性有机物含量小于200μg/kg时,用5g样品直接测定;初步判定浓度在200μg/kg~1000μg/kg之间时,用1g样品直接测定。
8.3.1.1若吹扫捕集装置无自动进样器时,先将吹扫管称重,加入适量样品后再次称重(精确到0.01g),将吹扫管装入吹扫捕集装置。
用微量注射器分别加入10.0μl内标(5.5)和10.0μl替代物(5.6)至用气密性注射器量取的5.0ml空白试剂水(5.1)中作为试料,放入吹扫管中,按照仪器参考条件(8.1)进行测定。
8.3.1.2若吹扫捕集装置带有自动进样器时,将7.1.2中的样品瓶轻轻摇动,确认样品瓶中的样品能够自由移动,称量并记录样品瓶重量(精确到0.01g)。
用气密性注射器量取5.0ml空白试剂水(5.1)、用微量注射器分别量取10.0μl内标(5.5)和10.0μl替代物(5.6)加入样品瓶中,按照仪器参考条件(8.1)进行测定。
注6:
当用1g样品分析时,若目标物未检出,需重新分析5g样品;若目标物浓度超过了标准系列最高点,应按照高含量样品测定方法(8.3.2)重新分析样品。
8.3.2高含量样品的测定
对于初步判定目标物含量大于1000μg/kg的样品,从60ml样品瓶(或大于60ml其他规格的样品瓶)中取5g左右样品于预先称重的40ml无色样品瓶中,称重(精确到0.01g)。
迅速加入10.0ml甲醇(5.2),盖好瓶盖并振摇2min。
静置沉降后,用一次性巴斯德玻璃吸液管移取约1ml提取液至2ml棕色玻璃瓶中,必要时,提取液可进行离心分离。
用微量注射器分别量取10.0μl~100μl提取液、10.0μl内标(5.5)和10.0μl替代物(5.6)至用气密性注射器
量取的5.0ml空白试剂水(5.1)中作为试料,放入40ml样品瓶中(若无自动进样器,则直接放入吹扫管中),按照仪器参考条件(8.1)进行测定。
注7:
若提取液不能立即分析,可于4℃以下暗处保存,保存时间为14d,分析前应恢复至室温。
注8:
若提取液中目标物浓度超过标准系列最高点,提取液可用甲醇适当稀释后测定;若采用高含量样品测定,当取100μl提取液进行分析,目标物浓度低于标准系列最低点时,应采用低含量样品测定方法重新分析样品。
8.3.3空白试验
用微量注射器分别量取10.0μl内标标准溶液(5.5)和10.0μl替代物标准溶液(5.6)至用气密性注射器量取的5.0ml空白试剂水(5.1)中,作为空白试料。
再将空白试料加入至40ml样品瓶中(若无自动进样器,则直接放入吹扫管中),按照仪器参考条件(8.1)进行测定。
9结果计算与表示
9.1目标物的定性分析
目标物以相对保留时间(或保留时间)和与标准物质质谱图比较进行定性。
9.2目标物的定量分析
根据目标物和内标第一特征离子的响应值进行计算。
当样品中目标物的第一特征离子有干扰时,可以使用第二特征离子定量,具体见附录B。
9.2.1试料中目标物(或替代物)质量浓度ρex的计算
9.2.1.1用平均相对响应因子计算
当目标物(或替代物)采用平均相对响应因子进行校准时,试料中目标物的质量浓度ρex按照公式(5)进行计算。
9.2.1.2用线性或非线性校准曲线计算
当目标物采用线性或非线性校准曲线进行校准时,试料中目标物质量浓度ρex通过相应的校准曲线计算。
9.2.2对于低含量样品,样品中目标物的含量(μg/kg)按照公式(6)进行计算。
9.2.3对于高含量样品,样品中目标物的含量(μg/kg)按照公式(7)进行计算。
注:
若样品含水率大于10%时,提取液体积Vc应为甲醇与样品中水的体积之和;若样品含水率小于等于10%,提取液体积Vc为10ml。
9.3结果表示
9.3.1当测定结果小于100μg/kg时,保留小数点后1位;当测定结果大于等于100μg/kg时,保留3位有效数字。
9.3.2当使用本标准中规定的毛细管柱时,测定结果为间二甲苯和对二甲苯两者之和。
11质量保证和质量控制
11.1目标物定性
11.1.1当使用相对保留时间定性时,样品中目标物相对保留时间(RRT)与校准曲线中该目标物相对保留时间(RRT)的差值应在0.06以内。
目标物的相对保留时间(RRT)按照公式(8)进行计算。
11.1.2扣除谱图背景后,将实际样品的质谱图与校准确认标准溶液的质谱图比较,实际样品中目标物质谱图中特征离子的相对丰度变化应在校准确认标准溶液的±30%之内。
注:
特征离子指目标物质谱图中三个相对丰度最大的离子,若质谱图中没有三个相对丰度最大的离子时,则指相对丰度超过30%的所有离子。
11.2每批样品分析之前或24h之内,需进行仪器性能检查,测定校准确认标准溶液和空白试验样品。
11.3校准
11.3.1校准曲线中部分目标物的最小相对响应因子应大于等于附表A.1中规定的限值。
所要定量的目标物相对响应因子(RRF)的RSD应小于等于20%;或线性、非线性校准曲线相关系数大于0.99,否则需更换捕集管、色谱柱或采取其他措施,然后重新绘制校准曲线。
当采用最小二乘法绘制线性校准曲线时,将校准曲线最低点的响应值带入曲线计算,目标物的计算结果应在实际值的70%~130%之间。
11.3.2应用校准确认标准溶液应在仪器性能检查之后进行分析。
校准确认标准溶液中内标与校准曲线中间点内标比较,保留时间的变化不超过10s,定量离子峰面积变化在50%~200%之间。
校准确认标准溶液中监测方案要求测定的目标物,其测定值与加入浓度值的比值在80%~120%之间,否则在分析样品前应采取校正措施。
若校正措施无效,则应重新绘制校准曲线。
11.4样品
11.4.1空白试验分析结果应满足如下任一条件的最大者:
(1)目标物浓度小于方法检出限;
(2)目标物浓度小于相关环保标准限值的5%;
(3)目标物浓度小于样品分析结果的5%。
若空白试验未满足以上要求,则应采取措施排除污染并重新分析同批样品。
当分析空白试验样品时发现苯和苯乙烯出现异常高值,表明Tenax可能变质失效,需进行确认,必要时需更换捕集管。
11.4.2每批样品应至少测定一个运输空白和一个全程序空白样品。
若怀疑样品受到污染,则需分析该空白样品,其测定结果应满足空白试验的控制指标(11.4.1),否则需查找原因,采取措施排除污染后重新采集样品分析。
11.4.3每批样品分析之前或24h之内,需进行仪器性能检查,测定校准确认标准溶液和空白试验样品。
11.4.4每一批样品(最多20个)应选择一个样品进行平行分析或基体加标分析。
所有样品中替代物加标回收率均应在70%~130%之间,否则应重复分析该样品。
若重复测定替代物回收率仍不合格,说明样品存在基体效应。
此时应分析一个空白加标样品,其中的目标物回收率应在70%~130%之间。
若初步判定样品中含有目标物,则须分析一个平行样,平行样品中替代物相对偏差应在25%以内;若初步判定样品中不含有目标物,则须分析该样品的加标样品,该样品及加标样品中替代物相对偏差应在25%以内。
12注意事项
12.1主要污染来自溶剂、试剂、不纯的惰性吹扫气体、玻璃器皿和其他样品处理设备。
应使用纯化后的溶剂、试剂和惰性吹扫气体,样品贮存和分析时应当尽量避免实验室中其他溶剂的污染,玻璃器皿和其他样品处理设备应清洗干净,不应使用非聚四氟乙烯密封垫圈、塑料管或橡胶组分的流量控制器,气相色谱载气管线及吹扫气管线应是不锈钢管或铜管,实验室分析人员的衣物不应有溶剂污染,特别是二氯甲烷污染。
12.2在分析完高含量样品后,应分析一个或多个空白试验样品检查交叉污染。
12.3若样品中含有大量水溶性物质、悬浮物、高沸点有机化合物或高含量有机化合物,在分析完后需用肥皂水和空白试剂水(5.1)清洗吹扫装置和进样针,然后在烘箱中105℃烘干。
12.4若样品中有些高沸点有机化合物被吹脱出来,它们将在目标物之后流出色谱柱。
在程序升温完成后,气相色谱应有烘烤时间确保高沸点有机化合物流出色谱柱。
12.5酮类物质的吹扫温度升至80℃,吹扫捕集效率和回收率可明显提高。
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