复旦大学实验动物学实验报告.docx
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复旦大学实验动物学实验报告.docx
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复旦大学实验动物学实验报告
复旦大学实验动物学实验报告
复旦大学实验动物学实验报告
实验报告一
小鼠的一般技术操作
一、实验目的和要求:
通过实际操作,掌握小鼠实验的一般操作方法,包括动物的抓取和保定、性别鉴定、编号、给药、麻醉、采血、处死、解剖等方法。
二、实验基本步骤:
(一)抓取和保定
先用右手将小鼠的尾巴提起,至于鼠笼或粗糙的平面上,当小鼠向前挣扎行进时,再用左手的拇指和示指捏住小鼠两耳后颈部皮肤,翻转小鼠至于掌心,拉直后肢。
以小指拉住小鼠尾巴即可。
在一些特殊的实验中,如进行尾静脉注射时,可使用专门的小鼠固定器进行保定。
(二)性别鉴定
将小鼠抓取后,观察其肛门及生殖器之间的距离,距离远的为雄性,距离近的为雌性。
另外翻转小鼠观察生殖器附近,性成熟的雄性小鼠的睾丸降至阴囊内,会有明显的突起;雌性小鼠的肛门至会阴处有一条无毛覆盖的细线。
(三)编号方法
常用的有染色法、耳缘打孔法、烙印法、挂牌法。
此外还有断趾法、剪尾法、被毛剪号法、笼子编号法等。
在本次实验中,我们小组使用的是染色法。
(四)去毛方法
常用的有拔毛法、剪毛法、剃毛法、脱毛法。
(五)给药方法
常用的有经口灌胃法、经呼吸道吸入、经皮肤吸收和注射给药法。
1.经口给药法
(1)灌胃法:
左手固定小鼠,右手持灌胃器,将灌胃针从小鼠的一侧犬齿缺失处插入口中,灌胃针竖起靠向口腔后壁,使小鼠消化道成直线,沿咽喉壁缓慢插入食管,使其前段到达膈肌位置,灌胃针插入时应无阻力,如有阻力或动物挣扎则应退针或将针拔出,以免损伤、穿破食管或误入气管。
(2)口服法
在本次实验中,我们小组使用的是灌胃法。
2.注射给药法
(1)皮下注射
(2)肌肉注射
(3)腹腔注射
(4)静脉注射
在本次实验中,我们使用的是皮下注射、腹腔注射、静脉注射。
(六)采血方法
1.断头取血
2.眼眶后静脉丛穿刺采血
3.尾静脉切割采血法
4.摘眼球采血法
5.心脏采血
在本次实验中,我们小组使用的是眼眶后静脉丛穿刺采血、尾静脉切割采血、摘眼球采血法、心脏采血。
(七)麻醉方法
1.常用局部麻醉剂:
普鲁卡因、利多卡因
2.常用全身麻醉剂:
乙醚、苯巴比妥钠、戊巴比妥钠、硫喷妥钠、巴比妥钠、氨基甲酸乙酯。
在本次实验中,对小鼠采用腹腔注射麻醉,方法与腹腔注射给药一样,麻醉剂是2%水合氯醛,剂量为400mg/kg,注射量为0.5ml/25g。
(八)皮肤移植
在本次实验中,在小鼠尾巴上切取长8mm,宽3mm的皮肤,切取效果不好。
(九)处死方法
1.颈椎脱臼法
2.断头法
3.击打法
4.急性大出血法
5.药物致死法
连接处)。
观察其他小组雌性兔的子宫(双子宫,2个子宫开口于单一的阴道)。
实验报告三
豚鼠的一般技术操作
一、实验目的
通过实际操作,基本掌握豚鼠的抓取和保定、性别鉴定、心脏采血、处死、解剖等操作技术。
二、实验基本步骤
(一)抓取和保定
先用右手示指和中指轻轻夹住豚鼠颈部,拇指和示指抓住豚鼠左前肢,中指和无名指抓住豚鼠的右前肢,手掌抓住背部,拿起豚鼠,左手托住豚鼠臀部,并固定其后肢。
(二)性别鉴定
抓取豚鼠后,翻转观察生殖器附近,雄性豚鼠的睾丸降至阴囊内,会有明显突起。
(三)采血的方法
1.耳缘剪口采血
2.心脏采血
3.股动脉采血
4.背中足静脉取血
在本次实验中,我们小组采用的是心脏采血。
(四)处死方法
心脏大量采血,造成豚鼠急性失血而死亡。
(五)解剖方法
解剖操作:
将豚鼠处死后,将其仰卧固定于解剖板上,用剪刀沿腹中线剪开腹部皮肤、腹肌和腹膜,暴露豚鼠腹部的内脏器官,先找到豚鼠的结肠,沿着结肠带寻找盲肠。
在本次实验中,我们小组解剖的是雄性豚鼠,在观察胸腔器官、腹腔器官、大脑、生殖系统、豚鼠颞骨后,又着重观察了胸腺(在颈部皮下气管两侧,于下颌骨角到胸腔入口中间,2个光亮淡黄色、细长成椭圆形、充分分叶的腺体)、睾丸(椭圆形、纵行稍向背外侧排列于阴囊)。
实验报告四
大鼠的一般操作技术
一、实验目的和要求
通过实际操作,掌握大鼠实验的一般操作步骤,包括动物的抓取和保定、性别鉴定、给药、麻醉、采血、处死、解剖等方法。
大鼠急性肺水肿模型的复制;观察阴道涂片阴道涂片的制作及性周期观察。
二、实验基本步骤:
(一)抓取和保定
将大鼠放置于桌面,右手抓住其尾部,牵制大鼠的活动,左手放在大鼠背部,并迅速向前推移,从其颈部保定;迅速将大鼠翻转过来,同时左手作半握状,大拇指用力顶住大鼠下颌骨,并适当的压住大鼠前肢,力度要适当,以头不能抬、前肢不能挣扎为宜,其余四指在下顶住枕骨。
右手也做半握状,保定其后肢和大鼠尾巴,防止其挣扎,左右两手用力将大鼠身体拉直,力度适宜。
注意:
大鼠尾巴覆有短毛和环状角质鳞片,大鼠尾巴表皮角质程度高于小鼠,抓取时应注意避免力度、抓取位置及不要让大鼠尾巴转圈,以免尾巴断裂。
(二)性别鉴定
将大鼠抓取后,观察其肛门及生殖器之间的距离,距离远的为雄性,距离近的为雌性。
另外翻转大鼠观察生殖器附近,成年雄性大鼠的睾丸降至阴囊内,会有明显的突起;成年雌性大鼠有6个乳头。
(三)给药方法
根据我们的实验目的和要求,对于实验的大鼠采取以下4种给药方法。
1.灌胃法
2.腹腔注射
3.肌内注射
4.静脉注射
在本次实验中,我们小组使用的是灌胃法、腹腔注射、静脉注射。
(四)采血方法
1.腹主动脉采血法
2.眼眶后静脉丛穿刺采血
3.尾尖采血法
4.颈静脉采血法
5.心脏采血
6.舌下静脉采血
在本次实验中,我们小组使用的是尾尖采血法、心脏采血、舌下静脉采血法。
(五)麻醉方法
一般采用腹腔注射麻醉,方法与腹腔注射给药一样,麻醉剂是10%水合氯醛,剂量为400mg/kg,用量为1ml/250g。
(六)处死方法
大鼠处死方法可以采用引颈法,此法快速而痛苦小,对一般实验结果无影响。
在本次实验中,我们小组有1只雌性大鼠采用的是引颈法,1只雄性大鼠建立肺水肿模型后,采用引颈法处死。
(七)解剖方法
固定大鼠,以下腹部最低点起始,V字开口,沿中线剪开皮肤至剑突,再剪开腹膜,暴露腹部盆腔器官。
腹腔内器官包括肝脏(无胆囊),脾脏,胰腺(位于中部与脾脏相连的分散的脂肪样结构),胃,肠道,肾脏(推开肠管可见),输尿管,膀胱,生殖器官(雌性:
子宫和卵巢;雄性:
将睾丸挤入盆腔内,即可见两个椭圆形白色睾丸)等,与人类器官位置相近。
继续剪开胸部皮肤和肋骨,见两侧肺脏(左1、右4)和心脏,向上有器官。
在本次实验中,我们小组解剖了一只雄性小鼠和一只雌性小鼠。
未剪开头部,没有观察大鼠的头部。
在了解大鼠的基本解剖结构、器官形态和特点,除了观察一般脏器如心脏、肺脏、脾脏等外,主要寻找并观察了胸腺(在胸腔入口处,乳白色,由左右2叶组成)、甲状腺(在颈部环状软骨高度,位于器官两侧,白色脂肪样物质,0.5-1mm,很小,不细分辨别很容易找不到或当成脂肪丢弃)、肾上腺(位于肾脏上级,距离肾脏大约0.3cm,为白色米粒样物质)。
(八)大鼠急性肺水肿模型的复制
在本次实验中,我们小组雄性大鼠体重350g,注射8%的氯化铵3.5ml。
观察大鼠出现:
口唇紫绀、眼睛突出、四肢无力、头向胸部弯曲及四肢抽搐。
采用引颈法处死,解剖观察,取出双肺称重2.1g,由于实验器材有限,在本次实验中并未计算肺重量系数。
(九)阴道涂片的制作及性周期观察
保定大鼠,充分暴露阴道,用滴管吸生理盐水1ml,然后插入大鼠阴道深部反复冲洗4---5次,确保有吸到阴道分泌物。
将1滴冲洗液涂于载玻片上,用酒精灯烘干。
用姬姆萨染液染色20min,流水冲洗,在显微镜下观察。
常见3种细胞:
角化上皮细胞的体积较大,呈片状,多变形;有核上皮细胞体积中等,圆形或椭圆形;白细胞体积较小、圆形、透亮。
采用阴道涂片法判断大鼠性周期,具有准确、简便、实用等优点。
实验报告五
Beagle犬的常用操作技术的示教实验
一、实验目的和要求
通过示教和实际操作初步掌握Beagle犬的主要采血和注射给药等操作技术。
二、实验基本步骤
(一)Beagle犬年龄的判断
判断犬的年龄,主要依靠犬牙齿的磨损和脱落情况。
出生10几天即生乳牙,2个月后开始由门齿、犬齿、臼齿逐渐换为恒牙,8---10个月恒牙换齐,但需要1年半以后牙齿才能生长坚实。
年龄越大磨损越严重。
(二)Beagle犬的保定
1.保定架固定
2.采用犬固定床
3.徒手保定法:
此法方便,可用于前肢采血、经口给药等。
但注意对那些比较狂躁、性情较不温顺的犬不能采用。
在本次示教中,犬已被麻醉,未被保定。
(三)Beagle犬的采血方法
1.后肢外侧小隐静脉采血
2.前肢背侧皮下静脉采血
3.颈静脉采血
4.股动脉采血
在本次实验中,我们采用的是后肢外侧小隐静脉采血、.前肢背侧皮下静脉采血。
实验报告六
小鼠无菌剖腹取胎术实验
一、实验目的和要求
通过实际操作,了解通过剖腹取胎术得到幼鼠的基本原理、操作和用途。
二、实验原理
由于胎盘屏障的作用,因体内的正常微生物菌群及大多数病原微生物(除个别例外)不能通过胎盘感染胎仔,因此胎仔处于“无菌”状态通过无菌剖腹获得的胎鼠由无菌母鼠代乳,并维持仔鼠在无菌隔离器中,这是获得无菌动物的唯一途径。
但由于条件所限,本实验仅用于熟悉剖腹获得幼仔的过程,对无菌操作并无严格要求,故实验在实验台上进行。
三、实验步骤
(1)颈椎脱臼法处死孕鼠,仰卧位固定于动物板上,暴露腹部手术部位进行乙醇消毒。
(2)沿腹中线剪开腹部皮肤、腹肌、腹膜,暴露子宫,用止血钳分别夹住子宫颈部和两侧卵巢,剪断取出子宫。
取出子宫后用生理盐水洗一下,尽快将胎鼠连胎盘一起取出。
(3)用棉球擦拭幼鼠,轻轻按摩胸腔及腹部促使新生鼠呼吸,待呼吸、循环正常后用止血钳扎断脐带。
四、实验结果
总胎数:
16只,体长大约:
17mm。
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- 复旦大学 实验 动物学 报告
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