过氧化氢酶活力的测定实验报告.docx
- 文档编号:23019639
- 上传时间:2023-04-30
- 格式:DOCX
- 页数:13
- 大小:20.62KB
过氧化氢酶活力的测定实验报告.docx
《过氧化氢酶活力的测定实验报告.docx》由会员分享,可在线阅读,更多相关《过氧化氢酶活力的测定实验报告.docx(13页珍藏版)》请在冰豆网上搜索。
过氧化氢酶活力的测定实验报告
竭诚为您提供优质文档/双击可除
过氧化氢酶活力的测定实验报告
篇一:
实验35过氧化氢酶的活性测定
植物在逆境下或衰老时,由于体内活性氧代谢加强而使h2o2发生累积。
h2o2可以直接或间接地氧化细胞内核酸,蛋白质等生物大分子,并使细胞膜遭受损害,从而加速细胞的衰老和解体。
过氧化氢酶可以清除h2o2,是植物体内重要的酶促防御系统之一。
因此,植物组织中h2o2含量和过氧化氢酶活性与植物的抗逆性密切相关。
本实验用分光光度法测定过氧化氢含量,利用高锰酸钾滴定法和紫外吸收法测定过氧化氢酶活性。
一、过氧化氢含量的测定
【原理】
h2o2与硫酸钛(或氯化钛)生成过氧化物—钛复合物黄色沉淀,可被h2so4溶解后,在415nm波长下比色测定。
在一定范围内,其颜色深浅与h2o2浓度呈线性关系。
【仪器和用具】
研钵;移液管0.2ml×2支,5ml×1支;容量瓶10ml×7个,离心管5ml×8支;离心机;分光光度计。
【试剂】
100μmol/Lh2o2丙酮试剂:
取30%分析纯h2o257μl,溶于100ml,再稀释100倍;2mol/L硫酸;5%(w/V)硫酸钛;丙酮;浓氨水。
【方法】
1.制作标准曲线:
取10ml离心管7支,顺序编号,并按表40-1加入试剂。
待沉淀完全溶解后,将其小心转入10ml容量瓶中,并用蒸馏水少量多次冲洗离心管,将洗涤液合并后定容至10ml刻度,415nm波长下比色。
2.样品提取和测定:
(1)称取新鲜植物组织2~5g(视h2o2含量多少而定),按材料与提取剂1∶1的比例加入4℃下预冷的丙酮和少许石英砂研磨成匀浆后,转入离心管3000r/min下离心10min,弃去残渣,上清液即为样品提取液。
(2)用移液管吸取样品提取液1ml,按表35-1加入5%硫酸钛和浓氨水,待沉淀形成后3000rpm/min离心10min,弃去上清液。
沉淀用丙酮反复洗涤3~5次,直到去除植物色素。
(3)向洗涤后的沉淀中加入2mol硫酸5ml,待完全溶解后,与标准曲线同样的方法定容并比色。
3.结果计算:
植物组织中h2o2含量(μmol/gFw)=
式中c—标准曲线上查得样品中h2o2浓度(μmol);Vt—样品提取液总体积(ml);V1—测定时用样品提取液体积(ml);Fw—植物组织鲜重(g)。
二、过氧化氢酶的活性测定——高锰酸钾滴定法
【原理】
过氧化氢酶(cAT)属于血红蛋白酶,含有铁,它能催化过氧化氢分解为水和分子氧,在此过程中起传递电子的作用,过氧化氢则既是氧化剂又是还原剂。
R(Fe+2)+h2o2==R(Fe+3+oh-)
R(Fe+3oh-)2+h2o2==R(Fe+2)2+2h2o+o2
据此,可根据h2o2的消耗量或o2的生成量测定该酶活力大小。
在反应系统中加入一定量(反应过量)的h2o2溶液,经酶促反应后,用标准高锰酸钾溶液(在酸性条件下)滴定多余的h2o2
5h2o2+2Kmno4+4h2so4
5o2+2Khso4+8h2o+2mnso4
即可求出消耗的h2o2的量。
【仪器和用具】
研钵;三角瓶50ml×4;酸式滴定管(10ml);恒温水浴;容量瓶25ml×1。
【试剂】
10%h2so4;0.2mol/L磷酸缓冲液ph7.8;
0.1mol/L高锰酸钾标准液:
称取Kmno4(AR)3.1605g,用新煮沸冷却蒸馏水配制成1000ml,用0.1mol/L草酸溶液标定;
0.1mol/Lh2o2:
市售30%h2o2大约等于17.6mol/L,取30%h2o2溶液5.68ml,稀释至1000ml,用标准0.1mol/Kmno4溶液(在酸性条件下)进行标定;
0.1mol/L草酸:
称取优级纯h2c2o4·2h2o12.607g,用蒸馏水溶解后,定容至1L。
【方法】
1.酶液提取取小麦叶片2.5g加入ph7.8的磷酸缓冲溶液少量,研磨成匀浆,转移至25ml容量瓶中,用该缓冲液冲洗研钵,并将冲洗液转入容量瓶中,用同一缓冲液定容,4000rpm离心15min,上清液即为过氧化氢酶的粗提液。
2.取50ml三角瓶4个(两个测定两个对照),测定瓶中加入酶液2.5ml,对照瓶中加入煮死酶液2.5ml,再加入2.5ml0.1mol/Lh2o2,同时计时,于30℃恒温水浴中保温10min,立即加入10%h2so42.5ml。
3.用0.1mol/LKmnO4标准溶液滴定h2o2,至出现粉红色(在30min内不消失)为终点。
酶活性用每克鲜重样品1min内分解h2o2的毫克数表示:
酶活(mgh2o2/gFw·min)=
式中A—对照Kmno4滴定毫升数;b—酶反应后Kmno4滴定毫升数;VT—酶液总量(ml);V1—反应所用酶液量(ml);w—样品鲜重(g);
1.7—1ml0.1mol/L的Kmno4相当于1.7mgh2o2。
【注意】
所用Kmno4溶液及h2o2溶液临用前要经过重新标定。
三、过氧化氢酶的活性测定——紫外吸收法
【原理】
h2o2在240nm波长下有强烈吸收,过氧化氢酶能分解过氧化氢,使反应溶液吸光度(A240)随反应时间而降低。
根据测量吸光率的变化速度即可测出过氧化氢酶的活性。
【仪器与用具】
紫外分光光度计;离心机;研钵;250ml容量瓶1个;0.5ml刻度吸管2支,2ml刻度吸管1支;10ml试管3支;恒温水浴;
【试剂】
0.2mol/Lph7.8磷酸缓冲液(内含1%聚乙烯吡咯烷酮);0.1mol/Lh2o2(用0.1mol/L高锰酸钾标定)。
【方法】
1.酶液提取:
称取新鲜小麦叶片或其它植物组织0.5g置研钵中,加入2~3ml4℃下预冷的ph7.0磷酸缓冲液和少量石英砂研磨成匀浆后,转入25ml容量瓶中,并用缓冲液冲洗研钵数次,合并冲洗液,并定容到刻度。
混合均匀将量瓶置5℃冰箱中静置10min,取上部澄清液在4000rpm下离心15min,上清液即为过氧化氢酶粗提液。
5℃下保存备用。
2.测定:
取10ml试管3支,其中2支为样品测定管,1支为空白管,按表40-2顺序加入试剂。
表40-2紫外吸收法测定h
样品液配置表25℃预热后,逐管加入0.3ml0.1mol/L的h2o2,每加完一管立即记时,并迅速倒入石英比色杯中,240nm下测定吸光度,每隔1min读数1次,共测4min,待3支管全部测定完后,按下式计算酶活性。
以1min内A240减少0.1的酶量为1个酶活单位(u)。
过氧化氢酶活性(u/gFw/min)=
式中
A240=As0-
As0—加入煮死酶液的对照管吸光值;As1,As2—样品管吸光值;Vt—粗酶提取液总体积(ml);V1—测定用粗酶液体积(ml);Fw—样品鲜重(g);
0.1—A240每下降0.1为1个酶活单位(u);t—加过氧化氢到最后一次读数时间(min)。
【注意事项】
凡在240nm下有强吸收的物质对本实验有干扰。
【思考题】
1.影响过氧化氢酶活性测定的因素有哪些?
2.(:
过氧化氢酶活力的测定实验报告)过氧化氢酶与哪些生化过程有关?
篇二:
过氧化氢酶活力的测定
实验三过氧化氢酶活性的测定
一、实验目的:
了解过氧化氢酶的作用,掌握碘量法测定过氧化氢酶活性的原理和方法;
二、实验原理:
过氧化氢酶是一类色素蛋白,含有铁,它能催化过氧化氢分解为水和分子氧,在此过程中起传递电子的作用,过氧化氢既是氧化剂又是还原剂。
R(Fe+2)2+h2o2---R(Fe+3oh)2
R(Fe+3oh)2+h2o2----R(Fe+2)2+2h2o+o2
并合上式:
h2o2----2h2o+o2
据此,可根据消耗h2o2的消耗量或o2的生成量测定该酶活力大小。
在反应系统中加入一定量的过氧化氢溶液,经酶促反应后,加入过量的KI溶液生成的I2用标准的na2s2o3滴定,根据na2so3消耗的体积计算h2o2的消耗量。
三、实验材料、仪器和试剂:
1、实验材料:
小白菜
2、仪器:
恒温水浴锅、研钵、容量瓶、刻度吸管、100mL三角瓶
3、试剂:
(1)0.05mol/Lh2o2
(2)2mol/Lh2so4
(3)0.1mol/Lna2s2o3
(4)1%淀粉溶液(5)10%(nh4)6mo7o24
(6)ph7.8的磷酸缓冲液(7)20%KI
(8)caco3
四、实验步骤:
(1)酶液提取:
称取2.5g白菜叶,加少量caco3,2mLph7.8的缓冲液少量,研成匀浆,移入100ml容量瓶,用上述缓冲液冲洗研钵数次转入容量瓶中定容,静置10分钟,过滤。
取滤液10mL于另一100mL的容量瓶中稀释定容待测(根据酶活高低而定)。
(2)酶促反应:
取锥形瓶4个,编好号各加入10ml酶液之后,立即向两个瓶中加入2mol/Lh2so45mL,终止酶活性,作空白对照。
向另外两瓶各加h2o25mL,摇匀,在加入h2o2的那一刻起,记录时间,5分钟后迅速向实验瓶中加入2mol/Lh2so45mL,终止酶活性。
向三角瓶中加1mL20%KI和3滴(nh4)6mo7o24,摇匀后迅速用标准na2s2o3溶液进行滴定至淡黄色,加入1mL1%淀粉指试剂,蓝色恰好消失,
记录消耗的na2s2o3的体积V0,V;
五、结果记录与数据处理:
被分解的h2o2量(mg)=(空白滴定值-样品滴定值)×na2s2o3摩尔浓度×17过氧化氢酶活性(mg.g-1.min-1)=
六、结果分析与问题讨论:
被分解的h2o2量(mg)?
(总体积?
测定取液量)样品重(g)?
时间(min)
实验十还原型Vc含量测定
一、实验目的
学会从生物样品中提取维生素c方法,了解蔬菜中维生素c的含量。
学会测定维生素c含量的原理和方法,进一步掌握滴定法的基本操作技术.
二、实验原理
Vc由于其结构中具有烯二醇的结构,所以它是一种强还原剂,易被弱氧化剂氧化脱氢而成氧化型抗坏血酸。
Vc在酸性溶液中比中性溶液及碱性溶液中稳定,但易被热、光及某些金属离子破坏。
本实验是用碘液作氧化剂,淀粉为指示剂,当Vc全部被氧化后,过量一滴碘液与淀粉指示剂反应生成淡兰色络合物,即为终点。
三、实验材料、试剂及仪器
材料:
西红柿。
试剂:
2%草酸溶液:
称取20g草酸溶于蒸馏水中,溶解后稀释到1000mL,混匀;1%可溶性淀粉溶液:
称取1g可溶性淀粉用少量蒸馏水调成匀浆,倾入80mL的沸水中继续煮沸至透明,冷却后稀释至100mL;
0.1mol/L碘液(随用随配):
称取6.5克碘和20克碘化钾于研钵中,加少量的蒸馏水研磨至完全溶解后稀释至500毫升混匀。
贮存于棕色试剂瓶中;1%草酸溶液:
称取10g草酸溶于蒸馏水中,溶解后稀释到1000mL,混匀;0.1mg/mLVc标准溶液:
准确称取抗坏血酸10mg,溶于1%草酸溶液中稀释至100mL贮存于棕色试剂瓶中冷藏(现用现配)。
仪器:
万分之一电子天平;棕色酸式滴定管;三角瓶等。
四、实验操作步骤:
1、碘液的标定:
吸取0.1mg/mLVc标准溶液10mL于100mL的锥形瓶中,加5滴可溶性淀粉,摇匀后用稀碘液滴定至浅蓝色,且30秒内不退色,即为终点。
滴二个平行样。
2、样品的提取:
准确称取10g左右的样品1份,
用少许2%草酸溶液研磨成匀浆,转入100mL容量瓶中,用2%的草酸溶液洗研钵3-4次,一并转入容量瓶中,最后用2%草酸溶液定容至100mL摇匀,放置10
分钟后过滤,滤液备用。
3、滴定:
空白滴定:
准确吸取10mL2%草酸溶液于100mL的锥形瓶中,加5滴1%淀粉指示剂,摇匀后用稀碘液滴定至浅蓝色,且30秒内不退色,即为终点,滴二个平行样。
样品滴定:
准确吸取10mL样品于100mL的锥形瓶中,加5滴1%淀粉指示剂,摇匀后用稀碘液滴定至浅蓝色,且30秒内不退色,即为终点,滴二个平行样。
六、数据记录及计算
1、样品的重量(g):
样品1:
w1=
样品2:
w2=
2、碘液的标定(mL):
V1=V2=V=
3、样品的滴定(mL):
4、空白的滴定(mL):
5、计算:
每毫升碘液相当于Vc的毫克数K(mgVc/mLI2)=0.1?
10V
Vc的含量(mg/100g样品)=
六、结果分析与讨论
(V样品?
V空白)?
c?
100?
100w样品?
10
篇三:
实验二、过氧化氢酶的活力和动力学常数测定
(1)
幻灯片1
实验二、过氧化氢酶的活力和动力学常数测定
——高锰酸钾滴定法
幻灯片2
一、实验目的
?
1.掌握过氧化氢酶活力测定的方法
?
2.了解过氧化氢酶在生物体中的作用原理?
3.掌握测定酶米氏常数的基本原理和方法
幻灯片3
二、实验原理
?
过氧化氢酶(cAT)属于血红蛋白酶,含有铁,它能催化过氧化氢分解为水和分子氧,
铁起传递电子的作用,过氧化氢既是氧化剂又是还原剂。
?
R(Fe2+)+h2o2=R(Fe3++oh-)
?
R(Fe3+oh-)2+h2o2=R(Fe2+)2+2h2o+o2
?
总反应式:
2h2o22h2o+o2
过氧化氢酶
幻灯片4
?
据此,可根据h2o2的消耗量或o2的生成量测定该酶活力大小。
?
本次实验酶促反应速度用单位时间底物的减少量表示,求出单位时间内反应前后h2o2
的量,计算出酶促反应速度。
?
在反应系统中加入过量的h2o2溶液,经酶促反应后,用标准高锰酸钾溶液(在酸性条
件下)滴定多余的h2o2,即可求出消耗的h2o2的量。
?
5h2o2+2Kmno4+4h2so4=5o2+2Khso4+8h2o+2mnso4
幻灯片5
底物浓度对酶促反应速度的影响
?
在温度、ph及酶浓度恒定的条件下,底物浓度对酶促反应的速度有很大的影响。
?
底物浓度很低时,酶促反应的速度(v)随底物浓度的增加迅速增加;随着底物浓度继
续增加,反应速度的增加开始减慢;当底物浓度增加到一定值时,反应速度达到极限值(Vmax)。
?
米氏方程表示底物浓度与反应速度的关系
幻灯片6米氏常数Km
?
Km等于反应速度达到最大反应速度一半时的底物浓度。
?
在酶学分析中,Km是酶的一个基本特征常数,它包含着酶与底物结合和解离的性质。
?
Km表示酶和底物之间的亲和能力,Km值越大,亲和能力越弱,反之亦然。
?
对于每一个酶促反应,在一定条件下都有其特定的Km值,因此可用于鉴别酶。
问题:
如何测定酶的Km值?
幻灯片7
?
米氏方程的倒数形式,即双倒数作图法?
(LineweaveR-burk法)如下:
?
[s]为底物浓度(mol/L)?
v为反应速度(μ
mol/L*min)
?
vmax为最大反应速度(μ
mol/L*min)
?
Km为米氏常数(mol/L)
?
用双倒数法(以1/v对1/[s]作图)计算Km和vmax
Km11?
?
vvmax[s]vmax
幻灯片8
三、材料、试剂与器具1.材料:
新鲜马铃薯2.试剂:
1)10%h2so4
2)0.2mol/L磷酸缓冲液,ph7.8
3)0.02mol/L高锰酸钾标准液:
称取Kmno4(AR)3.1605g,用新煮沸冷却蒸馏水配制成1000mL,临用前用草酸钠标定。
幻灯片9
高锰酸钾溶液标定
?
取5mL0.1mol/L的草酸和3mL10%h2so4溶液于锥形瓶中,加热至(75~85)℃
(见冒热气),趁热用Kmno4标准溶液滴定,刚开始反应较慢,滴入一滴Kmno4标准溶液摇动,待溶液褪色,再加第二滴Kmno4(此时生成的mn2+起催化作用)。
随着反应速度的加快,滴定速度也可逐渐加快,但滴定中始终不能过快,,不断摇动或搅拌。
滴定至溶液呈现微红色并持续半分钟不褪色即为终点。
?
离子反应方程式:
2mno4-+5c2o42-+16h+←→2mn2++10co2+8h20计算公式:
标定的Kmno4c=0.2/Vmol/L幻灯片10
4)0.1mol/Lh2o2:
市售30%h2o2大约等于17.6mol/L,取30%h2o2溶液5.68mL,稀释至1000mL,用标准0.02mol/LKmno4溶液(在酸性条件下)进行标定。
5)0.1mol/L草酸钠:
称取优级纯na2c2o413.4g,用蒸馏水溶解后,定容至1L。
幻灯片113.器具
(1)恒温水浴
(2)研钵
三角瓶(50mL×4)酸式滴定管(10mL)容量瓶(50mL)幻灯片12四、实验步骤
?
(一)酶液提取
取新鲜马铃薯5g加入ph7.8的磷酸缓冲溶液少量,研磨成匀浆,转移至50mL容量瓶中,用该缓冲液冲洗研钵,并将缓冲洗液转入容量瓶中,用同一缓冲液定容,4000rpm离心15min,上清液即为过氧化氢酶的粗提液。
注意:
提酶在0-4℃操作
幻灯片13
?
(二)酶活力的测定?
1.反应
?
取50mL三角瓶4个(两个测定+两个对照),测定瓶中加入酶液2.5mL,对照瓶中加
入煮死酶液2.5mL,再加入2.5mL0.1mol/Lh2o2,同时计时,于30℃恒温水浴中保温10min,立即加入10%h2so42.5mL。
?
2.滴定
用0.02mol/LKmnO4标准溶液滴定h2o2,至出现粉红色(在30s内不消失)为终点。
注意:
每瓶反应时间要精确控制在10min
幻灯片143.计算
?
酶活力用每克鲜重样品1min内分解h2o2的毫克数表示?
酶活(mgh2o2/g·min)=?
式中:
?
A—对照Kmno4滴定毫升数;
?
b—酶反应后Kmno4滴定毫升数;?
VT—酶液总量(mL);
?
V1—反应所用酶液量(mL);?
Fw—样品鲜重(g);
1.7—1mL0.02mol/L的Kmno4相当于1.7mgh2o2
幻灯片15
(三)动力学常数的测定(Km和vmax)1.反应
?
取100mL锥形瓶5个,编号后按下表加入试剂
?
各瓶分别加好h2o2和蒸馏水后,再依次加入酶液0.5mL,混匀,记录各瓶起始反应的
时间。
30℃反应5min后立即加入10%h2so45.0mL终止反应。
(A?
b)?
VT?
17.Fw?
V1?
t
?
?
?
?
幻灯片162.滴定
?
用0.02mol/LKmno4滴定各瓶中剩余的h2o2至微红色,记录消耗的Kmno4溶液毫升数。
分别求出各瓶反应前后的底物浓度[s]0、[s]1,并计算反应速度v:
[s]0=c1V1/10[s]1=2.5c2V2/10v=(c1V1-2.5c2V2)/5
?
以1/v对1/[s]0作图?
求出Km和Vmax
(用excel作图)
3.计算
[s]0为反应前的底物浓度(mol/L)[s]1为反应后的底物浓度(mol/L)
- 配套讲稿:
如PPT文件的首页显示word图标,表示该PPT已包含配套word讲稿。双击word图标可打开word文档。
- 特殊限制:
部分文档作品中含有的国旗、国徽等图片,仅作为作品整体效果示例展示,禁止商用。设计者仅对作品中独创性部分享有著作权。
- 关 键 词:
- 过氧化氢酶 活力 测定 实验 报告