实验室玻璃仪器管理规程Word格式.docx
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5.1.2锥形瓶和具塞锥形瓶
5.1.3蒸馏烧瓶
5.1.5平底蒸发皿、圆底蒸发皿和化学蒸发皿
5.1.6表面皿
5.1.7培养皿
5.1.8分馏管
5.1.9冷凝管
n
5.1.10称量瓶
5.1.11试剂瓶
小门试刮Ik
律色小口KM*
掠包太H试需阪
91/1/9
MI/9
£
1/1/9
啾凰乙1/1/9
5.1.16漏斗
5.1.17常用量具
mt
[I
5.1.18吸管及移液管
割度吸It
5.1.19滴定管
5.1.20
蒸馏器
5.1.21
3Ld
Pn6
5.1.22温度计及比重计
521玻璃仪器中容量仪器的使用方法很重要。
使用方法不正确,即使很准确的容量仪器,也会得
到不正确的测量结果。
5.2.2在容量分析中,用来准确测量溶液体积的滴定管、移液管、刻度吸管和量瓶,仪器上注有温
度、容量和刻度。
5.2.3滴定管使用方法
5.2.3.1滴定管是在滴定时用来测定自管内流出溶液的体积。
它是由具有准确刻度的细长玻璃管及
控制阀组成。
523.2在容量分析滴定时,若消耗滴定液在25ml以上可选用50ml滴定管;
10ml以上25ml以下
者可用25ml滴定管;
在10ml以下宜用10ml滴定管。
根据消耗量多少来选择适当大小的滴定管,以减少滴定时体积测量的误差
5.2.3.3滴定管的种类:
酸式滴定管、碱式滴定管;
分别又分为棕色和无色两种。
5.2.3.4使用前的准备
5.2.4.4.1在装溶液前,确定滴定管已经洗净后(否则应重新清洁),先用少量滴定液荡洗三次(每
次约5〜10ml),再装入滴定液。
5.2.442滴定液最好从贮液瓶中直接倒入滴定管,尽量避免用另一器皿传递,以免浓度改变或沾
污。
若需用另一器皿,应取用清洁干燥的玻璃仪器,并用少量滴定液荡洗。
5.2.4.4.3滴定液装入滴定管液面应该超过零刻度以上(约0.5cm),滴定管尖端的气泡必须排除。
再调整溶液的液面至刻度零处,即可进行滴定。
在滴定管上扣一个小烧杯,以减少溶液挥发或沾污。
5.2.3.5注意事项
5.2.3.5.1滴定管在装满溶液后,管外壁的溶液要擦干。
手持滴定管时,避免手心紧握装有溶液部分的管壁。
5.2.3.5.2读数时应将滴定管从滴定台上取下,手持弯月面上端无溶液部分,使管自然下垂,视线与弯月面平齐。
每次滴定最好从刻度零开始,以使每次测定结果能抵消滴定管的刻度误差。
523.5.3滴定时液体的流出速度,以每秒钟放3〜4滴为宜,滴定临近终点时,滴定要慢些。
5.2.4容量瓶(量瓶)使用方法
5.2.4.1容量瓶主要用来把一定量的溶液(或固体)稀释(或溶解)到一定体积,常见的容量瓶容积有10、25、50、100、200、250、500、1000ml。
5.4.4.2在把溶液装入瓶内时,必须注意弯月面最低处要恰与瓶颈上的刻度相切,观察时手持刻度线上端无溶液处,使容量瓶自然下垂,眼睛位置应与液面在同一水平面上,否则会引起测量体积不准确。
容量瓶有无色、棕色两种,应注意使用。
5.4.4.3容量瓶是用来精密配制一定体积的溶液的,不要用于贮存溶液,配制好的溶液应转移到试剂瓶中保存,容量瓶不应在烘箱中烘烤。
5.2.5移液管使用方法
5.2.5.1常用移液管有1、2、3、5、10、25及50ml。
5.2.5.2先将管洗净,自然沥干,并且用待量取的溶液少许荡洗2次,然后拇指及中指拿住管径标
线以上的地方,将移液管插入供试品溶液面下约1cm处。
这时,拿洗耳球轻轻将溶液吸上,眼睛注
意正在上升的液面的位置,移液管应随容器内液面下降而下降。
至液面上升到刻度标线以上时,迅速用食指堵住管口。
5.2.5.3取出移液管,用滤纸条拭干移液管下端外壁,并使之与地面垂直,稍微松开食指,使液面缓缓下降,此时视线应平视标线,直到凹液面最低点与标线相切,立即按紧食指,使液体不再流出,并使出液口尖端接触容器外壁,以除去尖端外壁残留溶液。
5.2.5.4再将移液管移入准备接受溶液的容器中,使其出口尖端接触器壁,使容器微斜,而使移液
管直立,然后放松右手食指,使溶液自由地顺壁流下。
待全部流尽后,近似等待3秒后取出,此时
移液管尖端内仍残留一滴液体,不可吹出(未标有“吹”字的移液管)。
5.2.6刻度吸管使用方法
5.2.6.1用于量取体积不需要十分准确的溶液,常用的有0.5、1、2、5、10、20、25ml等。
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5.2.6.2它有全部吹出、流至管口停留数秒或只放到下标线为止的三种形式。
5.2.6.3量取时,最好选用略大于量取量的刻度吸管,读数的方法与移液管相同。
5.2.7量筒使用方法
5.2.7.1量筒分类:
量筒按结构分具塞量筒和无塞量筒。
具塞量筒为量入式量筒,无塞量筒有量入式和量出式两种。
5.2.7.1.1量入式量筒:
用法标记为“In“,用于精度要求不高的配液。
527.1.2量出式量筒:
用法标记为“Ex”,用于液体的粗量。
527.2量筒的容量:
指在20C时,量入、量出的容量。
5.2.7.2.1量入式量筒:
将水注入干燥量筒内至所需分度线的额定的体积,即为该分度线的容量。
5.2.7.2.2量出式量筒:
将水注入量筒所需分度线,然后倒出,并倒置30秒后所排出水的体积,即为该分度线的容量。
5.2.7.3使用时,应根据需要选用适当规格的量筒。
规格越大,筒径越大,其容量误差也越大。
5.2.7.4应根据量筒上的量入或量出标记区别使用。
量入式只用于量入测量,量出式只用于量出测量。
5.2.7.5量筒的液面较大,观察和调定液面时,应将量筒放于桌面等平稳处,并使其与水平面垂直,否则会带来很大误差。
5.3玻璃仪器及器具的清洗
5.3.1实验用玻璃器皿在实验结束后均要进行清洁。
5.3.2清洁用水:
饮用水、纯化水。
5.3.3清洁用具:
毛刷。
5.3.4洗涤液
5.3.4.1洗洁精等合成洗涤剂(常用):
用于去除油污。
5.342铬酸洗液的配制(尽量不用):
取研细的重铬酸钾(K2CRQ)20g,加水40ml,加热使溶解。
冷却后沿容器壁缓缓加入浓硫酸(H2SO4)360ml,边加边搅拌,混匀即得(变成绿色后失效,应重配),
用于去除器壁残留油污。
5.3.4.3氢氧化钠-乙醇洗液:
用于洗去油污和某些有机物,用此洗液时不应在玻璃器皿中停留超过
20分钟,以免腐蚀玻璃。
5.3.4.4碘-碘化钾溶液:
用于洗涤使用硝酸银溶液后留下的黑褐色沾污物。
5.3.4.5工业盐酸:
用于洗去碱性物质和大多数无机物残留。
5.3.4.6乙醚、丙酮等有机溶剂:
用于洗去油污或溶于该溶剂的有机物,用乙醇配制的指示液的干
渣可用盐酸-乙醇(1+2)洗涤。
5.3.5清洁方法
5.3.5.1水刷洗:
首先用毛刷蘸水刷洗量器内壁,然后用水冲去瓶内可溶性物质,再刷去量器外壁粘附的灰尘,最后用纯化水润洗至少3次。
5.3.5.2用合成洗涤剂刷洗:
用水稀释洗涤剂,装入量器中摇动,必要时可加入碎滤纸块或用毛刷刷洗(温热的洗涤剂去油能力更强);
然后冲净洗涤剂,再用自来水冲洗3次,最后用纯化水润洗至少3次。
5.3.5.3体积小的玻璃仪器(如滴管、移液管等)浸于温热的洗涤剂水溶液中浸泡数分钟,然后冲净洗涤剂,再用自来水冲洗3次,最后用纯化水润洗至少3次。
5.3.5.4用合成洗涤剂未洗干净的玻璃仪器,晾干后,用其他适宜的洗涤液荡洗内壁,使污渍处被洗涤液完全润湿,浸泡数分钟后冲净洗涤液,再用自来水冲洗3次,最后用纯化水润洗至少3次。
5.3.5.5在使用不同洗涤剂时,一定要把上一种洗涤剂除去后再用另一种,以免相互作用。
5.3.6干燥与贮存
5.3.6.1滴定管、移液管、容量瓶、量筒等洗净后应倒置自然晾干,然后放于专用柜中保存。
5.3.6.2其它玻璃仪器可倒置自然晾干或用烘箱、烘干器烘干,然后摆放在专用柜中备用。
5.3.6.3清洁后的玻璃仪于玻璃仪器柜中的同一层存放,柜中只能存放清洁干燥完成的器皿。
5.3.7清洁效果评价:
清洗后的玻璃仪器倒置观察,水不应成股流出,流出后器壁应不挂水珠,否则重洗。
5.3.8贮存时限
5.3.8.1理化实验用玻璃器皿清洁后贮存时间不能超过一周,超过贮存时限的玻璃仪器在使用前应重新清洁。
5.3.8.2微生物实验使用的玻璃器皿需要临用清洁,并于121C,15min灭菌后方可使用。
5.4玻璃仪器的检定实验室玻璃仪器委外检定。
6.记录
无
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