食品专业综合实训报告.docx
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食品专业综合实训报告
目录
1.前言·························································2
2、香肠生产工艺实验············································3
(1)实验目的················································3
(2)原辅材料及仪器设备······································3
(3)工艺流程················································3
(4)实验步骤················································3
①原料检测·················································3
②制作过程·················································9
③成品检测·················································11
3、惨老文献····················································23
4、心得体会····················································24
5、致谢························································25
前言
进入大三下学期了,经过大三上学期一学期的专业课学习,同学们对专业知识已经有了一定的了解。
还有一年多的时间同学们就毕业了,即将走上工作岗位了.为了让同学们能把所学的理论知识熟练的应用于实践中,让同学们毕业工作后能够很好地运用在学校期间所学的理论知识且熟练地应用于工作中,这学期我们专业进行了综合实训。
实训的内容分三方面:
香肠的制作工艺、豆奶的生产工艺、酸奶雪糕的制作工艺,我们组是制作香肠。
香肠以猪或羊的小肠衣(也有用大肠衣的)灌入调好味的肉料干制而成。
香肠一般指猪肉香肠,全国各地均有生产,名品有江苏云塔香肠、广东腊肠、四川宜宾广味香肠、山东招远香肠、武汉香肠、辽宁腊肠、贵州小香肠、济南南肠、正阳楼风干肠和江苏香肠等;按风味分,有五香香肠、玫瑰香肠、辣味香肠等,各有特色。
香肠生产工艺流程:
原料→预处理(洗涤去污、剔骨、去皮)→切块切丁→洗涤→拌料→腌制→灌制→蒸煮→成品
香肠生产工艺实验
一、实验目的
1、了解香肠加工工艺和加工原理。
2、掌握香肠制作方法。
二、原辅材料及仪器设备
1、原辅料:
猪肉(猪腿肉及臀部肉为佳)、肠衣、料酒、糖、精盐、亚硝酸钠、味精、花椒粉。
2、仪器设备:
刀、菜板、绞肉机、秤、结扎用绳、电炉、锅、温度计、不锈钢锅、不锈钢盆。
实验配方:
原料
瘦肉
肥肉
奶粉
大葱
胡椒面
用量
0.8kg
0.2kg
0.02kg
0.025kg
0.002kg
原料
精盐
姜
淀粉
味精
肠衣
用量
0.02kg
0.012kg
0.08kg
0.001kg
适量
原料
线绳
花椒粉
用量
适量
0,006kg
三、工艺流程
原料→预处理(洗涤去污、剔骨、去皮)→切块切丁→洗涤→拌料→腌制→灌制→蒸煮→成品
四、实验步骤
(一)原料肉检测
1、感官检测
项目名称
色泽
黏度
弹性
气味
血管
结果
红色均匀、有光泽、脂肪洁白。
外表微湿、不黏手。
手指按压后凹陷会立即恢复。
具有正常猪肉的气味、无异味。
无凝结血液、浆膜光亮。
2、化学检测
(1)硫化氢检测
⒈目的要求:
掌握肉中硫化氢的测定方法,初步判定肉的新鲜度。
⒉原理:
在组成肉类的氨基酸中,有一些含有硫的氨基酸,在腐败分解过程中,在细菌产生的脱巯基酶作用下发生分解,能放出H2S。
硫化氢与可溶性铅盐起作用时,则产生黑色的硫化铅。
如在酸性环境中进行,首先形成中间产物硫氢化铅Pb(H•S)2,然后才形成硫化铅,故反应较慢。
在碱性环境下进行,则可适当的提高反应的灵敏度,因此,在硫化氢检查中,应采用铅盐的碱性溶液。
当硫化氢作为检查肉类腐败的指标时,应注意以下情况,由于动物肝脏中,在正常情况下具有脱巯基酶,它们使半胱氨酸中的巯基裂解生成硫化氢,这些硫化氢和脱巯基酶都可能被血液搬迁到机体的其他部分或肌肉组织中,因此,在新鲜肉(尤其是新鲜猪肉)中,常常含有硫化氢或脱巯基酶,只不过在一般情况下含量较少,用这种可溶性铅盐的定性检查法测定时,一般不能检出。
因此,在检验时如果硫化氢呈阳性反应,一般皆认作是肉已经腐败的表现。
⒊实验仪器及试剂材料:
滤纸条、醋酸铅碱性溶液:
10%的醋酸铅液加入10%氢氧化钠溶液,其中,醋酸铅是由氢氧化铝和醋酸配制而得来的、具塞三角瓶等。
⒋操作步骤:
时间步骤现象
1、16:
24—16:
391、取50~100ml的具塞三角瓶,将剪碎后的肉样分别装入瓶内,使其达烧瓶容量的三分之一,肉粒大小以绿豆到黄豆大小为佳。
2、取一滤纸条,先在醋酸铅碱性溶液中浸湿,待稍干后放入盛有检肉的三角烧瓶中,并盖上玻塞,要求纸条紧接肉块表面而又未与肉块接触到即可。
3、在室温下静置15min后,观察瓶内滤纸条的变化。
醋酸铅碱性溶液由砖红色沉淀生成,取上清液浸湿滤纸条
滤纸无变化
⒌判定标准:
①新鲜肉滤纸条无变化。
②次鲜肉滤纸条边缘变成淡褐色。
③腐败肉滤纸条的下部变为暗褐色或褐色。
实验结果:
滤纸条颜色无变化,原料肉为新鲜肉。
(2)PH测定
1、实验原理:
屠宰后的牲畜随着血液及氧供应的停止,肌肉中的糖原因解糖酶的作用,在无氧的条件下分解产生乳酸,导致肌肉PH下降。
经24小时后,肉中糖原减少0.42%,PH可从7.2降至5.6-6.0之间。
但乳酸生成到一定界限时,分解糖原的酶逐渐失去活力,而五级磷酸化酶的活性大大增强,开始促使三磷酸腺苷迅速分解,形成磷酸,因而肉的PH可继续下降至5.4.随时间的延长或保存不当,导致肉上大量腐败微生物的生长而分解蛋白质,产生胺类,胺,CO2等,致使肉的PH上升。
因此检测肉的PH有利于判定肉的新鲜度。
2、试剂及仪器:
烧杯、PH仪。
3、实验步骤
时间
步骤
现象
14:
10
14:
30
14:
50
15:
20
1、制取肉浸液
(1)称取精肉肉样10g。
剪成豆粒大小的小块,至于200ml烧杯中,加100ml的蒸馏水,浸泡15min,其间振摇3至4次。
(2)用滤纸将浸泡液过滤即为肉浸出液。
2酸度计的调节
(1)、将功能开关拨至“mV”档,将短路插头旋入后面板插座INPUT并旋紧,调节底面板上“调零”电位器,使仪器显示“000”。
(2)、仪器调零后,再将选择开关拨至“℃”档,调节温度调节器使显示器显示25℃。
(3)、将功能选择开关拨至“pH”档,将活化后的测量电极旋上后面板,插入插座INPUT,并将它移入pH1=4.00的标准缓冲溶液中(用250mL的容量瓶配置),待仪器响应稳定后,调节定位调节器旋钮,使仪器显示为“0.00”pH。
(4)、取出电极用去离子水冲洗并用滤纸吸干,然后移入pH2=9.18标准pH缓冲溶液中,待仪器响应稳定后,调节“斜率”旋钮,使仪器显示为△pH=PH1-pH2=5.18pH值,此后不要动“斜率”旋钮,重新调节“定位”旋钮,使仪器显示pH2=9.18pH值。
(5)、至此,仪器已标定结束,保持“斜率”、“定位”旋钮位置不变,以免影响测量精度。
3、检测
取出电极用去离子水冲洗并用滤纸吸干,移入被测溶液待仪器响应稳定后,读取显示值X。
肉粒发白
X=6.12
实验结果:
该肉属于一级鲜度。
(3)挥发性盐基氮的测定
1、实验原理:
挥发性含氮物质可在37℃碱性溶液中释出,挥发后吸收于吸收液中,用标准酸溶液滴定,计算含量。
2、试剂及仪器:
饱和碳酸钾溶液:
称取50g碳酸钾,加50ml水,微加热助溶,使用上清液;凡士林若干;吸收液:
2%的硼酸溶液;混合指示液:
甲基红指示剂、次甲基蓝指示剂两种指示液等量混合;盐酸标准滴定溶液(0.0100mol/L);扩散皿(标准型):
玻璃质,内外室总直径61mm,内室直径35mm;外室深度10mm,内室深度5mm;外室壁厚3mm,内室壁厚2.5mm,加磨砂厚玻璃盖。
酸式滴定管,最小分度为0.01ml。
3、实验步骤:
时间
步骤
现象
1称取2.3476克香肠样品用100ml容量瓶制成样液
2.将水溶性胶涂于扩散皿的边缘,在皿中央内室加入1ml吸收液及1滴混合指示液。
3.在皿外室一侧加入1.00ml制备好的样液,另一测加入1ml饱和碳酸钾溶液,注意勿使两液接触,立即盖好;
4.密封后将皿于桌面上轻轻转动,使样液与碱液混合,然后于37℃温箱内放置2h,揭去盖,用盐酸标准溶液滴定,终点呈蓝紫色。
5同时做试剂空白试验。
黑紫的指示液被吸收液稀释成紫色
密封后在桌上轻轻摇动,碱与样品混合,
消耗盐酸标准溶液0.06ml
消耗盐酸标准溶液0.02ml
4、计算:
X=((V1-V2)×c×14)/(m×1/100)×100
式中:
X——试样中挥发性盐基氮的含量,单位为毫克每百克(mg/100g);
V1——测定用样液消耗盐酸标准溶液体积,单位为毫升
V2——试剂空白消耗盐酸或硫酸标准溶液体积,单位为毫升
c——盐酸标准溶液的实际浓度,单位为摩尔每升(mol/L);
14——与1.00mL盐酸标准滴定溶液相当的氮的质量,单位为毫克(mg);
m——试样质量,单位为克(g)。
V1=0.06mlV2=0.02mlC=0.01mol/Lm=2.3476g
X=[(V1-V2)×c×14)/(m×1/100)]×100=[(0.06-0.02)×0.01×14)/(2.3476×1/100)]×100=11mg<15mg
(4)球蛋白的检测
1、实验原理:
根据蛋白质在碱性溶液中能与重金属离子结合形成蛋白盐而沉淀的特性,用重金属离子结合形成蛋白盐而沉淀的特性,金属离子使其沉淀.根据沉淀的有无和沉淀的数量判定肉的新鲜度。
2、试剂及仪器:
10%硫酸铜溶液、移液管等
3、实验步骤:
时间
实验步骤
现象及记录
14:
50-15:
10
15:
12-15:
27
15:
30-15:
37
15:
40-15:
55
1、采肉将待检测肉样剪碎至绿豆大小,取10g置于200mL锥形瓶中
2、加入煮沸冷却后的蒸馏水100mL,浸泡15min(每5min振荡一次)
3、过滤用纱布过滤置另一洁净烧杯中备用。
4、取硫酸铜10g溶于100ml蒸馏水中,即制成10%CuSO4溶液。
5、取小试管2支,一支注入肉浸液2ml,另一支注入蒸馏水2ml,作为对照。
6、用移液管吸取10%CuSO4溶液,向上述两试管中各滴入5滴,充分振荡后观察。
肉样质量为10g
滤液量为120mL
液体呈浅蓝色,并轻度混浊,有少量悬浮物
(二)制作过程
1. 原料肉的选择
选择色味纯正经兽医卫生检验合格的新鲜猪肉为原料(以腿肉和臀肉为最好,因为这些部位的肌肉组织多、结缔组织少,肥肉一般选用背部的皮下脂肪)。
2、洗涤:
洗去肉表面的污物,去除残毛、血污、残肉等。
3. 切块切丁
剔骨后的原料肉,首先将瘦肉和肥膘分开,剔除瘦肉中的筋腱、血管、淋巴。
瘦肉与肥肉分开,并将其按照加工要求切成小方块,以利于腌制为主。
4:
称取原料:
按照配方称量好各种原料。
5、拌料:
将称取好的原料按一定顺序放入不锈钢盆内,进行拌料。
将已经搅碎或斩碎的肉和配方中其他辅助成分混合在一起的过程,称为拌料。
这个过程常用搅拌机进行搅拌完成。
在搅拌过程中,肉馅可产生必要的粘性,提高保水性,在煮制时能促进水分的保持。
搅拌机无切碎功能,用以弥补绞肉和斩拌的不足。
6. 腌制:
将拌好的料低温下腌制两小时。
腌制就是用食盐和硝酸盐等混合对肉进行加工处理的一种方法。
目的是通过提高产品的渗透压,减少水分活性,达到抑制微生物繁殖、提高肉的保水性、改善肉的风味的目的。
肉的腌制方法可分为湿腌法、干腌法、干湿混腌法和快速腌制法四种。
干腌法和湿腌法前面已经学习过。
所谓干腌法,就是将腌制剂擦在肉的表面,然后层堆在腌制架上或层装在腌制容器内,依靠肉外渗汁液将其溶解,形成高浓度食盐溶液。
此种腌制法设备简单、易操作,小规模工厂多采用此法。
所谓湿腌法,就是将腌制材料在沸水中溶解,冷却后倒入陶瓷缸中,腌制液的量要没过肉的表面,通常为肉重量的50%~60%。
腌渍温度一般为3~5℃,因pH值、肉块大小等各种因素的影响,腌制完成时间有所不同,如1㎏的肉块大约需5~7d。
湿腌法腌制时,腌制剂渗入肌肉组织内较均匀,但其制品的色泽和风味不及干腌制品,蛋白质流失大。
混合腌法时将干腌法和湿腌法结合起来的腌制方法。
先用干的混合腌制剂擦在肉的表面,进行干腌再浸渍在容器中用腌制液腌渍。
用注射腌制法常和干腌或湿腌结合进行,这也是混合腌制法,即将盐液注入鲜肉内,在按层擦盐,但盐水浓度应低于注射用的盐水浓度,以使肉吸收水分。
混合腌法可以增加制品贮藏时的稳定性,防止产品过度脱水,免于营养物过分损失。
常用于鱼类腌制,特别适于多脂鱼。
快速腌制法是指为了加快腌渍速度而采取的注射腌制法或热腌法。
注射法是将腌制液注入动脉或肌肉组织的一种方法,热腌法可将热盐水注入动脉或肌肉组织中,也可将原料肉浸泡在50℃的腌制液中。
此种方法的优点是可促进肉的成熟,加快盐液分布到肉组织中的速度。
缺点是一旦管理不当会造成大量原料肉变质。
7、灌制:
在灌制前,应对灌肠机、工具的卫生及安全和灵活性进行检查后才能将肉馅灌入充填机料斗内。
灌制时,握肠衣的手松紧要适度,握得过紧容易使肉馅冲破肠衣,过松又会造成肉馅脱节或产生气泡。
将肠衣的一头打结,另一头套在灌肠机上,将肉馅灌入肠衣内。
要求装得均匀饱满,用手挤紧,不能过松或过饱。
灌肠是将拌好的肉馅灌入事先准备好的肠衣中。
用于向肠衣中灌陷的机器称为充填机。
香肠填充好后,应及时结扎或扭结。
结扎就是把香肠两端捆扎牢,防止肉馅从肠衣中漏出来,阻止外部细菌进入,起到隔断空气和肉接触的作用。
8、 蒸煮
将灌制好的香肠放入70—95℃的锅内进行蒸煮,目的是使肉蛋白质凝固、淀粉糊化,产生与生肉不同的硬度、口感、弹性等物理变化,易于人体消化吸收;使制品产生有特有的香味;促进NO-肌红蛋白的形成,改善肉色;杀死微生物和寄生虫,破坏酶活,延长制品贮存期。
9、成品:
最后制品出炉后经自然冷却,待中心温度达到22℃以下后,即成为成品。
(三)成品检测
1、水分检测
水分的测定
样品重量:
2.1563g表面皿重量:
20.3305g
样品+表面皿重量:
22.4868g
样品+表面皿+海砂重量:
24.3972g
时间
步骤
现象结果
2:
20
2:
30
5:
30
6:
30
7:
30
8:
30
9:
:
30
准确称取粒度均匀的样品2-3g置于已知重量的铝皿中,将样品平铺于皿底。
移入100-105摄氏度定温电烤箱中,烘烤=2-3小时后取出加盖。
置于干燥器内,冷却30min后称重。
然后每隔一小时称重一次,至恒重为止。
第一次称重:
第二次称重:
第三次称重:
第四次称重:
第五次称重:
肉丁被烘干,颜色呈暗红色。
23.3526g
23.2608g
23.1806g
23.1578g
23.1558g
香肠水分含量:
(24.3972﹣23.1558)÷2.1563=0.5757
香肠含水量:
0.5757×100%=57.57%
2、蛋白质检测
1、实验原理:
蛋白质是含氮的有机化合物。
食品与硫酸和催化剂一同加热消化,使蛋白质分解,分解是氨与硫酸结合生成硫酸铵。
然后碱化蒸馏使氨游离,用硼酸吸收后再以硫酸或盐酸标准溶液滴定,根据酸的消耗量乘以换算系数,即为粗蛋白含量。
2、仪器及试剂:
(所有试剂均用不含氮蒸馏水配置)
(1)、KND型定氮仪(HYP8孔消化装置、2C型蒸馏装置)
(2)、电子分析天平(精密度为0.0001g)
(3)、5ml酸式滴定管
(5)、锥形瓶
(6)、0.05mol/L盐酸标准溶液:
4.2ml盐酸,注入1000ml蒸馏水,碳酸钠法标定盐酸
(7)、2%硼酸溶液:
2克硼酸(分析纯)溶于蒸馏水配成100ml2%水溶液
(8)、40%氢氧化钠溶液:
40克氢氧化钠(化学纯或工业纯)溶于蒸馏水中溶成100ml,配成40%水溶液
(9)、混合指示剂:
甲基红溶于乙醇配成0.1%乙醇溶液,溴甲酚绿溶于乙醇配成0.5%乙醇溶液,两种溶液等体积混合,阴凉处保存
(10)、浓硫酸:
98%
(11)、硫酸铜、硫酸钾(1:
15混合),在研钵中研磨
3、实验步骤:
(一)消化操作
(1)、将消化装置的抽气泵的螺口同水嘴的内螺纹连接牢,然后把毒气罩的胶管接在抽气泵的横出口处。
抽气泵一端胶管通至下水道(出水胶管长度不得超出30cm,并不准弯曲),开足水龙头,使抽气泵有足够的吸力。
(2)、接通消化炉电源,按需要设定预置温度。
(3)、称取0.3g试样(液体2-5ml)准确至0.0002g,干净无损的转入清洗干净的消化管中,加入加速剂(5-16g)再加入浓硫酸(8-25ml)。
(4)、将装有试样的消化管放在消化炉支架上,套上毒气罩,压下毒气罩,锁住两侧面拉钩。
(5)、把支架连同装有试样的消化管一起移至电热炉上保持消化管在电炉中心,设定温度在420-500℃保持消化管中液体连续沸腾,沸酸在瓶颈部冷凝回流。
待溶液消煮至无微小碳粒、呈蓝绿色时继续消煮30min。
(6)、消化结束,戴上手套,将支架连同消化管一同移回消化管托底上,冷却至室温。
注意,在冷却过程中,毒气罩必须保持吸气状态(切忌放入水中冷却)防止废气溢出。
(7)、同时做不加样品的空白实验
(二)蒸馏操作
(1)、接通进水口、排水胶管,注意保持排水管道畅通。
(2)、进液胶管分别插入蒸馏水筒和40%NaOH液筒。
(3)、开自来水龙头,使水经给水口进入冷凝管。
注意水流量以保证冷凝管起到冷凝作用为止。
(4)、待红色指示灯亮开汽开关,蒸汽导出管放出蒸汽,关汽开关。
(5)、在蒸馏导出管托架上,放上已经加入适量(15ml左右)的接收液(硼酸和混合指示剂)的锥形瓶。
向下压右侧手柄使蒸馏导出管的末端浸入接收液内。
(6)、向上提左侧手柄,将消化冷却后已用蒸馏水稀释(消化管内加10ml左右蒸馏水)的消化管单个套在防溅管密封圈上稍加旋转,使其保持接口密封,关上防护罩。
(7)、开碱开关,加适量NaOH溶液至蒸馏液变黑为止,关碱开关。
(8)、开汽开关,开始蒸馏直至氨气全部蒸出(约接收液为150ml),先将接收瓶取下,再关汽开关。
(9)、同时做试剂空白实验
(三)滴定
吸收氨后的吸收液,用标定后的盐酸溶液进行滴定,溶液由蓝绿色变为灰紫色为终点。
记录滴定消耗的标准盐酸溶液的体积。
4、结果计算
时间
操作步骤
现象
6月1日
14:
30
14:
35
14:
40
14:
50
15:
20
15:
30
15:
38
15:
40
称取样品0.2777g,放入消化管内,加10g加速剂,再加入浓硫酸20ml。
将消化管放在消化炉上,开始消化。
温度设置为450
。
消化炉初始温度23
.
消化结束,取出消化管,待冷却至室温
蒸馏操作,开碱开关,带消化管内溶液变黑后关碱开关并打开蒸汽开关。
蒸馏结束
滴定
部分样品变黑
消化管内产生大量白雾
消化管内液体变蓝
加碱三次后溶液变黑
锥形瓶中溶液由浅棕色变为蓝色
溶液有蓝色变为灰紫色
数据结果:
X={[(V﹣v)×C×0.0140×K]÷W}×100%
={[(12.65﹣0.70)×0.05×0.0140×6.25]÷0.3105}×100%
=16.8%
5、说明:
(1)、称样时应当注意,不要将试样沾在消化管壁上,含水分较多的样品或液体样品,应先将水分蒸发掉,然后进行消化。
(2)、蛋白质中的氮含量一般为15~17.6%,按16%计算乘以6.25即为蛋白质。
肉与肉制品粗蛋白的系数为6.25.
(3)、硫酸钾的加入能提高消化液的沸点,加快样品分解速度,缩短消化时间,但硫酸钾与硫酸的用量不宜过大,因温度过高生成的硫酸氢铵也会分解放出氨,造成氮的损失,使结果偏低。
(4)、硫酸铜的催化作用机理如下反应式所示:
2CUSO4→CUSO4+SO2↑+O2↑
C+2CUSO4→CU2SO4+SO2↑+CO2↑
CUSO4+2H2SO4→2CUSO4+2H2O+SO2↑
此反应不断进行,待有机物全部被消化完后,不再有CU2SO4褐色生成,溶液呈现清澈的蓝绿色。
故硫酸铜除起催化剂作用外,还可以指示消化终点,以及下一步蒸馏时作为碱性反应的指示剂。
3、亚硝酸盐的测定
1、实验原理:
样品经沉淀蛋白质、除去脂肪后,在弱酸性条件下亚硝酸盐与对氨基苯磺酸重氮化,再与盐酸萘乙酸二胺偶合形成紫红色颜料,可比色测定。
2、试剂及仪器:
饱和的硼砂;蛋白质沉淀剂:
乙酸镁溶液;发色剂:
0.4%对氨基苯磺酸溶液,0.4g对氨基苯磺酸溶于20%盐酸中,并定容到100m;发色剂:
0.2%盐酸萘乙二铵溶液,溶解0.2g盐酸萘乙二胺于100重蒸水中,以上两者均放于暗处。
亚硝酸钠标准溶液:
精确称取0.1000g亚硝酸钠,以重蒸馏水定容到500mL,从此溶液中取2.5mL,以重蒸馏水定容到100mL备用。
(亚硝酸盐为5ug/L)。
小型粉碎机,组织捣碎机,分光光度计,天平,恒温水浴锅,25mL比色管或25mL具塞试管,其他器材:
200mL容量瓶、吸管、漏斗等。
3、实验步骤
(1)、标准曲线的制备
吸取0、0.5mL、1.0mL、2.0mL、3.0mL、4.0mL、5.0mL亚硝酸钠标准使用液(相当于0、2.5ug、5ug、10ug、15ug、20ug、25ug亚硝酸钠),分别置于25mL具塞试管中。
用移液管按顺序向比色管中分别吸取标准亚硝酸钠溶液和水共12.5ml,分别加入1mL对氨基苯磺酸,摇匀,停3min,在分别加1mL盐酸萘乙二胺,摇匀,溶液变成紫红色,用水稀释至25mL标线,摇匀,待测。
静止10min,用分光光度计540nm波长处测定吸光度。
用10mm比色皿。
以测得的各比色液的吸光度对应溶液中的亚硝酸钠的含量(ug)作曲线,两者呈直线关系。
(2)、样品中亚硝酸盐的提取及测定
时间
实验步骤
现象及记录
16:
35
16:
48-17:
03
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03
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15-19:
10
1、称取5g(精确至0.0001g)样品制成匀浆的试样置于50mL烧杯中,加入12.5mL饱和硼砂溶液,搅拌均匀,以70℃左右的水约300mL将试样洗入500mL容量瓶中,于沸水浴中加热15min,取出置冷
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