水处理微生物学实验.docx
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水处理微生物学实验
2012.10.27水10—1、2班水处理微生物学实验
实验时间安排星期六(2012、10、27)
水1班上午8:
30---12:
00、水2班下午2:
30---6:
00.
每班又分为7小组,由班长把名单发到我的邮箱里hezhennana@)
四个实验一起做,动手能力强的可能3个小时就够了,动手弱的要5个多小时或更长,所以选着小组时搭配起来比较好,5人的合作很重要,做完一个实验就要交上实验报告,提前复习填好内容,实验后把图或数字填上才能进行下个实验。
)
实验一、普通光学显微镜的使用
标本图片、
结果:
(1)绘图说明你所观察到的菌片的形态特征。
讲解:
显微镜的使用。
低倍镜的使用、高倍镜的使用。
实验二、酵母菌的形态观察
自制观察标本图片、
结果:
(1)酵母菌死活细胞的检查
讲解:
压滴法制片
问题:
在酵母菌死、活细胞的观察中,使用美蓝染液有何作用?
酵母菌和细菌细胞在形态、结构上有何区别?
实验三、微生物细胞个数的直接计数法
讲解:
酵母菌悬液制作方法,
血球计数板的使用与清洗,显微镜计数方法、
实验报告:
(取液5个中方格共有80小方格)。
计数室
各中方格中微生物数目
微生物个数/ml
二室平均值
1
2
3
4
5
第一室
第二室
实验四、综合实验(无菌材料的灭菌前的准备与包扎、灭菌锅的消毒、样品的稀释液的制备、细菌的革兰氏染色)
标本:
大肠杆菌
涂片→干燥→固定→染色(初染→媒染→脱色→复染)→镜检
问题:
哪些环节会影响革兰色染色结果的正确性?
其中最关键的环节是什么?
水处理微生物学实验-能源与环境学院
实验一:
普通光学显微镜的使用方法
实验目的:
1熟悉光学显微镜基本结构和用途;
2掌握低倍镜、高倍镜使用方法;
3掌握使用显微镜观察微生物的形态;
实验内容:
1.光学显微镜的构造
(1)、机械系统部分。
(2)、光学系统部分。
(3)、照明系统部分。
2.光学显微镜的使用
取镜放镜对光放片调焦(粗调焦和细调焦)。
3.实验器材:
1显微镜、2玻片标本、3酵母菌、
4.载玻片、盖玻片、擦镜纸、5香柏油、二甲苯、
低倍镜的使用:
先将低倍物镜的位置固定好,然后放置标本片,转动反光镜,调好光线,将物镜提高,向下调至看到标本,再用细调对准焦距进行观察。
除少数显微镜外,聚光镜的位置都要放在最高点。
如果视野中出现外界物体的图像,可以将聚光镜稍微下降,图像就可以消失。
聚光镜下的虹彩光圈应调到适当的大小,以控制射入光线的量,增加明暗差。
高倍镜的使用:
显微镜的设计一般是共焦点的。
低倍镜对准焦点后,转换到高倍镜基本上也对准焦点,只要稍微转动微调即可。
虹彩光圈要放大,使之能形成足够的光锥角度。
稍微上下移动聚光镜,观察图像是否清晰。
油镜的使用方法:
(1)将标本置载物台上,用标本推进器固定,将标本移于接物镜下。
先用低倍镜找出标本位置,然后提高镜筒,在标本要观察的部位滴1滴香柏油后转换成油镜。
(2)从侧面观察并缓慢转动粗调节器,使镜头下移,直至油镜头浸没在油滴内接近玻片时为止。
将眼睛移至接目镜,一边观察,一边缓慢调节细调节器,使镜筒上升(只能上升,不能下降,以防压碎标本片和损坏油镜),待看到模糊物像后再缓慢调节细调节器,直至清晰看到染色菌片时为止。
使用油镜时需要在玻片上滴加香柏油,这是因为:
油镜的放大倍数远远高于透镜,至标本片透过的光线,因玻片和空气介质密度不同,而使部分光线经载玻片和空气折射后不能进入透镜,入射光线较少,物象不清晰。
在油镜和标本片之间滴加与玻璃折光率(n=1.52)相近的香柏油(n=1.515),使进入油镜的光线增多,视野光亮度增强,物象清晰。
问题思考:
对颜色深的标本与颜色浅的标本在观察过程中有何不同?
如何根据观察对象使用镜头?
为什么先用低倍镜观察
实验二、酵母菌的形态观察
实验目的:
1、观察酵母菌的个体形态及出芽繁殖方式。
2、学习掌握区分酵母菌死、活细胞的染色方法。
实验原理:
酵母菌是单细胞的真核微生物,细胞核和细胞质有明显分化,个体比细菌大的多,酵母菌的形态通常有球状,椭圆状等多种。
酵母菌的无性繁殖有芽殖、裂殖和产生掷芽孢:
酵母菌母细胞在一系列的芽殖后,如果长大的子细胞与母细胞并不分离,就会行成藕节状的假菌丝。
实验器料:
1显微镜、2玻片标本、3酵母菌、接种针
4载玻片、盖玻片、擦镜纸、5香柏油、二甲苯、
制片方法:
取一洁净的载玻片,在载玻片同一位置滴加1滴酵母液和加一滴吕氏碱性美蓝染液,使菌体与染液均匀混合。
用镊子夹盖玻片一块,小心地盖在液滴上。
盖片时应注意,不能将盖玻片平放下去,应先将盖玻片的一边与液滴接触,然后将整个盖玻片慢慢放下,这样可以避免产生气泡。
将制好的水浸片放置观察台上镜检。
先用低倍镜后换高倍镜观察酵母的形态和出芽情况,同时可以根据是否染上颜色来区别死、活细胞。
问题:
1、在酵母菌死、活细胞的观察中,使用美蓝染液有何作用?
2、酵母菌和细菌细胞在形态、结构上有何区别?
实验三:
微生物细胞个数的直接计数法
实验目的:
1学习用血球计数板计酵母细胞数。
2学习测定酵母细胞死亡率。
实验器材:
酵母菌悬液,血球计数板,显微镜,盖玻片,无菌毛细管,吸水纸
基本原理:
利用血球计数板在显微镜下直接计数,直观、快速。
将经过适当稀释的菌悬液放在血球计数板与盖玻片之间的计数室中,在显微镜下进行计数。
由于计数室的容积是一定的,可根据观察到的数目换算成单位体积的总数目,此法计得的是菌的总数,故称总菌计数法。
血球计数板刻有两方格网,每网分九大方格,中间为计数室。
计数室为25×16(16×25)小方格。
计数时常数五个中格的总数,换算出1ml中的总共菌数。
死亡率测定的原理为:
美兰溶液是对细胞无毒性的、弱氧化性的染液,其氧化形态无色,还原态兰紫色。
活细胞具有还原能力,能将美兰溶液还原为无色,而死细胞不具还原能力。
血球计数板的使用方法
血球计数板是一块特制的厚型载玻片,玻片中央刻有四条槽,中央两条槽之间的平面比其它平面略低,中央有一小槽,槽的两边的平面上各刻有9个大方格。
中间的一个大方格为计数室,它的长、宽各为1mm,深度为0.1mm,容积为0.1mm3。
计数板的规格是把大方格分成25中格,每一中格分成16小格,总共也是400小格。
计算方法如下:
25×16计数板的计算:
细胞数/(ml)=
×400×10000×稀释倍数
计数原则:
计上不计下,计左不计右。
基本原理:
酵母菌是多形的、不运动的单细胞微生物,细胞核与细胞质已有明显的分化,菌体比细菌大。
繁殖方式也较复杂,无性繁殖主要是出芽生殖,仅裂殖酵母属是以分裂方式繁殖;有性繁殖是通过接合产生子囊孢子。
本实验通过用美蓝染色制成水浸片。
操作步骤:
1.稀释:
将酵母菌悬液进行适当稀释,菌液如不浓,可不必稀释。
2.镜检计数室:
在加样前,先对计数板的计数室进行镜检。
若有污物,则需清洗后才能进行计数。
3.加样品:
将清洁干燥的血球计数板盖上盖玻片,再用无菌的细口滴管将稀释的酵母菌液由盖玻片边缘滴一小滴(不宜过多),让菌液沿缝隙靠毛细渗透作用自行进入计数室,一般计数室均能充满菌液。
注意不可有气泡产生。
清洗血球计数板
使用完毕后,将血球计数板在水笼头上用水柱冲洗,切勿用硬物洗刷,用手指肚轻轻搽洗,洗完后自行晾干或吹干。
镜检,观察每小格内是否有残留菌体或其他沉淀物。
若不干净,则必须重复洗涤至干净为止。
显微镜计数方法:
静止3分钟后,将血球计数板置于显微镜载物台上,先用低倍镜查找到计数室所在位置,然后换成高倍镜进行计数。
在计数前若发现菌液太浓或太稀,需重新调节稀释度后再计数。
一般样品稀释度要求每小格内约有5―10个菌体为宜。
每个计数室要选5个中格(可选4个角和中央的中格)中的菌体进行计数。
位于格线上的菌体一般只数上方和右边线上的。
如遇酵母出芽,芽体大小达到母细胞的一半时,即作两个菌体计数。
计数一个样品要从两个计数室中计得的值来计算样品的含菌量。
思考题:
(1)用血球计数板的误差主要来自哪些方面?
如何减少误差?
(2)为什么活细胞能使美兰脱色?
实验四、综合实验
实验目的:
细菌的革兰氏染色法
1.学习微生物的染色原理、染色的基本操作技术,
2.掌握微生物的一般染色和革兰氏染色法。
染色原理:
革兰氏染色原理:
一般细菌的机体是无色透明的,在显微镜下,由于光源是自然光,使微生物体与其背景反差小,不易看清微生物的形态和结构,若增加其反差,微生物的形态就可看得清楚。
通常用染料将菌体染上颜色以增加反差,便于观察。
革兰氏染色法是细菌学中很重要的一种鉴别染色法。
它可将细菌区别为革兰氏阳性菌和革兰氏阴性菌两大类。
它的染色步骤如下:
先用草酸铵结晶紫染色,经碘一碘化钾(媒染剂)处理后用乙醇脱色,最后用蕃红液复染。
如果细菌能保持草酸铵结晶紫与碘的复合物而不被乙醇脱色,呈紫色者叫革兰氏阳性菌。
被乙醇脱色用蕃红液复染后呈红色者为革兰氏阴性菌。
革兰氏染色法将细菌分为G+和G-,这由两类细菌细胞壁的结构和组成的不同而决定。
用结晶紫初染后,所有的细菌都染上蓝紫色。
碘作为媒染剂能与结晶紫结合形成结晶紫-碘的复合物,增强了染料与菌体的结合力。
用乙醇脱色处理时,两类细菌的脱色效果是不同的。
G+细菌的细胞壁主要由肽聚糖形成的网状结构组成,且壁厚、类脂含量低,用乙醇脱色时使细胞壁脱水、网状结构孔径缩小,通透性降低,使得结晶紫—碘的复合物不易被洗脱而保留在细胞内。
虽经洗脱和复染仍然保持初染剂的蓝紫色。
G-细菌则不同,由于其细胞壁肽聚糖层较薄,类脂含量高,所以在脱色处理时,类脂被乙醇溶解,细胞壁的通透性增大,使结晶紫—碘的复合物比较容易被洗脱出来,用复染剂复染后,细胞被染上复染剂的颜色。
仪器和材料菌种:
大肠杆菌、
显微镜、香柏油、二甲苯、擦镜纸、吸水纸、吸管、载玻片、酒精灯
革兰氏染色剂:
1)草酸铵结晶紫染色液。
2)碘液。
3)酒精。
4)番红染色液。
实验步骤
(1)革兰氏染色步骤:
1.涂片:
对于活性污泥,用滴管取其一滴置于玻片上铺成一薄层即可。
2.干燥最好在空气中自然晾干,为了加速干燥,可在微小火焰上方烘干。
但不宜在高温下长时间烤干,否则急速失水会使菌体变形。
3.固定将已经干燥的涂片正面向上,在微小的火焰上通过2~3次,由于加热使蛋白质凝固而固着在载玻片上。
4.用草酸铵结晶紫染液,染色lmin,水洗。
5.滴加革兰氏碘液媒染lmin、水洗。
6.斜置玻片于烧杯上端,滴加95%乙醇脱色并轻轻摇动载玻片。
直洗至流出乙醇刚刚不出现紫色时即停止(约20~30s),脱色完毕后,水洗,滤纸吸干。
7.滴加沙黄染液复染lmin。
水洗,滤纸吸干后,备镜检。
问题绘图:
1.染色后观察到的大肠杆菌的形态图。
2.革兰氏染色过程中,哪些因素是成败关键,为什么?
实验四、综合实验
操作总体步骤:
包扎标记:
提取细菌并稀释→革兰氏染色→形态观察(油镜观察的使用)
结果:
1.根据观察结果,绘出大肠杆菌革兰氏染色后的形态图。
2. 为什么要求制片完全干燥后才能用油镜观察?
3.在进行菌液稀释时要注意什么问题?
一、美蓝浸片观察
酵母菌菌液的配制:
干酵母粉1克、蔗糖10克、蒸馏水100毫升混合均匀,7小时可用到3天。
基本原理:
酵母菌是多形的、不运动的单细胞微生物,细胞核与细胞质已有明显的分化,菌体比细菌大。
繁殖方式也较复杂,无性繁殖主要是出芽生殖,仅裂殖酵母属是以分裂方式繁殖;有性繁殖是通过接合产生子囊孢子。
本实验通过用美蓝染色制成水浸片,和水-碘水浸片来观察生活的酵母形态和出芽生殖方式。
美蓝是一种无毒性染料,它的氧化型是蓝色的,而还原型是无色的,用它来对酵母的活细胞进行染色,由于细胞中新陈代谢的作用,使细胞内具有较强的还原能力,能使美蓝从蓝色的氧化型变为无色的还原型,所以酵母的活细胞无色,而对于死细胞或代谢缓慢的老细胞,则因它们无此还原能力或还原能力极弱,而被美蓝染成蓝色或淡蓝色。
因此,用美蓝水浸片不仅可观察酵母的形态,还可以区分死、活细胞。
但美蓝的浓度、作用时间等均有影响,应加注意。
器材:
酵母;0.1%吕氏碱性美蓝染液,革兰氏染色用的碘液;
显微镜,载玻片,盖玻片等。
吕氏碱性美蓝染色液:
美蓝0.3g、95%乙醇30ml、0.01%氢氧化钾溶液100ml、将美蓝溶解于乙醇中,然后于氢氧化钾溶液混合。
染色法:
将涂片在火焰上固定,待冷却后滴加染液,染1min~3min,水洗,待干,镜检。
(1)在载玻片中央加一滴0.1%吕氏碱性美蓝染液,滴不可过多或过少,以免盖上盖玻片时,溢出或留有气泡。
然后按无菌操作法取在酵母菌少许,放在吕氏碱性美蓝染液中,使菌体与染液均匀混合。
(2)用镊子夹盖玻片一块,小心地盖在液滴上。
盖片时应注意,不能将盖玻片平放下去,应先将盖玻片的一边与液滴接触,然后将整个盖玻片慢慢放下,这样可以避免产生气泡。
(3)将制好的水浸片放置3分钟后镜检。
先用低倍镜观察,然后换用高倍镜观察酵母的形态和出芽情况,同时可以根据是否染上颜色来区别死、活细胞。
(4)染色半小时后,再观察一下死细胞数是否增加。
二、显微镜的使用
(1)、低倍镜观察:
先将低倍物镜的位置固定好,然后放置标本片,转动反光镜,调好光线,将物镜提高,向下调至看到标本,再用细调对准焦距进行观察。
除少数显微镜外,聚光镜的位置都要放在最高点。
如果视野中出现外界物体的图像,可以将聚光镜稍微下降,图像就可以消失。
聚光镜下的虹彩光圈应调到适当的大小,以控制射入光线的量,增加明暗差。
(2)、高倍镜观察:
显微镜的设计一般是共焦点的。
低倍镜对准焦点后,转换到高倍镜基本上也对准焦点,只要稍微转动微调即可。
虹彩光圈要放大,使之能形成足够的光锥角度。
稍微上下移动聚光镜,观察图象是否清晰。
(3)、油浸镜观察:
油浸镜的工作距离很小,所以要防止载玻片和物镜上的透镜损坏。
使用时,一般是经低倍、高倍到油浸镜。
当高倍物镜对准标本后,再加油浸镜观察。
载玻片标本也可以不经过低倍和高倍物镜,直接用油浸镜观察。
对准焦点的方法是从显微镜的侧面观察,将油浸镜下移到与载玻片稍微接触为止,然后用微调向上提升调准焦点。
使用油浸镜时,镜台要保持水平,防止油流动。
油浸镜所用的油要洁净,聚光镜要提高到最高点,并放大聚光镜下的虹彩光圈否则会降低数值口径而影响分辨率。
普通显微镜的保养:
显微镜是精密贵重的仪器,必须很好地保养。
1、观察完后,移去观察的载玻片标本。
2、用过油浸镜的,应先用擦镜纸将镜头上的油擦去,再用擦镜纸蘸着二甲苯擦拭2—3次,最后再用擦镜纸将二甲苯擦去。
3、转动物镜转换器,放在低倍镜的位置。
4、将镜身下降到最低位置,调节好镜台上标本移动器的位置,罩上防尘套。
镜头的保护最为重要。
镜头要保持清洁,只能用软而没有短绒毛的擦镜纸擦拭。
擦镜纸要放在纸盒中,以防沾染灰尘。
切勿用手绢或纱布等擦镜头。
物镜在必要时可以用溶剂清洗,其中最安全的是二甲苯。
方法是用脱脂棉花团蘸取少量的二甲苯,轻擦,并立即用擦镜纸将二甲苯擦去,然后用洗耳球吹去可能残留的短绒。
三、酵母菌悬液,血球计数板,显微镜,盖玻片,无菌毛细管。
大肠杆菌的菌液:
取自来水让学生打球后洗手,放爆气池加入葡萄糖,12小时后过滤备用。
1.稀释:
将酵母菌悬液进行适当稀释,菌液如不浓,可不必稀释。
2.镜检计数室:
在加样前,先对计数板的计数室进行镜检。
若有污物,则需清洗后才能进行计数。
3.加样品:
将清洁干燥的血球计数板盖上盖玻片,再用无菌的细口滴管将稀释的酵母菌液由盖玻片边缘滴一小滴(不宜过多),让菌液沿缝隙靠毛细渗透作用自行进入计数室,一般计数室均能充满菌液。
注意不可有气泡产生。
四、血球计数板的使用方法
血球计数板是一块特制的厚型载玻片,玻片中央刻有四条槽,中央两条槽之间的平面比其它平面略低,中央有一小槽,槽的两边的平面上各刻有9个大方格。
中间的一个大方格为计数室,它的长、宽各为1mm,深度为0.1mm,容积为0.1mm3。
计数板的规格是把大方格分成25中格,每一中格分成16小格,总共也是400小格。
计算方法如下:
25×16计数板的计算:
细胞数/(ml)=
×400×10000×稀释倍数
计数原则:
计上不计下,计左不计右。
清洗血球计数板
使用完毕后,将血球计数板在水笼头上用水柱冲洗,切勿用硬物洗刷,用手指肚轻轻搽洗,洗完后自行晾干或用吹风机吹干。
镜检,观察每小格内是否有残留菌体或其他沉淀物。
若不干净,则必须重复洗涤至干净为止。
五、显微镜计数方法:
静止5分钟后,将血球计数板置于显微镜载物台上,先用低倍镜找到计数室所在位置,然后换成高倍镜进行计数。
在计数前若发现菌液太浓或太稀,需重新调节稀释度后再计数。
一般样品稀释度要求每小格内约有5―10个菌体为宜。
每个计数室选5个中格(可选4个角和中央的中格)中的菌体进行计数。
位于格线上的菌体一般只数上方和右边线上的。
如遇酵母出芽,芽体大小达到母细胞的一半时,即作两个菌体计数。
计数一个样品要从两个计数室中计得的值来计算样品的含菌量。
六、革兰氏染色详细步骤
1 涂片 ;取一洁净的载玻片,用特种笔在载玻片的左右两侧标上菌号,并在两端各滴一小滴蒸馏水,以无菌接种环分别挑取少量菌体涂片,干燥、固定。
玻片要洁净无油,否则菌液涂不开。
2 初染 ;滴加结晶紫(以刚好将菌膜覆盖为宜)于两个玻片的涂面上,染色1min,倾去染色液,细水冲洗至洗出液为无色,将载玻片上水甩净。
3 媒染 ;用革兰氏碘液媒染约l min ,水洗。
4 脱色 ;用滤纸吸去玻片上的残水,将玻片倾斜,在白色背景下,用滴管流加95%的乙醇脱色,直至流出的乙醇无紫色时,立即水洗,终止脱色,将载玻片上水甩净。
革兰氏染色结果是否正确,乙醇脱色是革兰氏染色操作的关键环节。
脱色不足,阴性菌被误染成阳性菌,脱色过度,阳性菌被误染成阴性菌。
脱色时间一般约20~30s。
5 复染 ;在涂片上滴加番红液复染约1min ,水洗,然后用吸水纸吸干。
在染色的过程中,不可使染液干涸。
6 镜检 ;干燥后,用油镜观察。
判断两种菌体染色反应性。
菌体被染成蓝紫色的是革兰氏阳性菌(G+),被染成红色的为革兰氏阴性菌(G-)。
7 实验结束后处理 :
清洁显微镜。
先用擦镜纸擦去镜头上的油,然后再用擦镜纸沾取少许二甲苯擦去镜头上的残留油迹,最后用擦镜纸擦去残留的二甲苯。
染色玻片用洗衣粉水煮沸、清洗,凉干后备用。
七、灭菌详细步骤:
包扎标记:
要灭菌的水放入的三角瓶中,移液管10ml、1ml各一个、试管6个、包上一层防潮纸,用棉绳系好,在包装纸上标明备制组。
灭菌注意:
1:
按规定条件及时进行灭菌。
普通的为121度20分钟。
以保证灭菌效果。
2:
首先将内层灭菌桶取出,再向外层锅内加入适量的水,使水面与三角搁架相平为宜。
3:
放回灭菌桶,并装入待灭菌物品。
注意不要装得太挤,以免防碍蒸汽流通而影响灭菌效果。
三角烧瓶与试管口端均不要与桶壁接触,以免冷凝水淋湿包口的纸而透入棉塞。
4:
加盖,打开底下放气阀,同时检查排气阀和安全阀。
5:
通电,调节合适参数,加热。
待冷空气完全排尽后,关上放气阀,让锅内的温度随蒸汽压力增加而逐渐上升。
当锅内压力升到所需压力时,控制热源,维持压力至所需时间。
本实验用1.05kg/cm2,121.3℃,20分钟灭菌。
6:
灭菌所需时间到后,切断电源或关闭煤气,让灭菌锅内温度自然下降,当压力表的压力降至0时,打开排气阀,旋松螺栓,打开盖子,取出灭菌物品。
如果压力未降到0时,打开排气阀,就会因锅内压力突然下降,使容器内的培养基由于内外压力不平衡而冲出烧瓶口或试管口,造成棉塞沾染培养基而发生污染。
八、菌液稀释步骤:
稀释原液:
取6个灭菌空试管,分别加入9ml灭菌水。
取1ml原液注入第一管9ml灭菌水内,摇匀,再自第一管取1ml至下一管灭菌水内,如此稀释到第6管,稀释度分别为10-1~10-6。
3自最后三个稀释度的试管中选取一滴稀释水加入载玻片上。
九、革兰氏染色
十、显微镜的形态观察
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