11常用实验动物的给药途径和方法Word格式文档下载.docx

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灌胃器由注射器和特殊的灌胃针构成。

灌胃量10～20ml/kg

3兔、犬等:

灌胃一般要借助于开口器、灌胃管进行。

先将动物固定，再将开口器固定于上下门齿之间，然后将灌胃管（经常使用导尿管代替）从开口器的小孔拔出动物口中，沿咽后壁而进入食道。

拔出后应检查灌胃管是否确实拔出食道。

可将灌胃管外开口放入盛水的烧杯中，若无气泡发生，标明灌胃管被正确拔出胃中，未误入气管。

此时将注射器与灌胃管相连，注入药液。

4、猪的胃内灌注法：

给猪下鼻饲管较困难，因猪的鼻翼与上唇联合形成吻突，鼻腔内上下鼻夹与鼻中隔通道极窄，只能通过F10－12号的导尿管，F14号以上的导尿管不克不及拔出，故一般均给猪采取经口入胃的灌胃方法。

具体方法是，预先做好一矩形小木块，中间有一洞，让小猪咬住，将其固定，然后再由此洞下胃管。

此种操纵较为简便。

5、鸟类：

包含鸽、鸡等，经口灌胃给药，可由助手将其身体用毛巾裹住固定好。

实验者用左手将动物向后拉，使其颈部倾斜，用左拇指和食指将动物嘴撬开，其他三只手指固定好动物头部，右手取带有灌胃针头的注射器，将灌胃针头由动物舌后拔出食管。

不要象其它动物灌胃时插的太深，如动物不挣扎，插针头又很顺利，即可将药液经口或食管上端罐入胃内。

罐入速度要慢。

（二）口服法

口服给药是把药物混入饲料或溶于饮水中让动物自由摄取。

此法优点是简单方便，缺点是剂量不克不及包管准确，且动物个体间服药量差别较大。

大动物在给予片剂、丸剂、胶囊剂时，可将药物用镊子或手指送到舌根部，迅速关杜口腔，将头部稍稍抬高，便其自然吞咽。

二　注射给药法

注射给药剂量准确、作用快，是动物实验中经常使用的给药方法，给药时应注意针头的选择（鼠类：

4～5号，兔、猫、犬、猪、猴：

6～8号）。

（一）皮下注射法

注射一般选取皮下组织疏松的部位，大鼠、小鼠和豚鼠可在颈后肩肿间、腹部两侧作皮下注射；

家兔可在背部或耳根部作皮下注射；

猫、犬则在大腿外侧作皮下注射。

以小白鼠为例，将小白鼠放在笼盒盖上，用左手小指和无名指捏住鼠尾，轻轻向后拉，用拇指和食指捏起背部皮肤，再用右手持注射器，右手将注射器的针头水平刺入背部皮下。

针头可用5号针头。

推送药液使注射部位隆起。

拔针时，以手指捏住针刺部位，可防止药液外漏。

注射量：

大鼠为1ml/100g、小鼠为0.1～0.3ml/10g。

鸟类皮下注射通常选取翼下部位，可注射0.3ml～0.5ml药液。

鸽类皮肤弹性差，注射液有时从针口流出。

（二）皮内注射法

固定动物的方法和注射部位与皮下相同。

将注射部位脱毛、消毒，用左手拇指和食指压住皮肤并便之绷紧，在两指之间，用皮试针头紧贴皮肤表层刺入皮内，然后向上挑起并再稍刺入，当针头不克不及左右摆动时，即标明针头在皮内，回抽无回流后，即可缓慢注射，皮肤概况出现白色桔皮样隆起，若隆起可维持一定时间，则证明药液确实注射在皮内。

小鼠为0.1ml/次/穿刺部位。

（三）肌肉注射法

肌肉注射一般选肌肉发达，无大血管通过的部位。

大鼠、小鼠、豚鼠可注射大腿外侧肌肉；

家兔可在腰椎旁的肌肉、臀部或股部肌肉注射；

犬、猴等大型动物选臂部注射。

注射时针头宜垂直迅速刺入肌肉，回抽针栓如无回血，即可注射。

小鼠：

可二人合作，一人一手抓住小鼠头部皮肤，另一手抓住尾巴。

另一人取连有4号针头的注射器，将针头刺入后腿外侧肌肉。

不超出0.1ml。

也可一人操纵，方法是左手单手控制小鼠，并见将小鼠右脚趾拉放于左正面，用左手无名指压住。

将针头刺入右腿外侧肌肉。

家兔：

将家兔用小动物手术台固定，注射部位可选择大腿肌肉。

例如家兔股四头肌注射法：

在家兔腿部两侧四头肌部位皮肤，用2%碘酒消毒，再用75%酒精擦去碘质，分别在股四头肌部位注射药液1ml和2ml，作药物局部刺激性实验。

鸟类：

禽鸟类肌肉注射常选取胸肌或腓肠肌肌肉注射，方法同大、小鼠。

（四）腹腔注射法

给大鼠、小鼠进行腹腔注射时，以左手固定动物，便腹部向上，为防止伤及内脏，应尽量便动物头处于低位，便内脏移向上腹，右手持连有5号针头的注射器从下腹两侧向头部方向刺入，控制针头与腹部的角度不宜太小，否则易误入皮下。

针头亦不宜刺入太深或太近上腹部，以防止损伤内脏。

将注射器沿45°

角斜向穿过腹肌进入腹腔，此时有落空感，回抽无回血或尿液，即可注入药液。

兔、犬等动物腹腔注射时，可由助手固定动物，便其腹部朝上，实验者即可进行操纵。

其位置:

家兔下腹部近腹中线左右两侧lcm处，犬脐后腹中线两侧边1～2cm处进行腹腔注射。

（五）静脉注射法

1． 

小鼠：

常采取尾静脉注射。

注射时，先将小鼠固定在流露尾部的固定器内，尾

2． 

大鼠:

将小鼠固定在流露尾部的固定器内，露出尾巴，用10ml试管盛45℃～50

℃的温水浸润1～2分钟或用75％酒精棉球反复擦拭使血管扩张，并使表皮角质软化，可明显见到三根暗红色的尾静脉。

选择较明显的一条，在尾下1/4处，以左手拇指和食指捏住鼠尾两侧，用中指从下面托起鼠尾，右手持注射器，使针头尽量采纳与尾部平行的角度（小于30度）进针，刺入，针头在尾静脉内平行推进少许，左手的三指捏住尾巴，并连针头和鼠尾一起捏住，以防大鼠活动将针头脱出。

注入药液，如无阻力，暗示针头己进入静脉。

注射后把尾部向注射侧弯曲，或拔针后随即以干棉球按住注射部位以止血。

注意：

大小鼠尾静脉注射部位应尽量选在鼠尾下1/3处，此处皮薄，血管较易注入，经常使用鼠尾左右两侧两根尾静脉，因其位置较固定，容易注入。

背侧尾静脉由于其位置容易动，固一般少用。

腹正面是动脉，不采取作静脉注射。

大鼠舌下静脉注射：

将大鼠用40mg/kg戊巴比妥钠腹腔注射法麻醉，用鼠板固定大鼠，当大鼠进入麻醉状态后，用止血钳将大鼠舌头稍微拉出，露出舌下正中小静脉，用左手持止血钳固定舌尖部，右手持连有4号针头的注射器，在舌下静脉近中部向舌头基底部方向进针，刺入舌下静脉血管，使针头与血管平行。

慢慢向前推进，当进针顺利时，暗示针头已进入舌下静脉，可以慢慢推注药液。

注射完毕将针头抽出，用干棉球压迫注射部位止血。

3． 

家兔:

一般采取耳缘静脉注射。

注射时先将家兔用固定盒固定，拔去注射部位的

毛，用酒精棉球涂擦耳缘静脉，并用手指弹动或轻轻揉擦兔耳，使静脉充血，再涂上一薄层凡士林，此时可清楚见到充血的耳缘静脉，然后用左手拇指和食指压住耳根端，待静脉显著充盈后，右手取连有41/2号针头的注射器，针头从靠近耳尖部刺入静脉，顺血管平行方向深入1cm，放松对耳根处血管的压迫，左手拇指和食指，移至针头刺入部位，将针头和兔耳固定，然后向外略抽一下注射器，如有血液回流，即可注入药液。

或当针头拔出血管后不必回抽，针头在血管推进顺利，捎推注射液，即能自然注入，皮下不起液泡，即证实药液注进血管。

注射后，拔出针头，用纱布或脱脂棉压迫止血。

（1）如注射处组织变白，变厚，或注射时推注阻力大，暗示针头未拔出血管，应

拔出针头重插。

兔耳中间的是动脉，兔耳内缘的静脉因毛多皮厚，故不宜作静脉注射用。

（2）注射针头的号码代表针头内径的粗细。

注射部位的组织坚韧宜用粗针头，以免弯曲、折断；

如组织柔嫩或血管细小，宜用细针头，以免损伤组织。

4． 

犬:

后肢外侧小隐静脉注射法：

小隐静脉在后肢胫手下1/3的外正面浅表皮下，由前侧向后走向。

将狗固定侧卧，把注射部位毛剪去，先用碘酒，后用酒精擦抹消毒皮肤。

助手用手紧握股部，压迫血管，使静脉不回流，此时可见到充血的小隐静脉，右手持连有51/2号或5号的注射器，将针头向血管旁皮下先刺入，而后与血管平行刺入静脉。

如进针顺利，回抽针栓有回血，放松对静脉近端的压迫，将针头顺血管再刺进稍许。

然后一手固定针头，一手将药液缓缓注入静脉。

注意要很好固定静脉，因为静脉只隔一层皮肤，浅而易滑动，注射时针头不成刺入过深，方向一定要与血管平行。

前肢内侧头静脉注射法：

前肢内侧头静脉在前肢内正面皮下，靠前肢内侧外缘走向，比后肢外侧小隐静脉还粗一些，而血管比较容易固定。

因此经常使用作静脉注射及取血用。

注射方法与前述后肢外侧小隐静脉注射法相同。

舌下小静脉注射法：

此法较方便有效，用于补注麻醉药或紧急注射药物等用。

注射前将麻醉的狗嘴打开，用舌钳 

包着纱布把舌头拉出，并翻向背侧，即可见到清楚的舌下小静脉，可找一根较粗的作静脉注射用。

将舌头尽量拉出，左手拇指压迫舌下静脉根部，见到充血舌下静脉，用连4号针头的注射器与血管平行插进静脉、回血，推进药液。

注射完毕将针头抽出，立即用干棉球压迫止血，或用止血粉止血。

因舌下小静脉周围都是软组织，且血管分布很丰富，故应选择41/2号以下的细号针头，注射完毕要及时有效止血。

5．豚鼠:

可采取前肢皮下头静脉、后肢小隐静脉注射或耳缘静脉注射。

6． 

猴:

猴常在后肢小隐静脉、皮下静脉或股静脉注射，注射方法与犬静脉注射法基底细

同。

7．猪:

可在耳静脉、颈静脉注射。

8．蟾蜍胸淋巴囊注射法

取蟾蜍一只，一手抓住蟾蜍身体，固定四肢，使腹部朝上；

另一手持（4～7号针头）将针头拔出口腔，通过下颌肌肉而刺入，注射药液后拨出针头，由于下颌肌内收缩使针孔闭合，可防止药液漏出。

注射量每只0.25～1.Oml。

三　其它途径给药法

除上述较经常使用的给药途径外，还有其他一些给药方法，如呼吸道给药、皮肤给药、脑内给药、直肠内给药、关节腔内给药等等。

1.呼吸道给药：

呈粉尘、气体及蒸气或雾等状态的药物或毒气,均需要通过动物呼吸道给药。

如实验时给动物乙醚作吸入麻醉,给动物吸入一定量的氨气，二氧化碳等观察呼吸，循环等的变更；

给动物定期吸入一定量的SO2。

用锯末烟雾制作慢性气管炎动物模型等，特别在毒理学实验中应用更为广泛。

2.皮肤给药：

为了鉴定药物或毒物经皮肤的吸收作用、局部作用、致敏作用和光感作用等，均需采取经皮肤给药方法。

如兔和豚鼠常采取背部一定面积的皮肤脱毛后，将一定的药液涂在皮肤上，药液经皮肤吸收。

3.脊髓腔内给药：

此法主要用于锥管麻醉或抽取脑脊液。

家兔椎管内注射方法：

将家兔作自然俯卧式，尽量使其尾向腹侧屈曲，用剪毛剪将第七腰椎周围被毛剪去，用3％碘酊消毒，而后用75％酒精将碘酊擦去。

在兔背部髌骨脊连线之中点稍下方摸到第七腰椎间隙（第七腰椎与第一骶骨之间），拔出腰椎穿刺针头。

当针到达椎管内时（蛛网膜下腔），可见到兔的后肢跳动，即证明穿刺针头已进入椎管。

这是不要再向下刺，以免损伤脊髓。

固定好针头，即可将药物注入。

4.脑内给药：

此法经常使用于微生物学动物实验,将病原体等接种于被检动物脑内，然后观察接种后的各种变更。

5.直肠内给药：

此种方法经常使用于动物麻醉。

兔直肠内给药时,常采取灌肠的胶皮管或用14号导尿管代替。

6.关节腔内给药：

此法经常使用于关节炎的动物模型复制。

7．脚掌注射法：

（1）小鼠：

注射前小鼠应先麻醉。

因前脚需用以取食，故仅能用后脚掌。

针头刺入约5mm，即可推液，最大量为0.25ml。

如果使用福氏完全佐剂，注入脚掌后，可使足掌部形成严重肿胀、溃疡及坏死，动物行动困难，因此，若非实验必须，最好不要使用。

其它试剂虽然不致引起如此强烈的反应，最好仅用一只后脚掌。

（2）豚鼠：

由助手固定好动物，使后脚掌面向操纵者。

用棉签沾水将脚掌洗净，特别是脚趾之间，再用酒精棉消毒。

其它同小鼠。

针头刺入约5mm即可推液。

最大量为0.25ml。