临床免疫学检验名词解释重要知识点Word下载.docx

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杂交瘤技术

【原理】以聚乙二醇（PEG）为细胞融合剂，使免疫后能产生抗体小鼠脾细胞和能在体外长期繁殖小鼠骨髓瘤细胞融合产生杂交瘤细胞，通过次黄嘌呤、氨基蝶呤和胸腺嘧啶核苷（HAT）选择性培养基作用，只让融合成功杂交瘤细胞生长，经反复免疫学检测筛选和单个细胞培养（克隆化），最终获得机能产生所需单克隆抗体又能长期体外繁殖杂交瘤细胞系。

将这种细胞扩大培养，接种于小鼠腹腔，可从小鼠腹水中得到高效价单克隆抗体。

（一）小鼠骨髓瘤细胞

理想骨髓瘤细胞条件：

①细胞株稳定，易于传代培养；

②细胞株本身不产生免疫球蛋白或细胞因子；

③该细胞是HGPRT或TK缺陷株；

④能和B细胞融合成稳定杂交瘤细胞；

⑤融合率高。

目前最常用是NS-1和SP2/O细胞株

（二）免疫脾细胞

多采用和骨髓瘤细胞同源纯系BALB/c小鼠；

免疫途径多为腹腔内或皮内多点注射法。

若抗原微量，可用脾脏内直接注射法进行免疫。

细胞性抗原不需加佐剂，可溶性抗原需加完全弗氏佐剂。

（三）细胞融合

是产生杂交瘤细胞中心环节。

一般用分子量1000D、1500D、4000DPEG作细胞融合剂，浓度30~50%之间，基本方法是将骨髓瘤细胞和脾细胞按1:

2~1:

10比例混合，加入PEG，诱导两种细胞融合，时间控制在2min以内，再加入培养液缓慢稀释PEG融合液，直至失去融合作用，融合细胞形成具有两个或多个核异核体，最终产生杂交细胞。

（四）杂交瘤细胞选择性培养

肿瘤细胞合成DNA有两条途径：

一条为生物合成途径，可被叶酸拮抗物（氨基蝶呤）阻断；

另一条为替代途径，叶酸代谢受阻时，细胞通过HGPRT和TK，利用核苷酸前体物合成核苷酸，进而合成DNA。

HAT培养液含三种成分：

次黄嘌呤（H）、氨基蝶呤（A）和胸腺嘧啶核苷（T），经HAT培养液筛选后，只有具备两亲本细胞双重特性杂交瘤细胞能长期生存并产生抗体，成为制造单克隆抗体细胞源。

细胞类型

正常培养细胞

TK缺陷细胞

HGPRT缺陷细胞

杂交瘤细胞

正常培养基

+

HAT培养基

-

凝集反应（agglutinationreaction）：

是指细菌和红细胞或红细胞等颗粒性抗原或表面包被可溶性抗原（或抗体）颗粒性载体和相应抗体（或抗原）特异性结合后，在适当电解质存在下，出现肉眼可见凝集现象。

①直接~：

在适当电解质参和下，细菌、螺旋体和红细胞等颗粒性抗原直接和相应抗体结合后出现肉眼可见凝集现象，称为~。

②间接~：

可溶性抗原（或抗体）先吸附于适当大小颗粒性载体（如正常人O型红细胞、细菌、胶乳颗粒等）表面，然后和相应抗体（抗原）作用，在适宜电解质存在条件下出现特异性凝集现象，称为~。

其敏感度高于直接凝集反应和沉淀反应。

正向间接凝集反应：

用可溶性抗原致敏载体以检测标本中待检抗体。

反向间接凝集反应：

用特异性抗体致敏载体以检测标本中待检抗原。

间接凝集抑制反应：

用抗原致敏载体颗粒及相应抗体作为诊断试剂，检测标本中是否存在和致敏抗原相同抗原。

间接血凝试验：

是以红细胞为载体间接凝集试验，即用已知抗原（或抗体）致敏红细胞，和标本中相应抗体（或抗原）特异结合，出现红细胞凝集现象。

胶乳凝集抑制试验（LAT）：

将抗原（或抗体）致敏胶乳颗粒，直接和待检标本中抗体（或抗原）发生凝集反应。

（常用载体颗粒为聚苯乙烯胶乳）

直接coombs试验：

将抗人球蛋白试剂直接加到表面结合抗体受检红细胞中，即可见细胞凝集。

用于检测吸附于红细胞表面不完全抗体。

（如HDN、AIHA）

间接coombs试验：

将受检血清和具有相应抗原性红细胞相结合，再加入抗人球蛋白抗体即可出现可见红细胞凝集。

用于检测血清中游离不完全抗体。

沉淀反应（precipitationreaction）：

是指可溶性抗原和相应抗体在适当条件下发生特异性结合而出现可见沉淀现象。

免疫浊度测定：

是应用抗原抗体结合在液体中形成免疫复合物干扰光线可用仪器检测特点，将现代光学测量仪器和自动分析检测系统相结合应用于沉淀反应，对各种液体介质中微量抗原、抗体和药物及其他小分子半抗原物质进行定量测定技术。

钩状效应（highdosehookeffect）：

免疫浊度测定，抗原过量导致形成免疫复合物（IC）分子小，发生再解离，浊度下降，光散射减少。

单向免疫扩散实验：

是先将一定量抗体混于琼脂凝胶中，使待测抗原溶液在琼脂内由局部向周围自由扩散，在一定区域内形成可见沉淀环。

环直径或面积大小和抗原含量正相关。

常用于IgG/A/M、补体C3/C4等血浆蛋白测定。

双向免疫扩散试验：

是将抗原核抗体加在同一琼脂板对应孔中，各自向对方扩散，在浓度比例恰当处形成沉淀线。

①沉淀线靠近抗原孔，说明抗体浓度较大；

靠近抗体孔则说明抗原浓度大。

②形成沉淀线弯向分子量大一方。

③（待测物为两种抗原）两条沉淀线互相吻合相连，两抗原中存在相同表位；

两条沉淀线交叉，说明两抗原完全不同；

两条沉淀线相切，提示两抗原之间有部分相同。

对流免疫电泳（CIEP）：

实质上是双扩和电泳结合。

在pH8.6碱性缓冲液琼脂中进行电泳，分子量小、等电点低、带有较多负电荷Ag泳向阳极，而Ab球蛋白等电点偏高（约为6--7），在pH8.6时带负电荷较少，加上分子量较大，泳动慢，受电渗（指电场中液体对固体支持物相对移动）干扰后向阴极倒退，这样抗原抗体作相对运动，在较短时间内即可相遇，在孔间两者分子比例合适地方形成沉淀线。

（抗原加在-级，抗体加在+级）

抗原浓度越高，沉淀线越接近抗体孔，甚至超过抗体孔。

本法简便快速，灵敏度是双扩8~16倍，可检出蛋白质浓度达μg/ml，常用于Ag/Ab性质/效价/纯度测定。

火箭免疫电泳（RIE）：

实质上是单扩和电泳结合。

是将抗体混合于琼脂中，电泳时，抗体不移动，抗原由负极向正极移动，并随抗原浓度下降，抗原泳动基底区也逐渐变窄，抗原抗体免疫复合物形成沉淀西安也越来越窄，形成一个火箭状不溶性复合物沉淀峰。

抗体浓度一定时，沉淀峰高度和抗原量呈正相关。

其灵敏度可达ng/ml，常用于IgA/G等蛋白定量。

免疫电泳（IEP）：

将待测标本（蛋白质抗原）置于琼脂凝胶中电泳，样品中各蛋白成分因所带电荷、分子量及构型不同，被分成肉眼不可见若干区带。

然后沿和电泳方向开一平行抗体槽并加入抗血清，置室温或37度使两者扩散。

18-24h后，各区带蛋白和相应Ab在相应位置上形成弧形沉淀线。

Ag越多，沉淀线越靠近Ab槽，其沉淀线越粗，可做细微蛋白质组分分析，仅为定性实验。

免疫固定电泳（IFE）：

实质是区带电泳和沉淀反应相结合。

先将血清蛋白质置于琼脂凝胶中进行区带电泳分离，再将固定剂和各型免疫球蛋白及轻链抗血清加于凝胶表面泳道上，经过孵育，固定剂和抗血清在凝胶内渗透、扩散，抗原抗体直接发生沉淀反应，洗脱游离抗体，形成抗原抗体复合物则保留在凝胶中。

经氨基黑，参考泳道和抗原抗体沉淀区被着色，根据电泳移动距离分离单克隆组分，可对各类Ig及其轻链进行分型。

最常用于M蛋白鉴定。

放射性核素：

具有放射性核素，在自然条件下可发生自发性转化变为另一种（放射性）核素，并同时释放射线。

这一转变过程称为放射性衰变。

放射化学纯度：

指在标记物中结合在抗原（或抗体）上放射活性占该标记物总放射活性百分比。

比放射活性：

是指单位质量标记物中所含放射性活度，或每分子抗原（或抗体）平均所结合放射性原子数目。

放射免疫分析（RIA）：

是利用放射性核素标记抗原和非标记抗原（待测/标准抗原）同时和限量特异性抗体进行竞争性结合反应，通过测定放射性核素标记抗原和抗体复合物放射性活度，经相应数学函数关系推算待测抗原含量。

免疫放射分析（IRMA）：

是利用放射性标记抗体来测定样品中抗原方法，所用标记抗体是过量，抗原全部是非标记。

待测抗原和过量标记抗体结合反应形成标记抗体-抗原复合物及游离标记抗体，测定是标记抗体-抗原复合物量.

荧光免疫技术：

是将抗原抗体反应和荧光技术相结合而建立一种免疫荧光技术，具有高度特异性、敏感性和直观性。

荧光抗体技术（FAT）：

以荧光素标记抗体对抗原进行定位染色，并借助荧光显微镜观察标本片上荧光染色形态，从而判断是否存在待测抗原，这种技术就是~。

荧光抗体染色方法：

直接法（简便快速特异性强，但敏感性不如间接法，一种荧光抗体只能检测一种抗原）、间接法（敏感性比直接法高5~10倍，一种荧光二抗可检测多种抗原/抗体，但容易产生非特异性荧光）、双标记法（用于检测同一标本中两种抗原）

荧光：

荧光物质吸收激发光能量后，使原来处于基态电子跃迁到激发态，当其回复至基态时，激发态电子以发射光形式释放出能量，这种发射光称为~。

①发射光谱：

是指固定激发光波长，在不同波长下所记录到样品发射荧光谱图

②激发光谱：

是指固定检测发射光（荧光）波长，用不同波长激发光照射样品得到荧光谱图。

③荧光效率：

是指荧光分子将吸收光能转变成荧光百分率，和发射荧光光量子数值成正比。

④荧光效率＝发射荧光光量分子数（荧光强度）／吸收光光量子数（激发光强度）

⑤荧光猝灭：

荧光分子辐射能力在受到激发光较长时间照射后会减弱现象。

只有那些能产生明显荧光有机化合物才能作为荧光色素。

stokes位移：

即激发光谱和发射光谱波长差。

镧系元素stokes位移大（273nm），激发/发射光谱不重叠，可减少干扰。

酶免疫技术：

是将酶高效催化反应专一性和抗原抗体反应特异性相结合一种免疫标记检测技术。

是将酶和抗原或抗体结合成酶标记结合物（酶标抗原/抗体），酶标结合物既保留了抗原/抗体免疫学活性，同时也保留了酶对底物催化活性。

在酶标记抗体（抗原）和抗原（抗体）特异性反应完成后，加入酶作用相应底物，通过酶催化底物产生显色反应，对抗原或抗体进行定位、定性或定量测定。

常用酶：

辣根过氧化物酶（HRP）、碱性磷酸酶（ALP）、β-半乳糖苷酶（β-Gal）

常用底物：

HRP有邻苯二胺（OPD）、四甲基联苯胺（TMB）。

ALP为对-硝基苯磷酸酯（p-NPP）。

β-Gal为4-甲基伞形酮-β-D半乳糖苷（4MUG）

常用标记方法：

交联法（戊二醛~）和直接法（改良过碘酸钠法）

固相载体选择：

塑料制品（聚苯乙烯、聚氯乙烯）、微粒、膜载体

包被（coating）：

将抗体或抗原结合在固相载体上过程。

封闭（blocking）：

用1%~5%牛血清蛋白或5%~20%小牛血清消除固相载体表面未结合位点，消除非特异性吸附干扰。

酶联免疫吸附试验（ELISA）

【基本原理】把抗原或抗体结合到某种固相载体表面并保持其免疫活性（即形成固相抗原或抗体）；

将抗原或抗体和酶连接成酶标记抗原或抗体（既保留免疫活性又保留酶活性）；

在测定时，把受检标本（测定其中抗体或抗原）和酶标抗原或抗体按不同步骤和固相载体表面抗原或抗体起反应，用洗涤方法使固相载体上形成抗原抗体复合物和其它物质分开，最后结合在固相载体上酶量和标本中受检物质量有一定比例，加入酶反应底物后，底物被酶催化变为有色产物，产物量和标本中受检物质量直接相关，根据颜色反应深浅进行定性或定量分析。

（一）ELISA检测抗原方法主要有：

1、双抗体夹心法：

适用于至少两个抗原决定簇（AD）Ag。

先将特异性抗体和固相载体结合，形成固相抗体，加入待测标本并温育，使标本中抗原和固相抗体充分反应，形成固相抗体抗原复合物，洗涤去除其他游离成分；

然后加入酶标记抗体并温育，使固相抗体抗原复合物和酶标记抗体结合，形成固相抗体-待测抗原-酶标记抗体复合物，为“双抗体夹心”；

洗涤去除游离酶标记抗体。

加入底物，固相载体结合酶可催化底物成为有色产物，根据产物显色程度进行抗原定性或定量检测。

临床上常用于乙肝表面抗原HBsAg、甲胎蛋白AFP、人绒毛膜促性腺激素HCG等项目检测。

2、双位点一步法：

该法是针对抗原分子上两个不同且空间距离较远抗原决定簇，

分别制备两种单克隆抗体，在包被时使用一种单抗，酶标记时使用另一种单抗。

测定时将含待测抗原标本和酶标记抗体同时加入反应体系，两种抗体分别和不同抗原决定簇结合，只进行一次温育，在洗涤后即可加底物进行显色反应。

担当待测抗原浓度过高时，可出现钩状效应，甚至出现假阴性结果，必要时可将标本适当稀释后重新测定。

）

3、竞争法：

适用于小分子Ag或半抗原（只有一个AD）。

先用特异性抗体包被固相载体，然后同时加入待测抗原和酶标记抗原，待测样本中抗原和酶标记抗原竞争性和固相载体上特异性抗体结合，温育一段时间后洗涤，加入底物显色。

（二）ELISA检测抗体方法主要有：

1、间接法：

检测Ab最常用方法。

常用酶标记羊抗人IgG。

2、双抗原夹心法：

灵敏度和特异性高于间接法，

原理类似双抗体夹心法，操作步骤也基本相同，也可采用一步法，但一般不会出现钩状效应。

临床上乙型肝炎表面抗体HBsAb测定常用此法。

当相应抗原材料中含有难以去除杂质，不易得到足够纯化抗原或抗原性质不稳定时，可采用此方法。

主要用于测定HBcAb和HBeAb。

原理见下：

（1）HBcAb竞争法：

先将核心抗原包被在固相载体上形成固相抗原，，然后加入待测标本和酶标记特异性核心抗体，此时待测标本中HBcAb和酶标记HBcAb竞争性地和固相载体上核心抗原结合，温育后洗涤，加入底物显色，显色强弱和待测标本中HBcAb含量负相关。

（2）HBeAb竞争法：

先将HBeAb包被在固相载体上形成固相抗体，同时加入待测标本和中和抗原HBeAg，此时待测标本中HBeAb和固相抗体竞争性地结合中和抗原HBeAg，温育后洗涤，加入酶标记HBeAb，酶标记抗体和结合于固相抗体上特异性抗原结合，温育后洗涤，加入底物显色，显色强弱和待测标本中HBeAb含量呈负相关。

4、捕获法：

又称反向间接法，主要用于血清中特定Ig类别测定，最常用于病原体急性感染诊断中IgM型抗体检测。

原理：

首先将针对IgM第二抗体包被于固相载体形成固相抗体，加入待测标本后，标本中所有IgM（特异/非特异）即可被固相抗体捕获。

第二步加入特异性抗原，其和固相载体上捕获IgM特异性抗体结合，再加入针对特异性抗原酶标记抗体，形成固相抗人μ链IgM-抗原-酶标记抗体复合物，最后加入底物显色，即可对待测标本中抗原特异性IgM进行定性或定量测定。

此法临床上常用于病原体急性感染实验室诊断，如急性甲肝时可检测HAV-IgM抗体，急性乙型肝炎时可检测抗HBc-IgM抗体。

发光免疫分析（CLIA）：

是将发光分析和免疫反应相结合而建立起来一种检测微量抗原或抗体新型标记免疫分析技术。

兼有高灵敏性和高特异性。

发光：

分子/原子中电子吸收能量后，由基态（较低能级）跃迁到激发态（较高能级），然后再返回到基态，并施放光子过程。

化学发光：

伴随化学反应过程所产生光发射现象。

发光效率：

又称化学发光反应量子产率，是指发光剂在反应中发光分子数和参加反应分子数之比，取决于生成激发态产物分子化学激发效率和激发态分子发射效率。

化学发光免疫技术可分为均相反应（不需分离）和非均相反应（需要分离）

非均相分离方式有：

固相分离、过滤分离、珠式分离、顺磁性颗粒分离。

【化学发光剂】

直接化学发光剂：

鲁米诺和吖啶酯（常用）

间接化学发光剂：

鲁米诺及其衍生物、AMPPD、酞菁/二甲基噻吩衍生物/Eu螯合物

【标记技术】

碳二亚胺缩合法、过碘酸钠氧化法、重氮盐偶联法

影响标记因素：

发光剂选择、被标记蛋白质性质、标记方法选择、原料比、标记率、温度、纯化和保存。

化学发光酶免疫分析（CLEIA）

【原理】：

是用参和催化某一化学发光反应酶如辣根过氧化物酶（HRP）或碱性磷酸酶（ALP）来标记抗体（或抗原），和待测标本中相应抗原（或抗体）发生免疫反应后，形成固相包被抗体-待测抗原-酶标记抗体复合物，经洗涤后加入底物（发光剂），酶催化和分解底物发光。

由光量子阅读系统接收，光电倍增管将光信号转变为电信号并加以放大，再把它们传送至计算机数据处理系统，计算出测定物浓度。

【特点】：

①属酶免疫测定范畴，测定过程和ELISA类似，仅最后一步酶反应底物改为发光剂、测定仪器改为光信号检测仪；

②酶标记抗原或抗体结合稳定；

③酶催化鲁米诺、AMPPD等发光剂发出光稳定，持续时间长，便于记录和测定。

电化学发光免疫分析（ECLIA）

【原理】是以电化学发光剂三联吡啶钌标记抗体（抗原），以三丙胺（TPA）为电子供体，在电场中因电子转移而发生特异性化学发光反应（它包括电化学和化学发光两个过程）。

在反应体系内待测标本和相应抗体发生免疫反应，形成磁性微粒包被抗体-待测抗原-三联吡啶钌标记抗体复合物，复合物进入流动室，同时注入TPA缓冲液。

当磁性微粒流经电极表面时，被安装在点击下面电磁铁吸引住，而未结合标记抗体和标本缓冲液被冲走。

和此同时电极加压，启动电化学发光反应，使三联吡啶钌和TPA在电极表面进行电子转移，产生电化学发光。

光信号由安装在流动室上方光信号检测器检测，光强度和待测抗原浓度成正比。

①三联吡啶钌在电场中因不断得到三丙胺提供电子，可周而复始发光，持续时间长，信号强度高，容易测定、控制；

②三联吡啶钌直接标记抗原或抗体，结合稳定，不影响标记物理化特性；

③试剂灵敏度高，稳定性好。

生物素（B）又称维生素H，分子式为C10H16O3N2S，等电点（pI）为3.5。

生物素结构中，

I环为咪唑酮环，，是和亲合素结合主要部位；

II环为噻吩环，含有一个戊酸侧链，末端羧基是标记抗体或其他分子唯一结构。

抗体分子经生物素化后，其结合抗原活性不受影响。

多种酶经生物素化后，其催化能力保持不变或稍有降低。

生物素-亲合素系统

高特异性、高敏感性、稳定强、实用性强

【应用】：

在标记免疫技术中可应用于标记信号放大环节，也可用于固相包被（或分离）环节

一、应用于固相载体包被环节

链霉亲合素（亲合素）为弱酸性蛋白，可以吸附在固相载体（聚苯乙烯微孔板或纳米微球）表面，形成链霉亲合素包被固相载体；

利用生物素标记抗原（或抗体），使待包被抗原（抗体）通过生物素和固相材料表面链霉亲合素结合，实现间接包被。

此种包被模式不但可增加抗原（或抗体）包被数量，也可减少空间位阻效应，提高抗原（或抗体）利用效率。

此外，若固相材料不和生物素化抗原（或抗体）结合，待生物素化抗原（或抗体）和待检抗体（或抗原）反应后，再加入链霉亲合素预包被磁性纳米微球，含有生物素免疫复合物可结合在固相载体表面，达到同样分离效果。

二、应用于检测系统信号放大

生物素-亲合素系统用于检测信号放大，可提高标记免疫分析敏感性。

基本方式有生物素-亲合素-生物素模式（BAB）和生物素-亲合素模式（BA）或标记亲合素模式。

如将生物素标记在第一抗体上称为直接法，如生物素标记在第二抗体上称为间接法。

①生物素-亲合素-生物素模式特点是生物素标记分子（如生物素标记抗体/酶蛋白），以游离亲合素为桥，连接抗原-抗体和信号检测系统；

由于一个亲合素分子能同时结合4个生物素，且一个生物素大分子可标记多个生物素而产生级联放大效应，提升检测敏感性。

②实际应用中ABC法：

预先按一定比例将亲合素和生物素标记示踪物质（如生物素标记ALP）混合，形成可溶性亲合素-生物素化酶标复合物，同时确保预留一定位点和生物素化抗体（或抗原）结合。

此种方法能减少操作步骤，又能实现标准化操作（有商品化试剂）。

将ABC法应用于双抗体夹心ELISA中，形成ABC-ELISA，为常用方法。

固相膜免疫分析技术：

是以微孔膜作为固相载体，利用液体可以流过微孔膜也可以通过毛细管作用在膜上向前移行特性，以酶标记或各种有色微粒子（如彩色胶乳、胶体金或胶体硒等）标记抗体或抗原作为标记物，通过抗原抗体反应进行抗原或抗体检测快速检验方法。

胶体金免疫技术：

是以胶体金作为示踪标记物或显色剂，应用于抗原抗体反应一种标记免疫测定技术。

胶体金：

也称金溶胶，是金盐被还原为金原子后形成金颗粒悬液。

胶体金颗粒由一个基础金核（原子金Au）及包围在外双离子层构成（内层为负离子层AuCl2-，外层是带正电荷H+）。

由于静电作用，金颗粒之间相互排斥而悬浮成为一种稳定胶体状态，形成带负电疏水胶溶液，故称胶体金。

免疫金：

是指胶体金和抗原或抗体等大分子物质结合物。

其制备过程实质上是抗体蛋白等大分子被吸附到胶体金颗粒表面包被过程。

（一）斑点金免疫渗滤试验（DIGFA）

【原理】是在以硝酸纤维素膜为载体并包被了抗原或抗体渗滤装置中，依次滴加标本、免疫金及洗涤液，因微孔滤膜贴置于吸水材料上，故溶液流经渗滤装置时和膜上抗原或抗体快速结合并起到浓缩作用，达到快速检测目（一般5min左右完成）阳性反应在膜上呈现红色斑点。

本法简化了操作步骤，达到简便目，已成为“床旁检测（POCT）”主要方法之一。

【方法类型】：

①双抗体夹心法：

将抗体包被在硝酸纤维素膜中央，滴加待检标本，若标本中有待测抗原则在渗滤过程中和膜上抗体结合，然后滴加胶体金标记抗体，加洗涤液洗涤后，阳性者即在膜中央呈红色斑点（胶体金聚集）。

②间接法：

将抗原包被在硝酸纤维素膜上，依次滴加待测标本、洗涤液和胶体金标记抗人IgG抗体，再加洗涤液洗涤，阳性者即在膜中央呈红色斑点（胶体金聚集）。

本法因受非目IgG干扰，易产生假阳性，临床上较少使用。

（二）斑点金免疫层析试验（DICA）

【原理】是将胶体金标记和蛋白质层析技术相结合，以硝酸纤维素膜为载体快速固相膜免疫分析技术。

在DICA中，滴加在膜一端标本溶液受载体末毛细管作用向另一端移动，犹如层析一般，在移动过程中被分析物和固定于载体膜上某一区域抗体或抗原结合而被固相化，无关物则越过该区域而被分离，然后通过胶体金呈色条带来判读实验结果。

双抗体夹心法、竞争法、间接法

（三）临床应用及评价

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