细胞培养工作总结范文word版 13页.docx
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细胞培养工作总结范文word版13页
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细胞培养工作总结
篇一:
细胞培养技术个人总结
总结---细胞培养
一.基本理论概论
原代培养:
也叫初代培养,指直接从体内取出的细胞、组织和器官进行的第一次的培养。
传代培养:
将细胞从一个培养瓶转移到另外一个培养瓶即称为传代或传代培养。
细胞系:
原代培养物成功传代后,则称之为细胞系。
(如细胞系的生存期有限,则称之为有限细胞系;已获无限繁殖能力能持续生存的细胞系,称连续细胞系或无限细胞系。
)
细胞株:
通过选择法或克隆形成法从原代培养物或细胞系中获得具有特殊性质或标志物称为细胞株。
培养类型:
细胞培养,组织培养,器官培养。
细胞生长的方式:
贴附生长,悬浮生长
培养细胞的形态(形态不一定,环境改变形态可能改变):
成纤维性型细胞,上皮型细胞(单层膜样生长),游走性细胞(游散生长,常有伪足跟突起)
二.培养过程及要点(切记无菌操作)
(一)工作环境的处理
1.实验进行前,无菌室及无菌操作台以紫外灯照射30-60分钟灭菌,以70%酒精擦拭无菌操作抬面,并开启无菌操作台风扇运转10分钟后,才开始实验操作。
每次操作只处理一株细胞株,且即使培养基相同亦不共享培养基,以避免失误混淆或细胞间污染。
实验完毕后,将实验物品带出工作台,以70%酒精擦拭无菌操作抬面。
操作间隔应让无菌操作台运转10分钟以上后,再进行下一个细胞株之操作。
2.实验用品以70%酒精擦拭后才带入无菌操作台内。
实验操作应在台面之中央无菌区域,勿在边缘之非无菌区域操作。
无菌操作工作区域应保持清洁及宽敞,必要物品,例如试管架、吸管吸取器或吸管盒等可以暂时放置,其它实验用品用完即应移出,以利于气流之流通。
3.小心取用无菌之实验物品,避免造成污染。
勿碰触吸管尖头部或是容器瓶口,亦不要在打开之容器正上方操作实验。
容器打开后,以手夹住瓶盖并握住瓶身,倾斜约45°角取用,尽量勿将瓶盖盖口朝上放置桌面。
吸管口切勿碰到容器瓶口
4.工作人员应注意自身之安全,须穿戴实验衣及手套后才进行实验。
对于来自人类或是病毒
感染之细胞株应特别小心操作,并选择适当等级之无菌操作台(至少ClassII)。
操作过程中,应避免引起aerosol之产生,小心毒性药品,例如DMSO及TPA等,并避免尖锐针头之伤害等。
5.定期检测下列项目:
CO2钢瓶之CO2压力。
CO2培养箱之CO2浓度、温度、及水盘是否有污染(水盘的水用无菌水,每周更换)。
无菌操作台内之airflow压力,定期更换紫外线灯管及HEPA过滤膜,预滤网(300小时/预滤网,3000小时/HEPA)。
6.水槽可添加消毒剂(Zephrin1:
750),定期更换水槽的水。
(二)试验用玻璃塑料用品清洗及其消毒灭菌
清洗:
(1)玻璃器皿的清洗(酸液由重铬酸钾,浓硫酸,蒸馏水配置)
浸泡—刷洗—浸酸—冲洗
(2)胶塞的清洗
刚买回的常含滑石粉等杂质,先用自来水冲洗后再按常规方法处理。
2%NaoH或洗衣粉煮沸10-20分钟---1%稀Hcl浸泡30分钟或蒸馏水冲洗后再煮沸10-20分钟—晾干备用
(3)塑料制品的清洗
2%NaoH浸泡过夜—自来水冲洗--5%稀Hcl浸泡30分钟—自来水和蒸馏水冲干备用。
消毒:
(1)物理消毒法(紫外线,湿热,烘干,过滤)含碳酸氢钠溶液要过滤,高压会分解,培养液、平衡盐溶液及其它需要灭菌的液体:
121℃,15磅,20分钟;布类、玻璃制品、金属器械等物品:
先121℃,15磅,20分钟,然后在烘箱中烘干;玻璃瓶:
干热灭菌170℃,4小时。
(2)化学消毒法(70%酒精,千分之一的新洁尔灭)
(3)抗生素:
培养用液灭菌或预防培养物污染
(三)培养物的污染及控制
污染种类:
(1)细菌污染:
培养细胞受细菌污染后,会出现培养液变混浊,pH改变。
污染后细胞发生病理改变,胞内颗粒增多、增粗,最后变圆脱落死亡。
(2)真菌污染:
培养细胞受真菌污染后,可见培养液中漂浮着白色或浅黄色的小点,有的散在生长,培养液一般不发生混浊;倒置显微镜下可见丝状、管状或树枝状的菌丝纵横交错在细胞之间或培养基中,有的呈链状排列。
(3)支原体污染:
培养细胞受支原体污染后,部分敏感细胞可见细胞生长增殖变慢,部分细胞变圆,从瓶壁脱落。
但多数细胞污染后无明显变化,或略有变化,若不及时处理,还会产生交叉污染。
(4)病毒污染:
尽管病毒污染的细胞不影响原代培养,但生产疫苗是不安全的。
因此,潜在病毒是细胞大量生产和疫苗、干扰素等生物制品制作中的难题。
(5)非同种细胞污染:
污染来源:
(1)不洁的动物组织标本:
正常情况下组织来源是不带菌的,但由于取材不小心也会染菌,也有可能动物体本身带菌,不用浓的抗生素清洗,会导致培养污染。
(2)空气:
如果无菌操作区与外界隔离不严,空气中会带菌。
其次,超净台使用过久,滤板堵塞也会污染。
工作时不带口罩外界气流过强会污染。
再者,南方空气潮湿,空气中容易带菌,操作不注意会染菌。
(3)清洗消毒:
培养用液除菌不彻底,培养器具清洗消毒不彻底。
(4)操作不过关
1、实验前未检查器械和液体是否污染
2、操作者未带口罩帽子,呼出空气中含细菌和支原体
3、培养瓶未用75%酒精擦拭和灼烧
4、操作不当吸管或培养用品接触到污染物,如皮肤,瓶壁
5、操作者说话大声,来回走动,扬起灰尘。
预防和控制
污染是细胞培养的大敌。
预防和避免污染是细胞培养成功的关键之一。
细胞培养细胞一经污染,多数较难处理。
如果污染细胞价值不大,宜弃之;在寻找原因后彻底消毒操作室,复苏或重新购置细胞,再培养。
预防
1、培养用液、器皿要清洗消毒,防止污染。
无菌室无菌器械要定期消毒
2、操作者要细心稳重。
进入无菌是前要用肥皂洗手,穿好隔离衣帽口罩,检查物品无污染。
进入室内要少说话走动打喷嚏要向背后,用酒精棉球擦手,瓶口,并灼烧瓶口。
用酒精擦台面,在超净台中央操作,切勿一根吸管用到底,要更换吸管,操作时吸管不能碰到培养瓶口,防止污染,试验完成要做好标记。
临走带走物品,用酒精擦台面。
不可直接进行下一个试验。
3、防止细胞交叉污染,及早留种保持,防止污染
控制
(一)、使用抗生素:
一般对细菌有用。
预防用药比污染后用药好,联合用药比单独用药好。
一般用青霉素100u/ml,链霉素100ug/ml,清除用药是常量的5-10倍采用5~10倍于常用量的冲击法,加入高浓度抗生素后作用24~48h,再换入常规培养物,有时可能奏效。
抗生素常用量和效果如果下:
抗生素细菌真菌支原体常用量
青霉素G+100u/ml
链霉素G-100ug/ml
庆大霉素G+/G-200ug/ml
四环素G+/G-10ug/ml
卡那霉素G+/G-50ug/ml
两性霉素B+2ug/ml
制霉菌素+25ug/ml
(二)、加温除菌:
根据支原体不耐热的特点,可将受支原体污染的细胞至于41摄氏度作用5~10h(最长可达18h),以杀灭支原体。
但41摄氏度对细胞本身也有较大影响,故在处理前应先进行预实验,确定出最大限度杀伤支原体而对细胞影响较小的最佳处理时间。
(三)、使用支原体特异性血清:
抗血清结合支原体。
一般支原体污染无太大价值均弃掉。
(四)、其他方法:
动物体内接种除菌,加巨噬细胞。
动物体内接种:
受污染的肿瘤细胞可接种在同种动物皮下或腹腔内,利用动物的免疫功能消灭污染的微生物,而肿瘤细胞却能在动物体内继续生长,待一定时间后从体内取出肿瘤细胞进行培养。
与巨噬细胞共培养:
巨噬细胞在体外可存活7~10天,并保持吞噬、消化微生物的能力。
利用这一特点,可将少量的污染细胞与足够量的巨噬细胞共培养,从而消除污染。
篇二:
细胞培养技术总结
细胞培养技术总结
(,,,)1·培养环境的要求(切记无菌操作)
工作环境的处理
1.实验进行前,无菌室及无菌操作台以紫外灯照射30-60分钟灭菌,以70%酒精擦拭无菌操作抬面,并开启无菌操作台风扇运转10分钟后,才开始实验操作。
每次操作只处理一株细胞株,且即使培养基相同亦不共享培养基,以避免失误混淆或细胞间污染。
实验完毕后,将实验物品带出工作台,以70%酒精擦拭无菌操作抬面。
操作间隔应让无菌操作台运转10分钟以上后,再进行下一个细胞株之操作。
2.实验用品以70%酒精擦拭后才带入无菌操作台内。
实验操作应在台面之中央无菌区域,勿在边缘之非无菌区域操作。
无菌操作工作区域应保持清洁及宽敞,必要物品,例如试管架、吸管吸取器或吸管盒等可以暂时放置,其它实验用品用完即应移出,以利于气流之流通。
3.小心取用无菌之实验物品,避免造成污染。
勿碰触吸管尖头部或是容器瓶口,亦不要在打开之容器正上方操作实验。
容器打开后,以手夹住瓶盖并握住瓶身,倾斜约45°角取用,尽量勿将瓶盖盖口朝上放置桌面。
吸管口切勿碰到容器瓶口4.工作人员应注意自身之安全,须穿戴实验衣及手套后才进行实验。
对于来自人类或是病毒。
感染之细胞株应特别小心操作,并选择适当等级之无菌操作台(至少ClassII)。
操作过程中,应避免引起aerosol之产生,小心毒性药品,例如DMSO及TPA等,并避免尖锐针头之伤害等。
2·仪器设备的要求
定期检测下列项目:
CO2钢瓶之CO2压力。
CO2培养箱之CO2浓度、温度、及水盘是否有污染(水盘的水用无菌水,每周更换)。
无菌操作台内之airflow压力,定期更换紫外线灯管及HEPA过滤膜,预滤网(300小时/预滤网,3000小时/HEPA)。
水槽可添加消毒剂(Zephrin1:
750),定期更换水槽的水。
3·无菌处理
1)器具的无菌操作试验用玻璃塑料用品清洗及其消毒灭菌
清洗:
a玻璃器皿的清洗(酸液由重铬酸钾,浓硫酸,蒸馏水配置)
浸泡—刷洗—浸酸—冲洗
b胶塞的清洗
刚买回的常含滑石粉等杂质,先用自来水冲洗后再按常规方法处理。
2%NaoH或洗衣粉煮沸10-20分钟---1%稀Hcl浸泡30分钟或蒸馏水冲洗后再煮沸10-20分钟—晾干备用
c塑料制品的清洗2%NaoH浸泡过夜—自来水冲洗--5%稀Hcl浸泡30分钟—自来水和蒸馏水冲干备用。
2)消毒灭菌:
a物理消毒法(紫外线,湿热,烘干,过滤)含碳酸氢钠溶液要过滤,高压会分解,培养液、平衡盐溶液及其它需要灭菌的液体:
121℃,15磅,20分钟;布类、玻璃制品、金属器械等物品:
先121℃,15磅,20分钟,然后在烘箱中烘干;玻璃瓶:
干热灭菌170℃,4小时b化学消毒法(70%酒精,千分之一的新洁尔灭)
c抗生素:
培养用液灭菌或预防培养物污染
3)无菌的操作技术
培养物的污染及控制
污染种类:
(1)细菌污染:
培养细胞受细菌污染后,会出现培养液变混浊,pH改变。
污染后细胞发生病理改变,胞内颗粒增多、增粗,最后变圆脱落死亡。
(2)真菌污染:
培养细胞受真菌污染后,可见培养液中漂浮着白色或浅黄色的小点,有的散在生长,培养液一般不发生混浊;倒置显微镜下可见丝状、管状或树枝状的菌丝纵横交错在细胞之间或培养基中,有的呈链状排列。
(3)支原体污染:
培养细胞受支原体污染后,部分敏感细胞可见细胞生长增殖变慢,部分细胞变圆,从瓶壁脱落。
但多数细胞污染后无明显变化,或略有变化,若不及时处理,还会产生交叉污染。
(4)病毒污染:
尽管病毒污染的细胞不影响原代培养,但生产疫苗是不安全的。
因此,潜在病毒是细胞大量生产和疫苗、干扰素等生物制品制作中的难题。
(5)非同种细胞污染:
污染来源:
(1)不洁的动物组织标本:
正常情况下组织来源是不带菌的,但由于取材不小心也会染菌,也有可能动物体本身带菌,不用浓的抗生素清洗,会导致培养污染。
(2)空气:
如果无菌操作区与外界隔离不严,空气中会带菌。
其次,超净台使用过久,滤板堵塞也会污染。
工作时不带口罩外界气流过强会污染。
再者,南方空气潮湿,空气中容易带菌,操作不注意会染菌。
(3)清洗消毒:
培养用液除菌不彻底,培养器具清洗消毒不彻底。
(4)操作不过关
4试剂及器材的准备
1)培养基1.液体培养基贮存于4oC冰箱,避免光照,实验进行前放在37oC水槽中温热。
2.液体培养基(加血清)存放期为六个月,期间glutamine(谷氨酰胺)可能会分解,若细胞生长不佳,可以再添加适量glutamine。
3.粉末培养基配制(以1升为例):
3.1.细胞培养基通常须添加10%血清,因此粉末培养基之配制体积为900ml,pH为7.2-7.4。
NaHCO3为另外添加,若将NaHCO3粉末直接加入液体培养基中会造成pH之误差,或局部过碱。
因此粉末培养基及NaHCO3粉末应分别溶解后才混合,然后用CO2气体调整pH,而非用强酸(HCl)或强碱(NaOH),因为氯离子对细胞生长可能有影响,且贮存时培养基的pH易发生改变。
2)PBS:
0.01M,PH=7.4的PBS配方,500ml.
Na2HPO40.575g;
NaH2PO40.148g;
Nacl4.25g.
3)胰酶:
对一般细胞0.25%胰酶
4)水:
新鲜配制的三蒸水或去离子水
5)细胞冻存液:
培养基(无血清):
血清:
DMSO比例7:
2:
1
DMSO常温避光保存,不能高温高压灭菌。
DMEM也不能高温高压,可以过虑除菌。
6)其他:
HEPES液生物缓冲液,化学性质稳定,在PH7.2~7.6范围内,比NaHCO3缓冲液的缓冲能力更强。
7)培养器材:
超净台、恒温培养箱、倒置显微镜、液氮储存罐、电热鼓风干燥箱、冰柜、电子天平、恒温水浴槽、离心机、压力蒸汽消毒器。
a玻璃器材:
无菌室培养皿、滴流瓶、刻读吸管、离心管、培养瓶、烧杯、量筒、三角烧瓶
b塑料器材:
多孔培养板、培养皿、培养瓶
c橡皮器材:
橡皮制品(最好是硅制品)做各种瓶或试管的塞子、盖子。
d金属器材:
剪刀、镊子、手术刀、解剖刀、血管钳、组织镊、眼科镊及各种型号针头
e其他物品:
纱布、注射器和针头
5.实验操作方法
1)细胞复苏:
冻存复苏后的状态主要与冻存保护种类、浓度、以及细胞复苏方法和复苏后培养液中小血清浓度等有关。
二甲基亚砜是一种分子量小、非常强的溶解能力和非凡渗透能力的化学物质用最广泛的体外培养细胞冻存保护剂[7],其常用浓度为10%~20%,不同种属细胞的最适浓度也存在一定差别,例如,10%二甲基亚砜浓度对长期冻存K562细胞较为适宜。
2)细胞传代:
细胞在原代培养1~4周后,需要进行分离培养,否则细胞会因生存空间不足或由于细胞密度过大引起营养枯竭,影响细胞的生长繁殖。
贴壁型细胞的传代:
传代时需要用胰酶将细胞消化,使其从支持物上脱落,或用EDTA溶液与胰酶按1:
1或1:
2比例混合后联合使用。
过滤除菌后,小量分装,保
存与-20℃。
消化时吸去培养瓶内的培养液,加入适量的EDTA溶液与胰酶的混合液,以能覆盖细胞层为度,将培养瓶平放,37℃作用3~5min,加入Hanks液,1000r/min离心5min即可除去消化液,洗1~2次后加入完全培养液,计数,置培养皿或培养瓶中培养
悬浮型细胞的传代:
传代时用吸管将细胞吹打均匀,特别是一些成团生长的细胞,应将细胞团块打散。
根据细胞生长状况的不同,用吸管将细胞悬液吸去适当的量,然后再加入完全培养液至原体积。
3)细胞冻存:
传代培养的细胞,如果暂时不用,,可以冷冻保存,需要时再复苏。
冷冻前一日更换半量或全量培养液,观察细胞生长状态。
冷冻细胞时,所用的冷冻保存液需新鲜配制,在新鲜培养液中加入DMSO至终浓度5%-10%,加入血清至终浓度20%,混合均匀即成冷冻保存液,室温待用。
将待保存的细胞离心(3000转以下3~5min),去除上清,加入适量冷冻保存液,混匀,分装于冷冻保存管中。
冷冻的方法有两种,一种是传统方法,按以下程序进行:
4℃10min~-20℃30min~-80℃16~18小时或隔夜,放入液氮长期保存。
另一种是程序降温法:
用等速降温机以~1-3℃/min的速度由室温降至-120℃,放于液氮罐长期保存。
注意事项
1、实验前未检查器械和液体是否污染
2、操作者未带口罩帽子,呼出空气中含细菌和支原体
3、培养瓶未用75%酒精擦拭和灼烧
4、操作不当吸管或培养用品接触到污染物,如皮肤,瓶壁5、操作者说话大声,来回走动,扬起灰尘。
实验结果
篇三:
细胞培养总结
细胞培养学习总结
--贴壁细胞培养技术
一、细胞培养一般流程:
㈠、复苏:
1、实验前做好相关准备工作(水浴锅37℃;超净工作台的无菌环境;准备好实验相关仪器和试剂)。
2、把冻存管从液氮灌中取出来,立即投入37℃(≦40℃)水浴锅中,晃动冻存管,使液体在1min以内全部融解(关键步骤),用酒精棉擦拭其外壁,放到超净工作台里。
3、把上述细胞悬液吸到15ml的离心管中,加入适量培养基,(用培养基把冻存管洗一遍,把粘在壁上的细胞都洗下来,转移时不要直接倒,以防污染),1000转离心1-3min(可根据所培养细胞调整)。
4、吸弃上清液,加适量培养基把细胞吹散成细胞悬液,转移到培养瓶中,加适量完全培养基(常为覆盖培养瓶底面即可)。
5、标好细胞种类和日期、培养人名字等,放到CO2培养箱中培养,细胞贴壁后再换培养基。
6、注意观察细胞生长状态,及时换液或传代。
㈡、换液:
1、实验前做好相关准备工作(超净工作台的无菌环境;准备好实验相关仪器和试剂)。
2、取出培养瓶,用75%酒精消毒后放入超净实验台。
3、吸弃旧培养液,用适量(如2ml)PBS(磷酸盐缓冲液)清洗细胞(可根据细胞状态洗1-2遍,一般从没有细胞的那一侧倒掉)。
4、加入适量新鲜完全培养基,放回培养箱继续培养。
㈢、传代:
1、实验前做好相关准备工作(超净工作台的无菌环境;准备好实验相关仪器和试剂)。
2、取出培养瓶,用75%酒精消毒后放入超净实验台。
3、吸弃旧培养液,用适量(如2ml)PBS(磷酸盐缓冲液)清洗细胞(可根据细胞状态洗1-2遍)。
(前面步骤同换液)
4、加适当的胰蛋白酶(0.05%)(能覆盖细胞就行),放入细胞培养箱中消化1-2min(根据不同类型细胞而定)。
5、细胞都变圆后加如入等体积的完全培养基终止消化。
6、用滴管缓慢吹打细胞,使细胞都悬浮起来成细胞悬液,吸到15ml的离心管中,1000转离心1-3min。
7、倒掉上清液,加1-2ml完全培养基,将细胞吹散成单个细胞。
8、根据细胞浓度把细胞传到几个培养瓶中,加入适量完全培养基(一般癌细胞一个培养瓶分2个),放回培养箱中继续培养。
㈣、冻存:
1、实验前做好相关准备工作(预先配置好冻存液放入4℃保存,常为
10%DMSO+90%血清,配制过程中加入DMSO要缓慢,且边滴边摇;超净工作台的无菌环境;准备好实验相关仪器和试剂)。
2、取出培养瓶,用75%酒精消毒后放入超净实验台。
3、吸弃旧培养液,用适量(如2ml)PBS(磷酸盐缓冲液)清洗细胞(可根据细胞状态洗1-2遍)。
4、加适当的胰蛋白酶(0.05%)(能覆盖细胞就行),放入细胞培养箱中消化1-2min(根据不同类型细胞而定)。
5、细胞都变圆后加入等体积的完全培养基终止消化。
6、用滴管缓慢吹打细胞,把细胞都悬浮起来成细胞悬液,吸到15ml的离心管中,1000转离心1-3min。
(同细胞传代中步骤)
7、倒掉上清液,加入预制的冻存液制成细胞悬液,分装到灭菌的冻存管中,(注意不要加满,预留其结冰后的空间,一般1.8ml的冻存管加入≦1.5ml的细胞悬液)。
8、写明细胞种类、冻存日期。
放入4℃冰箱30min,-20℃冰箱30min,-80℃冰箱过夜,最后放入液氮罐中保存。
一、细胞培养注意事项:
注意无菌操作,以防细胞污染,定期检查培养箱、超净台,按时观察细胞状态,实验过程中注意保护自身安全。
㈠、注意无菌操作
1、实验进行前,超净工作台以紫外灯照射30-60min灭菌,并开启操作台风扇运转30min后,才开始实验操作。
2、实验进行前,实验人员应穿戴好实验服,口罩,手套。
3、所有拿进实验台的物品都应用75%酒精消毒。
4、在酒精灯10cm内进行操作,开盖或封盖前应用酒精灯灼烧灭菌,但注意对有滤膜的培养瓶不应灼烧,以免细胞污染。
5、每次尽量只处理一个细胞株,以免发生细胞间污染。
6、实验结束后,处理好废液,用75%酒精擦净台面,开启紫外,照射5min以上。
㈡、定期检查项目
1、培养箱之CO2浓度、温度、及水盘是否有污染(水盘的水用无菌水,每周更换)。
2、CO2钢瓶之CO2压力。
3、超净工作台内之气流压力,定期更换紫外线灯管及HEPA(高效空
气净化)过滤膜,预滤网(300小时/预滤网,3000小时/HEPA)。
㈢、观察细胞状态:
1、正常状态下,细胞贴壁生长,当培养液颜色变淡时,应换液。
对于
培养基中添加酚红指示剂的,若紫色变深,则应检查CO2供应,若
颜色变黄,则可能是换液或传代频率太低。
2、当培养瓶中细胞覆盖率达80%以上时,应传代。
3、若发现很浑浊,且有许多漂浮死细胞时,可
能细胞被污染,应丢弃
被污染细胞并对培养箱进行灭菌操作。
二、所需设备
CO2培养箱(最好是内置紫外灯);超净工作台;倒置显微镜;液氮罐;低速离心机;恒温水浴锅;冰箱(-80℃)、(4℃及-20℃);高压灭菌锅;电热鼓风干燥箱;
三、所需仪器及试剂及易耗品
1、仪器:
培养瓶(最好是带滤膜);酸缸;滴管;胶头;离心管(15ml、50ml);酒精灯;打火机;废液缸(烧杯500ml);冻存管;封口膜;镊子;标记笔;棉花;
2、试剂:
基础培养基(RTMI-1640培养基;MEM培养基;DMEN培养基;无血清培养基等);血清(小牛血清、胎牛血清、马血清等);胰酶(trypsin-EDTAsolution);PBS(磷酸缓冲盐溶液);DMSO(二甲基亚砜);双抗(青霉素钠+链霉素);
3、易耗品:
手套(透明手套;橡胶手套);口罩;(另白大褂)
四、仪器回收利用:
滴管、离心管清洗流程,
1、滴管清洗过程:
酸泡(1星期)--清水冲洗(20遍)--超声洗涤20min(2遍)--去离子水冲洗(10遍以上)--晾干—烘箱干燥—高压灭菌—烘箱干燥
2、离心管清洗过程
洗衣粉水泡(1星期)--清水冲洗(10遍以上)--去离子水冲洗(10遍以上)--晾干—烘箱干燥—高压灭菌—烘箱干燥
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