核酸分离纯化及电泳Word文档下载推荐.docx
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5.目的基因表达
使导入寄主细胞的目的基因表达出我们所需要的基因产物。
第一节分子生物学实验室常用设备
温度控制系统
⏹冰箱:
40C、-200C、-700C
⏹恒温培养箱:
隔水式、电热式
⏹鼓风干燥箱
⏹恒温水浴
⏹低温循环水浴
⏹微量加热器
⏹恒温空气摇床
⏹PCR热循环仪
⏹制冰机
⏹冷库
⏹高压蒸汽灭菌器
电泳设备
◆琼脂糖凝胶电泳系统
◆垂直板凝胶电泳系统
◆转移电泳系统
◆紫外分析仪
◆凝胶成像系统
离心设备
◆台式高速冷冻离心机
◆高速冷冻离心机
◆大容量离心机
◆超速离心机
分光光度计
722S、7200可见分光光度计
紫外可见分光光度计
其它
⏹PH计
⏹电子天平
⏹旋涡振荡器
⏹磁力搅拌器
⏹超声波破碎仪
⏹超净工作台
⏹纯水器
第一章基因工程的主要技术原理
第一节DNA的提取与纯化
由于提取DNA的目的、种类、所用的生物、组织材料、实验条件等不同,DNA的提纯有很多方法。
其中最常用的是碱抽提法。
一、质粒DNA的提取
(一)、质粒载体概念
细菌质粒是独立于宿主基因组复制、编码抗生素抗性基因的小型环状DNA分子、运载克隆DNA的常用载体。
质粒特点:
染色体外的小型环状分子,
大小约为2—200kb,
通常以多拷贝(可多达几百个)形式存在于宿主细胞中。
质粒含有复制起点(ori)用以保证质粒的自主复制
正常复制依赖宿主细胞中的聚合酶及其他成分。
质粒一般仅携有几个基因抗生素物质的抗性基因。
最常见的抗性基因是amp+基因,编码可以降解青霉素类抗生素如氨苄青霉素的β—内酰胺酶。
另一种常见抗性基因是tetA基因,编码一种可以从细胞内将四环素类抗生素排出的跨膜蛋白。
pMD-18TVector
pGEMT
(二)、质粒DNA的制备
小量法:
碱裂解法(11分30秒)
大量法:
CsCl密度梯度离心法(1分30秒)
试剂盒:
由于质粒远远小于大肠杆菌染色体DNA,可以用物理化学方法将它们相分离,例如碱裂解法。
1.碱抽提法提取质粒DNA
(1)原理
闭合环状的质粒DNA,在变性后不会分离,复性快;
(2)所用的试剂作用
①溶菌酶
能水解菌体细胞壁的主要化学成分肽聚糖中的-1,4糖苷键。
在碱性条件(pH>
8)下有活性。
②葡萄糖
增加溶液的粘度,维持渗透压,防止DNA受机械力(震荡)的作用而降解。
③EDTA
Mg2+、Ca2+的螯合剂,可抑制DNA酶的活性,防止DNA被酶降解。
④NaOH-SDS
NaOH:
强碱,提供pH>
12的碱性条件,使DNA双链变性。
SDS:
溶解细胞膜蛋白和细胞内蛋白,并结合成“蛋白—SDS”复合物,使蛋白质(包括DNA酶)变性沉淀。
⑤NaAc-HAc缓冲液
冰醋酸把醋酸钠溶液的pH调到4.8。
用来中和NaOH变性液,使DNA复性。
高浓度的NaAc有利于变性的大分子(蛋白质、DNA、RNA等)沉淀。
⑥乙醇
用于沉淀DNA。
DNA分子以水合状态“溶于”水里,乙醇能夺去DNA分子的水环境。
⑦RNaseA
降解RNA渣滓。
以免提取后的DNA中含有小分子的RNA。
⑧TE缓冲液
DNA保存液。
由Tris-HCl和EDTA配制。
Tris-HCl不含金属离子(不同于磷酸缓冲液或硼酸缓冲业),有利于以后操作;
EDTA抑制DNA酶,防止DNA被酶降解。
⑨酚-氯仿
蛋白变性剂,进一步抽提DNA溶液中的蛋白质,使蛋白质沉淀。
但苯酚会残留在DNA溶液中。
(现多用各种商品化的层析柱纯化DNA)。
(3)碱抽提法提取质粒DNA的步骤
第一步:
溶菌
使用“溶液Ⅰ”溶解细菌细胞壁。
SolutionI的配制:
50mM葡萄糖,
25mMTris-HCl(pH8.0),
10mMEDTA,
4-5mg/ml溶菌酶,
RNaseA
第二步:
破膜,蛋白质和DNA变性
溶液II破坏细胞膜,蛋白质和DNA变性。
SolutionII的配制:
0.2NNaOH,1.0%SDS
第三步:
中和
溶液III使DNA复性、并促使蛋白质-SDS复合物和染色体DNA、RNA沉淀。
SolutionIII的配制:
3M醋酸钠(用冰醋酸调pH至4.8)
第四步:
离心除去沉淀
上清液中含有闭合质粒DNA。
第五步:
纯化DNA
上清液过柱或酚-氯仿抽提。
第六步:
沉淀DNA
0.6倍体积的异丙醇或2倍体积的乙醇。
①.小量法:
携有目的质粒的大肠杆菌菌株
↓
数毫升液体培养基(LB)
增殖至稳定期(过夜培养)
离心
↓
菌体沉淀
小量制备法提取质粒
②.氯化铯梯度(1分30秒)
制备大量的质粒可作为常用克隆载体贮备,或用作大量酶解反应的底物。
此时CsCl密度梯度离心可被用来作为最终纯化步骤。
该步骤虽然有点费力,但却是获得极纯的超螺旋质粒DNA的最佳方法。
③.试剂盒(11分30秒)
QIAGEN等试剂盒
④.一步法提取质粒DNA(16分20秒)
2.影响质粒DNA产量的因素
最重要的是:
菌株的遗传背景,质粒自身的拷贝数。
(1)受体菌株
一般要使用endA基因发生突变的大肠杆菌菌株。
如DH5、JM109、XL1-Blue等。
endA基因编码核酸内切酶Ⅰ,在Mg2+的存在下可将双链DNA消化成7bp的寡核苷酸片断。
(2)质粒拷贝数
这是直接决定DNA产量的重要因素之一。
质粒本身的性质所决定。
(3)质粒大小
分子量大的质粒,拷贝数少。
二、基因组或其他DNA的提取
1.细菌基因组DNA的制备
一般过程及原理
(1)细胞裂解
10%SDS和蛋白酶K。
37oC温育。
不用NaOH!
(2)DNA纯化
CTAB(十六烷基三甲基溴化铵)除去多糖,酚-氯仿-异戊醇除去蛋白。
(3)沉淀DNA
0.6倍体积的异丙醇。
2.哺乳动物细胞基因组DNA的抽提
一般过程及原理:
(1)组织粉碎
动物组织剪成小块,置液氮中冻结后研磨成细粉末。
组织培养的细胞用胰酶消化松散后直接使用。
(2)细胞裂解
0.5%SDS和0.1mg/ml蛋白酶K。
50oC温育。
SDS是离子型去垢剂(detergent),可以使细胞膜崩解。
(3)纯化DNA
用苯酚和酚-氯仿抽提除去蛋白质污染。
(4)沉淀DNA
用2倍体积的无水乙醇(可以加入1/10体积的3M醋酸氨辅助沉淀)
(5)除去RNA污染
用RNase。
三、DNA的定量和纯度测定
1.紫外光谱法
原理:
DNA(或RNA)在260nm波长处有特异的紫外吸收峰。
蛋白质在280nm处有吸收峰
用微量比色杯(10l)在紫外分光光度计直接测定。
2.琼脂糖凝胶电泳估计
溴化乙锭(EB)能插入DNA分子中,紫外光照射下能发红色荧光。
与已知浓度的DNA电泳带荧光强度对比,就可以估计出DNA含量。
四、DNA分子量的估计
一般使用琼脂糖凝胶电泳,与已知分子量的DNA标准混合液对比得知。
DNA分子量Marker有许多公司的商品,使用非常方便。
如DNA的HindⅢ酶切物等。
第二节DNA的凝胶电泳
一、电泳的基本原理
1.带电荷的分子在电场中会以一定的速率向与其电荷性质相反的电极移动,速度称为电泳迁移率。
2.电泳迁移率同电场的强度和分子本身所带的净电荷数目成正比。
3.电泳迁移率同分子与介质的摩擦系数成反比。
4.摩擦系数主要与分子的大小、形状以及介质的粘度有关。
5.如果电场强度一定(电压和电极距离)、电泳介质相同(电泳液和凝胶):
分子在电场中迁移的速度主要取决于分子本身的大小和形状。
形状相似的分子的迁移速度主要与分子量相关:
分子量越大,移动越慢。
相同分子量的DNA:
环状卷曲超螺旋迁移最快,
线性分子次之,
伸展开环状最慢。
二、琼脂糖凝胶电泳
1.琼脂糖
是一种线性多糖聚合物,从红色海藻产物琼脂中提取而来。
2.琼脂糖凝胶
琼脂糖在水里(或电泳液)中加热到沸点后溶解,冷却后又凝固成均匀的的胶体“胨”。
琼脂糖的浓度决定凝胶的空隙(密度)。
浓度高→空隙小
3.琼脂糖凝胶的分辨力
空隙大小决定其分辨分子大小的能力。
空隙小,分辨率高:
小分子较易通过,而大分子难通过;
空隙大,分辨率低:
大小分子几乎以同等速率通过。
琼脂糖的浓度(%)
分离DNA的片断大小(bp)
0.3
0.7
1.4
50000—1000
20000—1000
6000—300
三、聚丙烯酰胺凝胶电泳
优点是比琼脂糖凝胶的分辨率高的多。
琼脂糖凝胶电泳:
1000——50000bp
聚丙烯酰胺凝胶电泳:
1——1000bp
聚丙烯酰胺凝胶浓度(%)
分离DNA片断大小(bp)
4.0
10.0
20.0
1000—100
500—25
50—1
四、凝胶染色
1.染料溴化乙锭。
Ethidiumbromide(EB)
2.原理
EB是扁平分子,能插入DNA碱基之间,但不与琼脂糖结合。
EB在300nm紫外光照射下能发红色荧光,即可显示DNA泳带在凝胶中所处的位置。
荧光强度与DNA含量及大小成正比。
*UVP全自动凝胶成像分析系统
*OMEGA8-LOGO全自动凝胶成像分析系统
第二节DNA克隆概述
一、DNA克隆:
通过将生物体基因组DNA片段作为自主复制载体的一部分进行独立复制的方式,使对该片段的分离及操作简单化。
背景:
长期以来,由于生物体内某些蛋白质或其他组分的含量稀少难以大量纯化,造成对这些物质的详尽分子分析极其困难或者几乎不可能。
一种途径是直接分离负责某一蛋白质表达的或某一产物形成的基因。
然而每个生物体的基因组都很庞大、复杂,且任一目的基因序列通常在单个细胞中只出现一到两次,因此标准的化学或生化方法都不能被用来分离基因组中的特定区域以对其进行研究,尤其是当目的DNA序列与所有其他序列具有化学相同性时更加困难。
解决这一难题的方法是将基因组中携有该基因或其他相关序列的较小片段连接到一段可以自主复制的DNA即载体上,形成通常可以在另一宿主中进行复制的重组DNA,这种复制是独立于原初基因组的。
带有重组DNA的宿主细胞的增殖构成了一群具有遗传一致性的个体,或称为单克隆。
这一系列操作过程就被称作DNA克隆。
在进行DNA克隆中,通常将以下操作、制作或生产归为遗传工程范畴:
◆DNA序列分析,以及由此派生的蛋白质序列分析
◆对基因启动子及其他调控序列的分离与分析
◆通过大量正常和突变形式的产物研究来了解这些蛋白质/酶/RNA的功能
◆突变的鉴定,例如由于基因缺陷导致形成的疾病
◆生物技术,如蛋白质及其他重要生物功能的分子如人胰岛素和生长素的大规模工业化生产
◆工程动物、工程植物以及基因治疗
◆改变了特性的工程蛋白质
二、宿主和载体
基因克隆过程中的大多数常规操作中都使用大肠杆菌作为宿主细胞。
质粒和噬菌体可作为大肠杆菌的克隆载体。
质粒、病毒及整个染色体的载体一直被用作外源基因导入其他原核及真核生物体内的工具。
1.环状质粒:
染色体外(与染色体相独立的)
2.许多噬菌体(侵染细菌的病毒):
vλ噬菌体:
可用来克隆较大的DNA片段,
v噬菌体M13:
可以使克隆DNA以单链形式被提取出来。
vT载体:
v黏粒:
质粒—入噬菌体杂合体。
3.酵母:
酵母质粒载体(酵母游离型质粒,yeastepisomalplasmid),对于植物一种细菌质粒(根癌农杆菌Ti质粒,AgrobacteriumtumefaciensTiplasmid)
4.病毒:
其他真核细胞,常用那些能自然侵染目标物种的病毒作为载体将其DNA维持在染色体外,或者是整合到宿主基因组(例如SV40、杆状病毒、反转录病毒)。
三、亚克隆
是克隆实验中最简单的一种,即将已克隆的DNA片段从一载体向另一载体的转移,这一过程被称为亚克隆。
亚克隆可用来对较大的克隆片段上较短区段进行仔细研究,或是将基因转移到能在特定物种中表达的另一载体上。
就大肠杆菌的质粒载体来说,最常见的亚克隆程序可分为以下步骤:
含有目标克隆序列的质粒DNA的提取
用限制性内切核酸酶将质粒酶切成不连续的片段
经琼脂糖凝胶电泳分离片段
纯化目标片段
将目标片段连接在一新质粒载体上,形成新的重组分子
将连接好的质粒转入某一大肠杆菌菌株(转化,transformation)
转化细菌的筛选
重组质粒的分析
四、DNA文库
由基因组或cDNA的一套随机克隆片段构成,其中每个片段连在一个单独的载体分子上,常用来分离未知基因。
基因组文库是用基因组DNA的随机片段制备成的。
缺点:
用基因组文库来克隆某一基因是一种效率极低的方法,特别是对于庞大的真核生物基因组。
用于鉴定未知基因的克隆实验的DNA有两个主要来源:
Ø
目的物种的基因组DNA。
用来自表达目的基因细胞或组织的mRNA作为来源构建成的文库即cDNA文库。
经反转录将mRNA合成cDNA(DNA拷贝)后,插入载体构建成cDNA文库。
五、筛选文库
1、通常是用一段与目的基因序列的某一区段互补或部分互补的放射性或荧光标记的DNA探针,通过杂交来检测出该基因。
若基因的蛋白产物可获得,则探针可以是从该蛋白产物序列推测出的一段寡核苷酸,或者探针也可以来自另一物种中的某一相关基因。
制备探针越来越常用的一种方法是聚合酶链反应PCR。
2.另一筛选方法是基于文库中被克隆的编码区表达后,对其蛋白产物进行活性鉴定,或是用特异抗体对其进行鉴定。
六、克隆分析
含有目的基因的克隆被确定,通过限制性酶切图谱即用限制性酶切来分析DNA片段,来对其克隆的片段的结构进行更进一步的研究,以至最终对全长片段进行测序。
随后可通过将所得全长序列与数据库中其他已知序列进行比较分析,确定出该蛋白产物的完整序列。
在体外进行DNA克隆与分析要用到许多酶,其中常用酶的特性特列于表G1.1中,详细描叙其应用的章节也已列于其后。
酶
用途
碱性磷酸酶
从双链或单链DNA,或RNA的5’端移去磷酸基。
DNA连接酶(来自噬菌体T4
由ATP水解提供能量,将dsDNA的戊糖—磷酸骨架的5’—磷酸与3’—羟基相结合。
待连接的DNA末端必须是相匹配的,即平端与平端,或为互补的黏性末端。
DNA聚合酶I
由含游离3’—羟基的引物起始,沿5’至3’的方向合成与DNA模板互补的DNA链。
Klenow片段是DNA聚合酶I的缺失5’至3’外切核酸酶活性的截短部分。
外切核酸酶III
外切核酸酶从线性DNA的末端依次切除核苷酸。
外切核酸酶Ⅲ只从dsDNA的3’端切割。
绿豆核酸酶
降解单链核酸,留下完整的双螺旋区段。
核酸酶S1
类似绿豆核酸酶,并且能够降解对应于互补链缺刻对面的单链。
多核苷酸激酶
一个依赖ATP的反应,向双链或单链DNA/RNA的5'
-羟基末端添加磷酸基。
若使用[γ-32p]ATP,则可将DNA标记上放射性同位素。
限制酶
在识别序列处(通常对称)切割dsDNA的双链。
水解戊糖—磷酸骨架,使其一端为5'
-磷酸基而另一端为3'
—羟基,形成平端或“黏”末端(5'
—或3'
—凸端)
反转录酶
依赖RNA的DNA聚合酶。
由含有游离3’羟基的引物起始,沿5'
至3'
方向合成与RNA模板互补的DNA链,需要dNTP。
只降解RNA,而不降解DNA的核酸酶
RNaseH
降解RNA-DNA异源双链中的RNA链的核酸酶。
T7,T3和SP6RNA聚合酶
分别由相应的噬菌体编码的专一性RNA聚合酶。
每种酶只能识别自身的噬菌体DNA的启动子,特异地转录各自启动子下游DNA序列。
TaqDNA聚合酶
来源于嗜热细菌(Thermusaquatzcus)的DNA聚合酶。
最适温度为72℃,在90℃以上仍相当稳定。
用于PCR。
末端转移酶
可将核苷酸加到线性单链或双链DNA或RNA的3’端。
如只用GTP,则仅加上多个G。
工具酶—聚合酶
名称
活性
主要用途
DNA聚合酶I(全酶)
5’-3’DNA聚合酶活性
3’-5’外切酶
5’-3’外切酶
切口平移法标记
3’末端标记
Klenow片段
末端补平、末端标记
cDNA第二链的合成
T4噬菌体DNA聚合酶
外切核酸酶活性比Klenow片段活性高200倍
体外诱变
T7噬菌体DNA聚合酶
热稳定DNA依赖性的DNA聚合酶
耐热
PCR
以RNA为模板合成DNA
cDNA的合成
在2价阳离子存在时催化dNTP加于DNA分子的3’羟基端
cDNA末端加同聚尾
末端标记
依赖于DNA的RNA聚合酶
以DNA为模板合成RNA
合成单链RNA做探针
分子克隆策略
克隆:
无性繁殖系
分子克隆:
利用分子操作技术获得大量同质分子的过程
分子克隆最常用的方法:
DNA重组——
DNA扩增——
分子克隆是目前仍是基因操作的核心技术
基因重组——基因片段的重新组合。
例如:
真核基因与质粒的连接
不同基因片段的连接
进行基因重组必须:
工具酶、DNA片段、宿主细胞
七、DNA文库的建立
DNA文库—具有扩增能力的各种DNA片段的混合体。
如果文库的容量足够大,就能包含该物种或该组织全部DNA或RNA(以cDNA的形式)的序列。
基因组文库—来自于某一物种的基因组,由于该物种所有组织中的基因组均相同,所以基因组文库具有种属特异性,但无组织特异性。
cDNA文库—来自于某一物种某种组织的RNA,所以cDNA文库既有种属特异性,也有组织特异性。
*cDNA文库的建立过程
RNA提取→分离mRNA→OligodT或随机引物合成cDNA第一链→合成cDNA第二链→补平cDNA链末端→连接接头→连接噬菌体载体→包装噬菌体→感染、裂解宿主细胞→参数测定→分装、保存
转化或感染宿主菌
培养分离,形成菌斑或噬斑。
(文库所形成的噬斑实际上要密得多)
*利用文库克隆目的基因
文库平皿培养形成噬斑→转膜
核酸杂交或抗体反应→获得阳性克隆
*核酸杂交适用于已知部分序列的目的基因克隆。
*抗体反应适用于未知序列的但已经获得相应抗体的目的基因克隆。
在对应的培养皿上挑出相应的噬斑
由于挑出的噬斑不能保证是单个噬斑,所以必须进行第二轮筛库
第二次的铺皿密度要小得多,以保证能够获得单斑
扩大培养
八、其他常用的目的基因获得方法
*PCR法:
适合用于已知序列基因片段的获得
*人工合成法:
利用DNA合成仪合成所需要的片段。
适用于较小的已知序列基因片段的获得。
目前人工合成的DNA长度可达数千个碱基,但价格很高。
从已有重组载体中获得:
方法与流程提取质粒或噬菌体
酶切插入片段
电泳分离
亚克隆
*亚克隆
将已得到的克隆转移到适合自己所需要的载体上的过程。
噬菌体质粒→质粒
基本过程
提取原载体制备载体
↓↓
酶切插入片段酶切
电泳分离脱磷
↘↙
连接
转化
重组子鉴定
挑出重组克隆
↙↓↘
序列测定表达探针制备
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