兽医采样检测技术Word文档格式.docx
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二、牛静脉血液的采集
(一)颈静脉采血
1、器械:
酒精、碘酊药棉;
5ml或10ml试管,试管架;
12~16#针尖;
毛剪、止血钳、镊子;
3~4米细绳1根。
2、保定:
站立保定。
3、助手:
至少2人。
4、部位确定:
一般在颈静脉沟的上1/3和中1/3交界处的颈静脉内(两侧均可)。
颈静脉沟位于颈下侧,由臂头肌和胸头肌形成的一肌沟,外表肉眼可见。
牛颈静脉位置如下图示:
5、操作:
助手保定好牛头。
先看(摸)清颈静脉沟,确定部位,局部剪毛(看不清时)、消毒。
以左手拇指(于左侧操作时)或中指和无名指(于右侧操作时)按压颈静脉沟的中下部,或让助手用细绳横勒颈中下部,稍等片刻,让颈静脉充分怒张,右手持针头在注射点按静脉走向,与静脉呈45°
角斜向迅速刺入。
若牛皮较厚,指力有限,用此法常感困难时,可手持针头,依靠腕力把针头朝静脉方向快速地垂直刺入,当刺入静脉内,立见回血,即可用试管接之。
若针头偏离静脉(未见回血),可将针头稍稍退出或拔至皮下,在认清静脉走向后重新刺入。
一般来说,只要刺入静脉,针头内滴出之血液可有5~10毫升,若滴出之血液量较少或较慢,可用手指按压颈静脉中下端片刻即可。
采血完毕,迅速拔出针头,用碘酊棉球按压针孔片刻即结束。
(二)尾静脉采血
1、器械同上。
3、部位确定:
尾根腹侧中部。
4、操作:
助手立于牛的右侧,将尾声轻轻抬起,使之基本与地面平行,采血者立于牛的左侧,手持装有针头的注射器,使针头与尾椎纵轴成45°
角,向上向前方刺入约1~2cm,边刺边旋动注射器活塞,见血即可。
采血完毕,迅速拔出针头,局部按压、消毒。
三、猪静脉血液的采集
(一)耳静脉采血(适用于大猪)
1、器械准备:
配7#针尖的一次性注射器。
左侧(或右侧)横卧保定。
耳下缘1/2处。
耳静脉局部常规消毒处理。
助手用手指捏压耳根部静脉血管,使静脉充盈、怒张。
术者用左手的食指和中指在耳下将耳上托,拇指在上部把注射点皮肤展平,右手持注射器把针头对准血管(针头与血管成30~45°
角)刺入,当初步判定针尖已刺入血管后,将注射器放平,顺血管走向伸入(此时感觉针尖阻力明显减小),同时抽动注射器活塞,慢慢抽取血液。
如血管内血量较少,助手可用手指自耳根向耳尖部挤抹。
采血完毕,迅速拔出针头,局部用干燥棉球按压止血。
(二)前腔静脉采血
配7#长针尖的一次性注射器。
仰卧保定,两前肢与体中线垂直,两后肢后引,头部贴地,使前腔静脉怒张。
熟练时也可取半仰卧、侧卧或站立保定。
刺入点右侧或左侧胸浅窝内,即在第一肋骨和胸骨柄(胸骨的前端)结合处前方。
亦有人刺入点定位于耳根与胸骨柄连线上,胸骨柄前1~2指宽处。
右手持针,针头斜向对侧或向后内方(与胸骨纵轴基本成45°
角),与地面成60°
角,刺入2~5cm深(视猪只的大小定),针头向刺入的同时,微微抽动活塞,使注射器形成负压,一旦进入前腔静脉,立见血液涌入注射器。
完毕后常规消毒。
需要说明的是,刺入点一般取右侧,因左侧靠近膈神经而易损伤。
四、家禽血样的采集
(一)鸡翅内侧静脉采血
酒精棉球;
小试管或细塑料管,试管架;
镊子;
配5~7#针尖的一次性注射器。
手提保定。
助手一手抓住两只鸡腿,一手抓鸡翅根部,以拇指按压静脉管。
鸡翅内侧腋静脉,肉眼可见。
助手抓住鸡翅根部,以拇指按压静脉管,使之充盈。
术者左手大拇指捏住鸡翅内侧,余四指捏住鸡翅外侧,展平鸡翅,右手持针,沿血管方向,于血管傍先刺入皮下,然后再斜刺向血管,抽取血液(此法避免拔针后出血过多)。
也可直接刺向血管,抽取血液(采用此法,拔针后要用干棉球按压数分钟止血)。
或者将鸡翅摆平,直接先将静脉用针刺破,待血液流出后,用细塑料管利用虹吸的原理吸取血液,事毕,用火将细塑料管一头封闭。
(二)鸡心脏采血
方法1
操作要点:
鸡左侧向上横卧保定,拔去胸上部部分羽毛,寻找由胸骨走向肩胛的皮下大静脉,心脏约在该静脉的分支下侧,有时用食指可摸到心脏跳动。
用酒精消毒后,以碘酊标记部位。
针头(7#)刺入时,如触及胸骨可稍拔出,使针头稍向右偏,避开胸骨,再将针头向里刺入,边刺边抽动活塞,若刺入心脏,便有血液涌入注射器,术毕,局部消毒。
方法2
鸡仰卧保定,鸡头部朝向术者,拔去胸上部少许羽毛,用手指在胸骨上方、嗉囊下方摸得一凹窝,右手持针(7#),自胸骨上方凹窝斜向前下方心脏方向(鸡的左侧、术者的右侧)刺入,边刺边抽动活塞,若刺入心脏,便有血液涌入注射器,术毕,局部消毒。
注意:
此法(含方法1、2)采血后,多会引起鸡只死亡,仅适用于淘汰鸡的采血。
(三)鸡头部静脉窦采血
酒精或碘酊棉球;
小试管,试管架;
配5-7#短针尖的一次性注射器。
助手一手抓鸡的两只腿,一手抓鸡的两翅,使头部向上。
术者左手食指和中指夹住鸡喙,大拇指压住颈上部,以此固定头部。
鸡头后部,枕骨大孔为刺入点。
鸡只如上述方法确切保定后,枕骨大孔部少许拔毛,消毒,术者右手持针,自枕骨大孔进针,针头对准喙尖,约与颈椎纵轴成45°
角,刺入约0.5~0.8cm(视鸡只大小),刺入静脉窦后,针头感觉无阻力,抽取血液,术毕消毒。
此法采血后,亦会引起鸡只死亡,故适用于淘汰鸡的采血。
苗鸡采血亦可用此法。
五、羊静脉血样的采集
保定需2人。
一人立于羊的左侧前方,左手托住羊的下颔,右手抱住羊的耳根部,使头上扬并贴住术者身体。
另一人产于羊的后方,用两手稳住羊的臀部,避免左右走动。
同牛。
一般在羊右侧颈中上部。
术者蹲于羊的右侧,左手大拇指按压颈下部颈静脉的近心端片刻,使颈静脉怒张,剪毛,酒精消毒后,以碘酊标记部位。
右手持针,针头与颈静脉成30~45°
角,顺静脉方向刺入,抽取血液。
术毕,消毒按压止血。
方法基本与猪前腔静脉采血同。
此法适用于羔羊。
第二节畜禽病料采集技术
一、样品采集的原则
采集检测样品是诊断检测工作的重要内容。
采样的时机是否适宜,样品是否具有代表性,样品处理、保存、运送是否合适及时,与检验结果的准确性、可靠性关系极大。
采集样品时,需要符合以下规定:
1、适时采样。
根据检测要求及检测对象和检验项目的不同,选择适当的采样时机十分重要。
样品是有时间要求的,应严格按规定时间采样,有临床症状需要作病原分离的,样品必须在病初的发热期或症状典型时采样,病死的动物,应立即采样。
2、合理采样。
根据诊断检测的要求,须严格按照规定采集各种足够数量的样品外,不同疫病的需检样品各异,应按可能的疫病侧重采样。
对未能确定为何种疫病的,应全面采样。
3、典型采样。
选取未经药物治疗、症状最典型或病变最明显的样品,如有并发症,还应兼顾采样。
4、无菌采样。
采集检验样品除供病理组织学检验外还供病原学及血清学检验,供病原学及血清学检验的样品,必须无菌操作采样,采样用具、容器均须无菌处理,尸体剖检需采集样品的,先采样后检查,以免人为污染样品。
5、适量采样。
采集样品的数量要满足诊断检测的需要,并留有余地,以备必要时复检使用。
6、样品处理。
采集的样品应一种样品一个容器,立即密封,根据样品的性状检验要求的不同,作暂时的冷藏、冷冻或其它处理。
供病毒学检验的样品,数小时内要送到实验室,只作冷藏处理,超过数小时的要冷冻处理,(冻结方法:
可将样品放入-30℃冰箱内冻结,然后再装入有大小冰块或干冰的冷藏瓶(箱)内运送,亦可将装入样品的容器放入隔热保温瓶内,再放入冰块,然后按100g冰块加入食盐约35克,立即将隔热保温瓶瓶口塞紧。
瓶内温度可达-21℃左右)。
供细菌学检验或血清学检验的样品,冷藏送实验室即可。
装样品的容器应贴上标签,标签要防止因冻结而脱落,标签标明采集的时间、地点、号码和样品名称,并附上发病、死亡等相关资料,尽快送实验室。
7、安全采样。
既要保护采样人员,以要防止病原外泄,还要防止样品受到污染。
8、样品包装。
主要是密闭,防止样品损坏、污染和外泄等意外发生。
迅速送检。
应尽快送实验室进行检测,延误送检时间,会影响到检测质量和结果的可靠性。
二、血液样品的采集
1、病毒检验用血液样品。
应在动物发病初体温升高期采集。
血液样品必须是脱纤血或是抗凝血。
抗凝剂可选用肝素或EDTA,枸缘酸钠对病毒有轻微毒性,一般不宜采用。
采血前,在真空采血管或其它容器内按每毫升血液加入0.1%肝素1ml或EDTA20mg。
采集的血液立即与抗凝剂充分混合,防止凝固。
采脱纤血时,先在容器内加入适量小玻璃珠,加入血液后,反复振荡,以便脱去血液纤维。
采集的血液经密封后贴上标签,以冷藏状态立即送实验室。
必要时,可在血液中按每毫升加入青霉素和链霉素各500~1000IU,以抑制血源性可采血中污染的细菌。
2、细菌检验样品。
采血应在动物发病初体温升高或发病期,未经药物治疗期间采集。
血液应脱纤或加肝素抗凝剂(或EDTA或枸缘酸钠),但不可加入抗生素。
采集的血液经密封后贴上标签,以冷藏状态立即送实验室,否则须置4℃冰箱内暂时保存,但时间不宜过久,以免溶血。
3、血清学检验样品。
用作血清学检验的样品不加抗凝剂或脱纤处理。
为保障血清质量,一般情况下,空腹采血较好。
采集的血液贴上标签,室温静置待凝固后送实验室,并尽快将自然析出的血清或经离心分离出的血清吸出,按需要分装,再贴上标签冷藏保存备检。
较长时间才检验的,应冻结保存,但不能反复冻融,否则抗体效价下降。
作血清学检验的血液,在采血、运送、分离血清过程中,应避免溶血,以免影响检验结果。
采集双份血清检测比较抗体效价变化的,第一份血清采于发病的初期并作冻结保存,第二份血清采于第一份血清后3~4周,双份血清同时送实验室。
4、寄生虫检验样品。
因不同的血液寄生虫在血液中出现的时机及部位各不相同,因此需要根据各种血液寄生虫病的特点,取相应时机及部位的血液制成血涂片,送实验室。
三、组织样品的采集
组织样品一般由扑杀动物或病死尸体剖中采集。
从尸体采样时,先剥去动物胸腹部皮肤,以无菌器械将腹腔打开,根据检验目的和生前疫病的初步诊断,无菌采集不同的组织。
1、病毒检验样品。
作病毒检验的组织,必须以无菌技术采集,组织应分别放入灭菌的容器内并立即密封,贴上标签,放入冷藏容器立即送实验室。
如果时间较长,可作冻结状态运送,也可将组织块浸泡在PH7.4左右的乳汉液或磷酸缓冲肉汤保护液内,并按每毫升保护液加入青霉素、链霉素各1000IU,然后放入冷藏容器内送实验室。
供细菌检验的组织样品,应新鲜并以无菌技术采集。
如遇尸体已经腐败,某些疫病的致病菌仍可采集于长骨或肋骨,从骨髓中分离细菌。
采集的所有组织分别放入灭菌的容器内并立即密封,贴上标签,放入冷藏容器立即送实验室。
四、粪便样品的采集
分离病毒的粪便必须新鲜。
少量采集时,以灭菌的棉拭子从直肠深处或泄殖腔粘膜上蘸取粪便,并立即投入灭菌的试管内密封,或在试管内加入少量PH7.4的保护液再密封。
贴上标签冷藏送实验室。
作细菌检验的粪便,最好在动物使用抗菌药物之前,从直肠或泄殖腔粘膜上采集,采样方法与供病毒检验的相同。
可投入无菌缓冲盐水或肉汤的指形管内,贴上标签冷藏送实验室。
3、寄生虫检验样品。
粪便样品应选取新排出的或直接从直肠内采得,以保持虫体或虫体节片及虫卵的固有形态,一般寄生虫检验的粪便用量较多。
采得的粪便以冷藏不冻结状态送实验室。
第三节 几种畜禽疫病的样品采集
一、口蹄疫样品的采集、保存和运送
口蹄疫病毒在病畜的水疱皮内及其淋巴液中含毒量最高。
在水疱发展过程中,病毒进入血流,分布到全身各种组织和体液。
在发热期血液内的病毒含量最高,退热后在奶、尿、口涎、泪、粪便等都含有一定量的病毒。
(一)组织样品
1、样品的选择
用于病毒分离、鉴定的样品以发病动物(牛、羊或猪)未破裂的水泡皮和水泡液为最好。
对临床健康但怀疑带毒的动物可在扑杀后采集淋巴结、脊髓、肌肉等组织样品作为检测材料。
2、样品的采集和保存
样品采集部位可用清水清洗(切忌使用酒精、碘酒等消毒剂消毒、擦拭),剪取病畜的新鲜水泡皮3~5克放入灭菌小瓶中,加适量50%甘油/磷酸盐缓冲液(pH7.4),加盖密封;
也可采用无菌器具采集水泡液至少1毫升,装入灭菌小瓶中(可加适量抗菌素),加盖密封。
尽快冷冻保存。
3、在无法采集水泡皮和水泡液时,可采集淋巴结、脊髓、肌肉等组织样品3~5克装入洁净小瓶内,加盖密封尽快冷冻保存。
样品的包装瓶上均要贴上标签,写明采样地点,动物种类,编号,时间等。
(二)牛、羊食道—咽部分泌物(O—P液)样品
1、样品采集
被检动物在采样前禁食(可饮水)12小时,以免胃内容物反流污染O—P液。
采样探杯在使用前经0.2%柠檬酸或2%氢氧化钠浸泡5分钟,再用洁净水冲洗。
每采完一头动物,探杯要重复进行消毒并充分清洗。
采样时动物站立保定,将探杯随吞咽动作送入食道上部10~15cm处,轻轻来回移动2~3次,然后将探杯拉出。
2、样品的保存
将采集到的8~10mLO—P液倒入25mL以上的灭菌玻璃容器中,容器中应事先加有8~10mL细胞培养液或磷酸缓冲液(0.04mol/L、pH7.4),密封后充分摇匀后尽快冷冻保存,用于病原检测,做出追溯性诊断。
(三)血清
怀疑曾有疫情发生的畜群,错过组织样品采集时机时,可无菌操作采集动物血液,每头不少于10mL。
无菌分离血清装入灭菌小瓶中,加盖密封后冷藏保存,通过检测抗体,做出追溯性诊断。
(四)采集样品时要填写样品采集登记表(见附表4)。
(五)装样玻璃容器必须密封,即防水又不透气。
样品容器需加贴防水标签,并写明样品编号、采集地点、动物种类、时间等。
(六)样品运送。
运输前将样品玻璃容器装入金属套筒中,套筒应填充防震材料,加盖密封,与采样记录一同装入专用运输容器中。
专用运输容器应隔热坚固,内装适当冷冻剂和防震材料。
外包装上要加贴生物安全警示标志。
二、禽流感的样品采集、保存和运输
病毒主要在呼吸道粘膜细胞内增殖。
(一)病禽
1、至少从5只濒死禽采集样品。
样品包括:
泄殖腔拭子和气管拭子(置于缓冲液中)各5个(小珍禽可采集新鲜粪便);
气管和肺的混样5个,肠管及内容物的混样5个;
肝、脾、肾和脑等组织样品(不能混样)各5个。
采集方法:
1)泄殖腔棉拭子:
将棉拭子插入肛门并旋转,使粪便沾在拭子上,后放在运输缓冲液中。
2)气管棉拭子:
活鸡采样时,将棉拭子插入活鸡的气管内,轻轻擦拭气管壁并放入缓冲液中。
死亡动物采气管样品时,可在肺和气管离体情况下进行采集,应将棉拭子插入较深部位用力擦拭,并按上述方法将棉拭子放在运输缓冲液中。
3)粪便样品:
可从活禽市场采取新鲜粪便,用棉拭子沾取粪便,并将采好的样品放在运输缓冲液中。
2、分别采集至少10个病鸡的血样(急性发病期血清)。
采集10只病禽的血样,使用一次性采血器,心脏或翅静脉采血,每只禽采血样2ml~3ml,经离心或自然析出血清后,将血清移到指形管中。
封好口,贴好标签。
不同禽只的血样不能混合。
(二)病死禽
无发病禽时,可从死亡不久的病禽采样,采样要求同病禽。
棉拭子单独放入容器,容器中盛放含有抗菌素的PH值为7.0~7.4的PBS液。
抗生素的选择视当地情况而定,组织和气管拭子悬液中加入青霉素(20001U/mL)、链霉素(2mg/mL)、庆大霉素(50цg/mL)、制霉菌素(100001U/mL)。
但粪便和泄殖腔拭子所用的抗生素浓度应提高5倍。
加入抗生素后pH值应调至7.4。
(三)样品的保存和运输
1、血样要单独存放,不能混合。
2、样品应密封于塑料袋或瓶中,置于有制冷剂的容器中运输,容器必须密封,防止渗漏。
3、样品若能在24小时内送到实验室,冷藏运输。
否则,应冷冻运输。
若样品暂时不用,则应冷冻(最好-70℃或以下)保存。
三、猪瘟
猪瘟病毒复制的主要部位是扁桃体,然后经淋巴管进入淋巴结,继续增殖,随即到达外周血液,从这时起病毒在脾、骨髓、内脏淋巴结和小肠的淋巴结组织繁殖到高滴度。
样品:
全血、骨髓、淋巴结、扁桃体、肾脏、脾脏
四、猪链球菌病
致病性链球菌经呼吸道或其它途径(受损的皮肤和粘膜)进入机体后,首先在入侵处繁殖,很快进入淋巴管和淋巴结。
继之冲破淋巴屏障,沿淋巴系统扩散到血液中,引起菌血症,最后导致各个实质器官严重病变。
生前:
抗凝全血,死后:
肝脏、脾脏
五、新城疫
新城疫病毒存在于病鸡所有器官、体液、分泌物和排泄物,以脑、脾和肺含毒量最高,骨髓含毒时间最长。
眼分泌物、泄殖腔拭子、脾脏、气管粘膜、脑等。
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