犬的解剖实验报告Word文件下载.docx
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中指与无名指夹其前肢,无名指与小指夹其后肢,使整个躯干做最大屈曲。
把探针自枕骨大孔处垂直刺入,到达椎管,即将探针改变方向刺入颅腔,向各侧不断搅动,彻底捣毁脑组织;
再将探针原路退出,刺向尾侧,捻动探针使其逐渐刺入整个椎管内,完全彻底捣毁脊髓。
脊髓破坏完全的标志是:
下颌呼吸运动消失,反射消失,四肢松软。
剪除躯干上部和内脏,去皮,制备下肢标本:
用粗剪刀在骶髂关节前1厘米处剪断脊柱,握住蟾蜍下肢,沿躯干两侧(避开坐骨神经)剪开腹壁。
此时躯干上部及内脏即全部下垂。
剪除全部躯干及内脏组织。
剪去肛周皮肤;
用圆头镊子夹住脊柱,注意不要碰到坐骨神经,捏住皮肤边缘,逐步向下牵拉剥离皮肤。
将全部皮肤剥除后,把标本置于盛有任氏液的培养皿中。
洗净双手和用过的全部手术器械。
分离两下肢:
避开坐骨神经,用粗剪刀从背侧剪去骶骨,然后沿中线将脊柱剪成左右两半,再从耻骨联合中央剪开,将已分离的标本浸入盛有任氏液的培养皿中。
取出一下肢,用蛙钉固定于蛙板上,固定时要注意,坐骨神经和腓肠肌朝上。
先用玻璃分针沿脊柱侧游离坐骨神经腹腔部,然后循股二头肌和半膜肌之间的坐骨神经沟,纵向分离暴露坐骨神经之大腿部分直至腘窝,在分离过程中,把神经周围的结缔组织去除干净,并把神经的细小分支剪断,但要注意不要用金属器械碰触神经,也不要对神经过度牵拉。
实验期间应不断滴加任氏液使神经保持湿润。
用玻璃分针游离腓肠肌,并在下面穿线,在跟腱处打结。
在结扎线的下方剪断跟腱,在膝关节处把除腓肠肌外的小腿其他部分剪除。
注意保持完整的腓肠肌。
用棉线在靠近脊柱的位置结扎坐骨神经,并在结扎线的上方剪断神经,用眼科剪剪断坐骨神经的全部分
支。
从腘窝处开始剪掉大腿所有的肉,尽量把股骨刮干净,在膝关节上至少1cm处剪去上段股骨。
将标本浸入任氏剂的培养皿中。
实验装置与仪器连接:
1.将标本股骨残端固定在肌槽上的小孔内;
2.将结扎腓肠肌肌腱的棉线与张力换能器连接,调节棉线的松紧,要与桌面垂直;
3.将神经置于肌槽的刺激电极上,用任氏剂保持标本湿润;
4.刺激电极插入微机上的刺激输入孔;
5.张力换能器与微机相应通道相连。
打开电脑,进入生物信号采集处理系统,在菜单栏选择“实验项目”--------》“神经肌肉”-------》“刺激强度与反应的关系实验模块”点击开始,调节刺激参数,使频率自动逐渐递增,串间隔为2.连续记录不同频率时的肌肉收缩曲线。
五.结果与分析
不同频率刺激对肌肉收缩的影响:
串间隔为2,频率增量为1时的张力变化(如图)可见单收缩、不完全强直收缩、完全强直收缩。
分析:
刺激强度到达阈刺激时腓肠肌开始收缩,在最大刺激收缩力前随刺激强度增大而增大,到达最大刺激强度后,收缩力不发生明显改变;
在最大刺激强度条件下,某较小频率使腓肠肌发生单收缩,频率增大到,单收缩变为不完全强直收缩(如图中第2-6次刺激),频率继续增大,不完全强直收缩变为完全强制收缩(如图中第7、8次刺激)。
不同的腓肠肌其阈刺激,最大刺激均存在差异;
其单收缩,不完全强直收缩和完全强直收缩所要频率也不尽相同。
六.实验总结
本次试验严格按照操作步骤进行,所得实验结果较为理想,很容易观察到腓肠肌的单收缩、不完全强直收缩、完全强直收缩现象。
在实验的过程中,制备坐骨神经-腓肠肌标本是最繁琐的步骤,也是实验成功的关键所在,期间,我们进行的比较缓慢,生怕弄错了哪一步,一步步想原理、回忆老师是怎么说的,所幸的是我们最终成功了,得到了较好的结果,在这次的不断尝试和思考中,很好地锻炼了我们的动手能力和思维能力。
离体蛙心灌流
一、目的要求
1、学习斯氏离体蛙心灌流法;
2、了解心肌的生理特性;
3、观察Na+,K+,Ca2+及肾上腺素,乙酰胆碱等对离体心脏活动的影响。
二、原理
将离体蛙心(失去神经支配的蛙心)保持在适宜的环境中,在一定的时间内仍然能够保持节律性收缩,心脏正常的节律性活动需要一个适宜的理化环境,离体心脏也是如此,离体心脏脱离了机体的神经支配和全身体液因素的直接影响,可以通过改变灌流液的某些成分,观察其对心脏活动的作用。
心肌细胞的自律性、兴奋性、传导性及收缩性,都与钠、钾及钙等离子有关。
血钾浓度过高时(高于/L),心脏兴奋性、自律性、传导性及收缩性都下降,表现为收缩力减弱、心动过缓和传导阻滞,严重时心脏可停搏于舒张期。
血钙浓度升高时,心脏收缩力增强,过高可使心室停搏于收缩期。
血钙浓度降低,心肌收缩力减弱。
血中钠离子浓度的轻微变化,对心肌影响不明显,只有发生明显变化时,才会影响心肌的生理特性。
肾上腺素可使心率加快、传导加快及心肌收缩力增强,乙酰胆碱则与肾上腺素的作用相反。
三、实验仪器
青蛙、常用手术器械、蛙板、蛙心夹、计算机采集系统、张力传感器、支架、双凹夹、双针形露丝刺激电极、滴管、培养皿、纱布、棉线、橡皮泥、任氏液。
蛙心套管、套管夹、0.65%NaCl、5%NaCI、2%CaCl2、1%KCl、1:
5000肾上腺素、1:
10000乙酰肌碱、300U/mL肝素。
四、方法与步骤
1、斯氏蛙心插管法
(1)一只青蛙,双毁髓后背位置于蜡盘中,按前面的方法暴露心脏。
仔细识别心脏周围的大血管。
在左主动脉下方穿一线,于动脉圆锥处结扎。
再从左右两主动脉下方穿一线,并打一活结备用。
左手提起主动脉上的结扎线,右手用眼科剪在结扎线下方、沿向心方向将动脉上壁剪一斜口。
选择大小适宜的蛙心套管,然后将盛有少量任氏液的斯氏蛙心套管,山开口处插入动脉圆锥。
当套管尖端到达动脉圆锥基部时,应将套管稍稍后退,使尖端向动脉圆锥的背部后下方及心尖方向推进,经主动脉瓣插入心室腔内。
此时可见套管中血液冲人套管,并使液面随心脏搏动而亡下移动,表明操作成功。
用滴管吸去套管中的血液,更换新鲜任氏液。
稳定住套管后,轻轻提起备用线,将左、右主动脉连同插入的套管用双结扎紧,再将结线固定在套管的小玻璃钩上,然后剪断结扎线上方的血管。
轻轻提起套管和心脏,看清静脉窦的位置,于静脉窦下方剪断有牵连的组织,仅保留静脉窦与心脏的联系,使心脏离体。
用任氏液反复冲洗心室内余血,使套管内灌流液不再有残留血液。
保持套管内液面高度一致,即可进行实验。
(2)将插好离体心脏的套管固定在支架上,用蛙心夹夹住少许心尖部肌肉。
再将蛙心夹上的系线绕过一个滑轮与张力传感器相连(如右图)。
注意:
勿使灌流液滴到传感器上。
调节显示器上心脏收缩曲线的幅度适中。
2、实验观察
记录正常心搏曲线
改用0.65%NaCI溶液灌流,并作好加药标记,观察心搏变化。
待曲线氏插管装置出现明显变化时,立即吸去套管中的灌流液,同时做好冲洗标记,并用新鲜任氏液清洗2—3次,待心搏恢复正常。
换液时切勿碰套管,以免影响描记曲线的基线,同时保持灌流液面一致。
观察可得,NaCI溶液会阻遏心脏搏动。
迅速用新鲜任氏液清洗2~3次,待心搏恢复正常。
向套管内加入1~3滴2%CaCI:
溶液,观察并记录心搏曲线的变化。
当出现明显变化时,立即更换任氏液,待心搏恢复正常。
同法向套管中加1—2滴1%KCl溶液,记录心搏曲线的变化。
当心搏曲线变化时,同法更换灌流液,待心搏恢复正常。
同法记录套管中加入l~2滴的肾上腺素溶液后心搏曲线的变化。
同法记录套管中加入1—2滴乙酰胆碱溶液后心搏曲线的变化。
五、实验结果与原因分析
曲线的幅度————收缩的程度
曲线的密度————心率
曲线的基线————舒张的程度
1、正常收缩曲线图
2、滴加含钠离子溶液图
滴加Na离子溶液后,心跳减弱,这种现象出现的原因是由于灌注液中缺乏Ca2+,当Na+明显增高时,膜内外钠离子的浓度梯度增大,因此,细胞Na离子内流加快,去极速
2+度和幅度均增加,导致传导性和自律性增高。
同时,Na离子内流的增多促进细胞内Ca的
2+外运使细胞内Ca浓度降低,因此,心肌收缩能力减弱。
3、滴加2%CaCl溶液
细胞外Ca2+在细胞膜上对Na+内流有竞争性抑制作用,称为膜屏障作用。
[Ca2+]增高时,Na+内流受抑制,细胞0期除极速度与幅度减小,使兴奋性及传导性均降低。
[Ca2+]增高使Ca2+内流增多,因此慢反应细胞0期去极化加快加强,传导性增高,而快反应细胞平台期缩短,有效不应期缩短,复极加速。
Ca2+内流增多,使心肌收缩能力增强。
[Ca2+]降低时,所引起的变化与高钙时相反。
因此加入CaCl2后,心率减少、振幅减少,基线上移。
篇二:
犬解剖图整理
篇三:
动物解剖生理实验指导
实验内容
实验一、显微镜的使用、组织切片的显微观察实验二、犬骨骼的观察、骨骼辨认测试
实验三、血液的凝固
实验四、红细胞的脆性试验
实验五、蛙心活动观察
实验六、红细胞计数
实验七、反射弧分析及脊髓反射活动观察
实验八、胃肠运动观察和小肠吸收观察
实验一显微镜的构造、使用和保养
[实验目的]
了解显微镜的基本构造,掌握显微镜的使用方法和保养方法。
[材料设备]
显微镜、组织切片、擦镜纸等。
[方法步骤]
(一)机械部分
1、镜筒
2、物镜转换器
3、镜臂
4、调焦器
5、载物台
6、镜柱
7、镜座
(二)光学系统部分
光镜的光学系统主要包括物镜、目镜和照明装置(反光镜、聚光器和光圈等)。
1、目镜:
常见的有5×
、10×
和15×
(×
表示放大倍数)的目镜,可根据不同的需要选择使用,最常使用的是10×
目镜。
2、物镜:
常用物镜的放大倍数有10×
、40×
和100×
等几种。
一般将8×
或10×
的物镜称为低倍镜(而将5×
以下的叫做放大镜);
将40×
或45×
的称为
高倍镜;
将90×
或100×
的称为油镜(这种镜头在使用时需浸在镜油中)。
图1-3物镜的性能参数及工作距离
C线为盖玻片的的上表面,10?
物镜的工作距离为;
40?
物镜的工作距离为;
10/、40/、100/表
示镜头的放大倍数和数字孔径。
160/表示镜筒长度为
160mm,盖玻片厚度为。
3、聚光器:
调节光线的强弱,升高聚光器可使光线增强,反之则光线变弱。
光圈能控制进入聚光器的光束大小的可变光阑。
以调节光线的强弱。
在光圈的下方常装有滤光片框,可放置不同颜色的滤光片。
4、反光镜:
反光镜有两个面,一面为平面镜,另一面为凹面镜,凹面镜有聚光作用,适于较弱光和散射光下使用,光线较强时则选用平面镜。
二、光学显微镜的使用方法
(-)准备
将显微镜平稳地放在身前的实验桌上,略偏左,使镜臂对着身体,镜筒向前。
(二)对光
①转动转换器,使低倍镜对准通光孔,转动粗调节器,使低倍镜前端距载物台约1-2厘米的距离。
②将光圈放大;
让左眼朝目镜里注视,同时用手将反光镜转向光源;
调节反光镜,直至从目镜里看到一个白色明亮的圆形视野。
(三)低倍镜观察
①将玻片标本放在载物台上,使待检查部分位于通光孔中心,用弹簧夹片压住载玻片两端。
②两眼从侧面注视,将物镜降至距标本约厘米时停止。
③用左眼朝目镜里观察,同时转动粗调节器,缓慢上升镜筒,直到视野中出现物象,再用细调节器调节。
(四)高倍镜观察
①先将低倍镜下找到所需观察的物象,把要进一步放大的部位移到视野正中央。
②转动转换器,使高倍镜到位。
调节反光镜和光圈,使光照明亮,再微微调节细调节器,直到物象清晰。
(五)显微镜复原
用擦镜纸揩净目镜和物镜,用清洁纱布揩净镜体。
再转动转换器,把两个物镜偏到两旁,并将镜筒下降,然后将显微镜平稳地放入镜箱内保存。
实验二动物主要组织的显微镜识别
掌握单层扁平上皮、单层柱状上皮、单层立方上皮、疏松结缔组织、骨骼肌、平滑肌、神经元的结构特点。
显微镜、单层扁平上皮、单层柱状上皮、单层立方上皮、疏松结缔组织、骨骼肌、平滑肌、神经组织切片及相关的图。
1、取镜与放置
移动显微镜时,要一手拿镜臂,一手托镜座,将显微镜放置在前方桌面上。
2、打开光源,上升聚光镜,开大孔径光阑。
3、观察
将被检标本置于载物台上,用压片夹夹住,旋转最低倍数物镜观察。
调节粗调焦螺旋,使载物台缓缓上升,直至物镜镜头接近标本。
这时,一边使用目镜观察,一边调节粗调焦螺旋使载物台下降,直至视野中看到物像为止。
移动载片位置,使物象处于视野的中心,此时再调节细调焦螺旋以增加物象的清晰度,可以调节聚光镜和孔径光阑,使光线强弱适中,以便于观察。
转动物镜转换器,换用高倍镜头。
用细调焦螺旋调节,换用高倍镜后,可调节聚光镜和孔径光阑以增加亮度。
观察更细微结构必需使用油镜时,则在制片上滴一滴香柏油。
油镜使用完后,要及时地用蘸有乙醚的擦镜纸把油镜镜头擦拭干净。
4.收显微镜
关闭光源;
下降聚光镜;
关闭孔径光阑;
转动物镜转换器,使之处于最低倍数物镜下。
显微镜保持清洁。
显微镜的光学部分只能用专门的擦镜纸擦拭。
按实验室的要求,做好显微镜的使用记录等。
[实验结果]
1.复层上皮组织
2.平滑肌
3.神经组织
4.心肌切片
5.硬骨组织
6.软骨组织
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