流式细胞仪检测细胞周期操作步骤学习资料Word文档下载推荐.docx
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106cells/mL以1mL接种于100mm培养皿内
↓
24h后,进行所需的处理(比如加药,照射)
特定时间后终止培养,进行下一步的实验
收集原培养液,洗后的PBS和消化后的细胞,将三者混匀放入15ml离心管中
1000rpm离心5min(短时低速离心)
弃上清,用1.5ml预冷PBS,1000rpm离心5min后去除PBS和细胞悬液内的细胞碎片
加入1.5ml预冷PBS,在涡旋状态下加入3.5ml无水乙醇,混匀后,于4℃固定30min,或-20℃长期保存。
1000r/min,离心5min
将乙醇吸除,加PBS清洗混匀
1000r/min,5min再离心一遍,将残留在细胞上的乙醇除去
吸除离心管内PBS,加入200ulPBS和2ul的RNA酶(0.25mg/ml)(37℃下孵育30min)
加入0.5ml的50ug/ml的PI溶液室温下避光染色30min
↓
将离心管内的细胞过滤(300um尼龙网膜)至含有PBS的EP管中(PI具有很强的粘附性,容易使细胞聚团),标记EP管
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开机(先开仪器后开软件)
流式细胞仪的结构一般分为5部分:
①流动室及液流驱动系统;
②激光光源及光束成形系统;
③光学系统;
④信号检测、存贮、显示、分析系统;
⑤细胞分选系统。
检测前先涡旋使细胞混匀悬浮呈单个细胞,然后插入流式细胞仪上
流动室内充满鞘液,细胞排成单列由喷嘴中心喷出,形成细胞液柱
液柱与激光束相交,细胞上的荧光染料被激发产生荧光(488nm激发光源)
荧光信号变成电信号输出到计算机,软件分析(荧光染料和细胞DNA分子特异性结合,可以检测出细胞周期各时相细胞比例)
在用第三方软件分析之前,将流式结果按如下所示导出
结果分析——Modfit软件分析
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