翻译.docx
- 文档编号:187517
- 上传时间:2022-10-05
- 格式:DOCX
- 页数:10
- 大小:35.42KB
翻译.docx
《翻译.docx》由会员分享,可在线阅读,更多相关《翻译.docx(10页珍藏版)》请在冰豆网上搜索。
牛膝多糖对佩金鸭的生长性能、免疫力、抗氧化能力及肉质的影响
X.Ao*yandI.H.Kim*,1
*DepartmentofAnimalResourceandScience,DankookUniversity,Cheonan,Chungnam330-714,SouthKorea;and
ySwineinstitute,TieQiLiShiGroup.Co.,Mianyang,Sichuan,621006,P.R.China
摘要
为了研究牛膝多糖(ABP)对佩金鸭的生长性能、抗氧化能力、免疫功能、相对器官重量、回肠菌群和肉质的影响。
本实验根据体重(BW),将1200只雌性1日龄的佩金雏鸭(51.2±0.2g),随机分为3个处理,每组40只,进行10次重复。
实验持续了6周,饮食治疗包括补充0、0.02和0.04%ABP的玉米-豆粕型饮食。
补充ABP在第22-42天和第1-42天分别线性增加(P<0.05)体重增加(BWG)和最终体重,但在第22-42天和第1-42天,饲料增重比(F/G)线性下降(P<0.05)。
ABP的加入使血清超氧化物歧化酶、谷胱甘肽过氧化物酶、总抗氧化能力、过氧化氢酶、补体3、补体4、免疫球蛋白A、免疫球蛋白G、白细胞介素-2、干扰素-G和肿瘤坏死因子-A呈线性增加(P<0.05)。
随着日粮中ABP添加量的增加,胸肉的相对重量呈线性增加(P<0.05),而腹部脂肪相对重量呈线性减少(P<0.05)。
添加ABP后,回肠乳酸杆菌计数线性增加(P<0.05),而大肠杆菌计数线性减少(P<0.05)。
综上所述,在第22-42天和整个实验期间,加入ABP可促进BWG和最终BW增加,在第22-42天和第1-42天降低了F/G,并部分改善了佩金鸭的抗氧化活性、免疫力和肠道菌群。
关键词:
抗氧化能力,牛膝多糖,鸭,免疫力,生长性能
2020家禽科学99:
4884-4891
https:
//doi.org/10.1016/j.psj.2020.06.026
1前言
多糖是由单糖单元长链通过a-糖苷键和b-糖苷键链接组成的聚合碳水化合物,通式为(C6H10O5)n,可分为3个主要亚类(动物多糖、微生物多糖和植物多糖)。
植物多糖来源于植物的根、叶、皮、种子和花。
众所周知,中草药中的植物多糖具有广泛的生物活性,如抗氧化、抗炎、抗病毒、抗肿瘤、降血糖和免疫刺激等。
©由Elsevier公司代表家禽科学协会公司于2020年发表。
这是CCBY-NC-ND许可
(http:
//creativecommons.org/licenses/by-nc-nd/4.0/)下的一篇开放访问文章。
收到日期:
2019年12月3日
接受日期:
2020年6月13日
通讯作者:
inhokim@dankook.ac.kr
牛膝是苋科牛膝属多年生植物,在中国、韩国和日本广泛应用于传统医药中。
它被正式列入中国药典中,用作补药。
其根部含有多种生物活性成分,包括生物碱、皂苷、类固醇、三萜类、植物蜕皮甾体、20-羟基蜕皮激素和牛膝脱皮酮。
牛膝多糖(ABP)是从中草药牛膝的根中提取的灰白色粉末。
它们由(2→1)-连接的-b-D-Fruf果糖呋喃糖基、(2→6)-连接的-b-D-Fruf和(2→1,6)-连接-b-D-Fruf残基组成,以果糖和葡萄糖残基终止。
因此,ABP具有相对较小的分子量。
药理和临床研究表明,ABP可发挥抗氧化、抗过敏、免疫调节、减轻关节炎、抗炎、保肝和抗癌作用。
以往的研究表明,ABP具有显著的免疫刺激活性,这是通过活性氧的产生、细胞因子的分泌、细胞增殖和巨噬细胞的吞噬活性来实现的。
因此,它有潜力用作动物营养中的免疫调节剂。
已经进行了几项研究,以评估其对肉鸡、断奶猪和大鼠的生长性能、抗氧化活性、肠道健康和免疫功能的影响,表明了积极的影响,尤其是对免疫力。
我们最近的研究还表明,ABP可提高肉鸡的生长性能和总消化率,调节盲肠菌群,并减少排泄物中氨气的排放和腹部脂肪的重量。
据我们所知,暂时还没有关于ABP对鸭子影响的信息。
因此,我们假设ABP可以发挥抗氧化能力,刺激免疫系统,从而改善佩金鸭的生长性能。
为此我们开展了本实验,目的是评估ABP对佩金鸭的生长性能、免疫力、抗氧化能力、相对器官重量、回肠菌群和肉质的影响。
2材料和方法
2.1实验设计和鸭子饲养实验
本实验得到了Dankook大学动物议定书审查委员会(韩国忠南市天安市)的事先批准。
在我们的研究中使用的ABP,是从一家商业公司(SynergenInc.,韩国富川市)购得的,并根据我们以前的研究进行了细微修改。
将来自中国的牛膝根用清水冲洗3次,然后用磨机(IKAM20;IKA,Staufen,德国)研磨。
干燥后的样品用100℃的蒸馏水萃取,然后回流6h,得到初始提取物。
将残留物在80℃下用蒸馏水(1:
5)萃取2h。
用高速离心机在低温下过滤提取液。
提取液在低温下通过高速离心机过滤。
通过柱收集有用部分,用乙醇(95%)洗脱。
冷却至室温(25℃)并过滤(WhatmanNo.2;WhatmanLtd.,Kent,UK)后,将样品在低于40℃的温度下进行真空干燥。
提取物在冷冻干燥机中完全干燥。
多糖含量为68.69%,采用高效液相色谱法(Agilent1100系列,
PaloAlto,CA)进行分析。
在这42天的实验中,根据平均初始体重(BW)为51.2±0.2g选择的一共1200只1日龄雌性佩金雏鸭(4号品系),放置在不锈钢电池育雏器中饲养。
笼子配备了喂食器、乳头饮水器和高架塑料地板。
所有的鸭子都被安置在一个环境受控的设施里。
本实验包括3个处理,每个处理10个重复(笼)和每个笼40只鸭,采用随机完整区块设计。
饮食治疗方法为:
1)CON,基础饮食;2)ABP2,CON10.02%ABP;3)ABP4,CON10.04%ABP。
牛膝多糖放置在玉米当中进行添加。
采用两阶段喂养方案:
第
1-21天的起始日粮和第22-42天的生长日粮,所有饮食配方均达到鸭的NRC(1994)要求(Table1)。
在整个实验过程中,以颗粒的形式喂养,并向鸭子提供水和任意饲料。
在1-14d期间,环境温度和湿度分别保持在29℃和60%。
之后,温度保持在24℃。
根据AOAC(2002)的标准程序,对饲料样品进行了干物质(方法934.01)、粗蛋白(方法990.03)、总灰分(方法942.05)、钙和磷(方法985.01)的分析。
用氨基酸分析仪(Biochrom20,PharmaciaBiotech,英国剑桥)在110℃下用6NHCl水解24h后,测定所有日粮的氨基酸。
酸水解之前,将甲硫氨酸和胱氨用被甲酸氧化(Liuetal.,2019)。
Table1.饮食组成(作为喂养基础).
项目
初始日粮1
生长日粮1
配料,%
玉米
59.20
64.22
豆粕(CP46%)
31.36
24.69
麦麸
0.50
0.40
豆油
2.03
2.83
玉米麸质餐
2.00
4.00
磷酸二钙
1.39
1.27
石灰石
1.10
0.97
膨润土
0.90
-
氯化钠
0.20
0.25
氯化胆碱(60%)
0.10
0.10
DL-西锡氨酸(99%)
0.15
0.11
L-Lys$HCl(78%)
0.07
0.16
维生素预混2
0.70
0.70
微量矿物预混3
0.30
0.30
总计
100.00
100.00
分析成分
ME,kcal/kg4 3,000 3,200
粗蛋白,%
22.25
18.28
利辛,%
1.00
0.80
埃米奥宁,%
0.50
0.45
酩氨酸1半胱氨酸,%
0.81
0.74
色氨酸,%
0.97
0.81
Ca,%
0.70
0.60
可用磷,%
0.40
0.35
1在第1-21天提供起始日粮;在第22-42天提供生长日粮。
2每公斤饮食提供:
氯化胆碱1000毫克;维生素A,10000IU;
维生素D3,3000IU;维生素E,20IU;维生素K3,2毫克;硫胺素2毫克;核黄素8毫克;盐酸吡哆醇4毫克;氰钴胺0.02毫克;D-泛酸钙20毫克;烟酸50毫克;叶酸1毫克;生物素0.2毫克。
3每公斤饮食提供:
Cu,10毫克;Fe,60毫克;Zn,60毫克;
Mn,80毫克;Se,0.3毫克;I,0.2毫克。
4计算值。
2.2取样和测量
在实验第1天、第21天和第42天,每重复一次记录对应的体重和采食量(FI)。
相应地计算体重增加(BWG)、FI和饲料增重比(F/G)。
记录死亡率,并使用死亡鸭子的体重调整F/G。
在实验结束时,从每个笼子中随机抽取10只,从颈静脉采集血样收集到到无菌注射器中,并在24℃下保存。
然后将血液样本以3000r离心15min,分离血清。
根据试剂盒说明书,用ELIS A法(中国南京,建城生物技术研究所)测定血清中超氧化物歧化酶(SOD)、过氧化氢酶(CAT)、谷胱甘肽过氧化物酶(GSH-PX)、总抗氧化能力(T-AOC)、丙二醛(MDA)、免疫球蛋白A(IgA)、免疫球蛋白M(IgM)、免疫球蛋白G(IgG)、补体3(C3)和补体4(C4)、白介素2(IL-2)、白介素6(IL-6)、肿瘤坏死因子-a(TNF-a)和干扰素-g的含量。
采用铁还原抗氧化能力测定法测定血清T-AOC。
采用5,5´-二硫代双-对硝基苯甲酸比色法测定GSH-PX的活性。
用黄嘌呤氧化酶法检测SOD的活性。
通过钼酸铵比色法测定CAT的活性。
通过2-硫代巴比妥酸显色反应,测定MDA水平作为脂质过氧化的指标。
采血后,将相同的鸭子分别称重,然后通过颈脱位处死并放血。
测量尸体重量(不含脖子和脚),胸肉,肝脏,胰腺,胸腺,法氏囊,脾脏,腹部脂肪由经过培训的人员取出,用生理盐水冲洗
后称重。
器官大小以体重的百分比表示。
用校准的玻璃电极pH计(WTWpH340-A,WTH测量系统,FT.Myers,FL)测量胸肉的pH、测定胸肉亮度(L*)、发红(a*)和黄度(b*)值(MinoltaCR410色度计;日本大阪,KonicaMinolta传感公司)。
持水能力是按照Kauffman描述的方法测量的。
根据Honikel描述的塑料袋方法,用大约2克热样品测量滴水损失。
根据Sullivan等人所述确定蒸煮损失。
用Witte描述的方法测定了2-硫代巴比妥酸反应性物质(TBARS)。
TBARS值表示为每公斤肌肉MDA毫克数。
采用三氯乙酸溶液(20%wt/vol)进行提取。
通过分光光度法(日本京都市岛津市UV-1201)测定铬浓度。
第42天,采集小肠组织样本(距回肠约2厘米),称重后用于测定菌群。
无菌收集回肠新鲜消化物(2g)样品,于预先称重的20mL消毒塑料管中。
从每支中提取1g复合回肠消化液样品,用9毫升1%蛋白胨肉汤(Becton,Dickinson和Co,Franklin Lakes,NJ)稀释,然后均质化。
然后,通过将连续的10倍稀释液(在1%蛋白胨溶液中)镀在MacConkey琼脂平板和乳酸杆菌属上,对回肠消化液样品中的细菌进行活菌计数。
用培养基III琼脂平板分别分离大肠杆菌和乳酸杆菌。
然后将乳酸杆菌培养基III琼脂平板在厌氧条件下于39℃下孵育48h。
MacConkey琼脂平板
- 配套讲稿:
如PPT文件的首页显示word图标,表示该PPT已包含配套word讲稿。双击word图标可打开word文档。
- 特殊限制:
部分文档作品中含有的国旗、国徽等图片,仅作为作品整体效果示例展示,禁止商用。设计者仅对作品中独创性部分享有著作权。
- 关 键 词:
- 翻译