蛋白质制备及含量测定凯氏定氮法.docx
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蛋白质制备及含量测定凯氏定氮法
实验六蛋白质制备及含量测定——
微量凯氏(Mirco-Kjeldahl)定氮法
一、实验目的要求
1、了解蛋白质提取的一般方法和原理
2、了解蛋白质含量测定的常用方法
3、学习微量凯氏定氮法的原理
4、掌握微量凯氏定氮法的操作技术,包括样品的消化、蒸馏、滴定、含氮量的计算及蛋白质含量的换算等。
二、实验原理
1、蛋白质的提取与制备
蛋白质的提取与制备方法与生物材料的类型及蛋白质的存在部位有关。
如果是胞内蛋白,首先必须要进行细胞破碎。
细胞破碎的方法与细胞的类型有关,包括物理破碎(研磨、超声波等)、化学破碎(化学溶剂处理)、酶法破碎等。
如果是胞外蛋白,可以根据相应蛋白质的性质进行提取分离纯化。
如果待提取的蛋白质是具有生物活性的蛋白质如酶,则在样品处理、提取及分离纯化过程中需注意防止蛋白质的变形失活,如在低温下操作、选择适当的缓冲体系等。
2、蛋白质含量测定
蛋白质含量测定的方法很多,如:
紫外吸收法、双缩脲法、考马斯亮蓝染色法(Bradford法)、Folin酚法、微量凯氏定氮法等。
3、凯氏定氮
生物材料的含氮量测定在生物化学研究中具有一定的意义,如蛋白质的含氮量约为16%,测出含氮量则可推知蛋白含量。
生物材料总氮量的测定,通常采用微量凯氏定氮法。
凯氏定氮法由于具有测定准确度高,可测定各种不同形态样品等两大优点,因而被公认为是测定食品、饲料、种子、生物制品、药品中蛋白质含量的标准分析方法。
其原理如下:
(1)消化:
有机物与浓硫酸共热,使有机氮全部转化为无机氮——硫酸铵。
为加快反应,添加硫酸铜和硫酸钾的混合物;前者为催化剂,后者可提高硫酸沸点。
这一步约需2~3h,视样品的性质而定。
天然的含氮有机物(如蛋白质,核酸及氨基酸等)与浓硫酸共热时,其中的碳、氢二元素被氧化成二氧化碳和水;蛋白质分解,而有机氮则变成氨(无机氮),并进一步与硫酸作用生成硫酸铵。
此时程称之为“消化”。
但是,这个反应进行得比较缓慢,通常需要加入硫酸钾或硫酸钠以提高反应的沸点,并加入硫酸铜作为催化剂,以促进反应的进行。
甘氨酸的消化过程可表示如下:
NH2-CH2-COOH+3H2SO4→NH3+2CO2↑+3SO2↑+4H2O
2NH3+H2SO4→(NH4)2SO4
或2NH2-CH2-COOH+7H2SO4→(NH4)2SO4+4CO2↑+6SO2↑+8H2O
(2)加碱蒸馏:
浓碱可使消化液中的硫酸铵分解,游离出氨,借水蒸汽将产生的氨蒸馏到一定量、一定浓度的硼酸溶液中,硼酸吸收氨后,氨与溶液中的氢离子结合,生成铵根离子。
(NH4)2SO4+2NaOH→Na2SO4+2NH3+2H2O
NH3+H3BO3→NH4H2BO3
或2NH3+4H3BO3→(NH4)2B4O7+5H2O
(3)滴定:
硼酸吸收氨后,氨与溶液中的氢离子结合,生成铵离子,使溶液中氢离子浓度降低。
然后用标准无机酸滴定,直至恢复溶液中原来氢离子浓度为止,最后根据所用标准酸的当量数物质的量(相当于待测物中氨的物质的量)计算出待测物中的含氮量,再折算为粗蛋白含量。
NH4H2BO3+HCl→NH4Cl+H3BO3
或(NH4)2B4O7+2HCl+5H2O→2NH4Cl+4H3BO3
滴定时用甲烯蓝和甲基红混合指示剂,其指示范围为pH5.2~5.6,将NH4H2BO3的绿色滴至原来H3BO3的紫色即为终点。
本法适用于0.2~1.0mg(2.0mg)氮量测定。
相对误差应小于2%。
图3-1微量凯氏蒸馏装置示意图
1.热源2.烧瓶3.玻璃管4.橡皮管5.玻璃杯6.棒状玻塞7.反应室8.反应室外壳9.夹子10.反应室中插管11.冷凝管12.锥形瓶13.石棉网
图3-2改进型微量凯氏定氮蒸馏装置
1.水蒸气发生器2.反应室3.水蒸气排气孔4.排水排气孔5.外源水入口6.进样口7.加样漏斗8.冷凝器9.冷凝器出口10.自来水入口11.通气室12.通气室出口13.通气室出口14.排水柱15.排水柱入口16.排水柱入口17.冷凝水和废水出口
三、主要实验试剂和器材
1、试剂
(1)消化液(过氧化氢∶浓硫酸∶水=3∶2∶1)
(2)硫酸钾—硫酸铜混合物:
硫酸钾与硫酸铜(CuSO4·5H2O)以3:
1(W/W)的配比混合研磨成粉末。
(3)30%氢氧化钠溶液
(4)2%硼酸
(5)混合指示剂(田氏指示剂)的配制:
方法一:
取50mL0.1%甲烯蓝无水醇溶液与200mL0.1%甲基红无水乙醇溶液混合配成,贮于棕色瓶备用,这种指示剂酸性时为紫色,碱性时为绿色,变色范围窄且灵敏。
或方法二:
0.1%溴甲酚绿乙醇溶液10mL与0.1%甲基红乙醇溶液2mL混和即成。
本指示剂的变色范围为pH5.2→5.4→5.6
紫红色灰色绿色
(6)0.0100mol·L-1HCl
[(7)硼酸-指示剂混合液:
取100mL2%硼酸溶液,滴加混合指示剂贮备液,摇匀后溶液呈现紫红色即可。
(约加1mL左右混合指示剂)]
2、待测样品
市售面粉
3、主要器材
(1) 分析天平
(2)凯氏烧瓶100mL(×2)
(3) 容量瓶(50mL)
(4) 刻度吸管(1mL、2mL)
(5) 凯氏定氮蒸馏装置
(6) 微量滴定管(3mL、5mL,可读至0.02mL)
(7) 锥形瓶(50~100mL)
四、操作方法
1、样品处理
液体样品(如血清)可以直接消化,而固体样品中的含氮量是100克该物质(干重中所含氮的克数)来表示(%)。
因此在定氮前,应将固体样品中的水份除掉。
一般样品干燥的温度都采用105℃,因为非游离的水都不能在100℃以下烘干。
在称量瓶中称入一定量的面粉样品,然后置105℃的烘箱内干燥4小时。
用坩埚将称量瓶放入干燥器内,待降至室温后称重,按上述操作继续烘干样品。
每干燥1小时后,称量一次,直到两次称量的数量不变,即达恒重(±0.0002g)。
精确称取0.1g左右的干燥面粉作为本次实验的样品。
2、消化
取2个100毫升的凯氏烧瓶,向第一号烧瓶内加0.1g面粉样品。
注意,加样品时应直接送至烧瓶底部,切勿沾于瓶口或瓶颈上,向2号烧瓶加入0.1毫升蒸馏水作空白对照。
在每个烧瓶内加入硫酸钾—硫酸铜混合物约0.2g,消化液(浓硫酸)5mL,玻璃珠1粒,摇匀。
将烧瓶约60度角固定在铁架上,每个瓶口放一小漏斗,在通风厨内的电炉上消化。
在消化开始时,应控制火力,不要使液体冲到瓶颈。
待瓶内水汽蒸完,硫酸开始分解并放出SO2白烟后,适当加强火力,使瓶内液体微微沸腾,大约维持2~3h继续消化(待消化液变成褐色后,为了加速完成消化,可将烧瓶取下,稍冷,将30%过氧化氢溶液1~2滴加到烧瓶底部消化液中,再继续消化,直到消化液由淡黄色变成透明淡蓝绿色,消化即告完成)。
直至消化液呈透明绿色为止。
消化完毕,待烧瓶内容物冷却后,加蒸馏水10毫升(注意慢加,边加边摇)。
冷却后将瓶内容物转入50毫升的容量瓶中,并用蒸馏水洗烧瓶数次,溶液一并倒入容量瓶,最后定容至刻度摇匀,做上记号备用。
注意事项
(1)小心加样,切勿使样品沾污凯氏烧瓶口部、颈部。
(2)消化时,须斜放凯氏烧瓶(45°左右)。
火力先小后大,避免黑色消化物溅到瓶口、瓶颈壁上。
本次实验消化液已经制备好,备用。
从蒸馏开始做。
3、蒸馏
(1)凯氏定氮装置的安装:
首先固定主体(蒸汽发生器和反应室),高度适合于热源加热;然后用橡皮管将各相应部位连接,放上自由夹;最后长橡皮管连接自来水和出水口。
(2)蒸馏器的洗涤:
仪器应先经一般洗涤,再经水蒸气洗涤。
洗涤方法:
蒸气发生器中加入一定量水(以排水高度为宜)加热烧开(注意:
热源切勿靠近橡皮管,防止将橡皮管烧化)。
向反应室中加入蒸馏水,水即自动吸出(虹吸);或移开蒸汽发生器的热源片刻;或打开自由夹②,使得冷水进入蒸汽发生器,都可使反应室中的水自动吸出(如果几种措施都无效,检查装置本身是否有问题如存在裂痕等)。
反复清洗3~5次。
检验是否洗涤干净:
将一只盛有5mL2%硼酸液和1~2滴指示剂的锥形瓶置于冷凝管下端,使冷凝管管口插入液体中,蒸馏数分钟,如硼酸液颜色不变,表明仪器已洗净。
否则继续洗涤直至洗净为止。
[(3)滴定标准样品:
标准硫酸铵溶液
先用标准硫酸铵溶液(0.3毫克氮/毫升)试验2~3次。
蒸馏器洗净后,开放水龙头,使水进入蒸汽发生器,水放至球部即可。
取3个50毫升的锥形瓶,各准确加入10毫升硼酸(内加有混合指示剂)。
用表面皿复盖备用。
加样:
用吸量管吸取1mL标准硫酸铵溶液,细心地由加样漏斗倾入反应室,再用蒸馏水1毫升清洗漏斗。
取一个盛有硼酸—混合指示剂的锥形瓶,置于冷凝管下端,使冷凝器管口下端浸没在硼酸溶液液面下,用量筒从漏斗加入30%氢氧化钠8mL,随即将自由夹夹紧,并往漏斗加入少量蒸馏水封闭。
蒸馏:
用酒精灯加热(应用挡风板将灯围拢,维持火力恒定),沸腾不可高于虹吸管口以免整齐发生器溶液从虹吸管倒吸,待第一滴蒸馏液从冷凝柱下端滴下时起,继续蒸馏5分钟,然后将锥形瓶放低,使导管离开液面再蒸2分钟,并用少量蒸馏水冷凝管口外壁,蒸馏完毕,取下锥形瓶,随即将蒸馏器洗净。
]
(3)样品消化液及空白的蒸馏
取50mL锥形瓶数个,各加5mL2%硼酸溶液和1~2滴指示剂,用表面皿覆盖备用。
用吸量管分别吸取5mL/10mL样品消化液按上述操作步骤进行蒸馏。
a.首先关闭冷凝水,打开自由夹2,使蒸汽发生器与大气相通。
将锥形瓶放在冷凝器下端,浸没于液面下。
b.移取5mL/10mL样品消化液小心加入反应室。
将准备好的30%氢氧化钠8mL加入,关闭自由夹1,加水封。
c.关闭自由夹2,打开冷凝水(不要过猛)
d.加热蒸汽发生器,开始蒸馏。
当观察到锥形瓶中由紫色→绿色(2~3min),蒸馏3min。
放低锥形瓶,继续蒸馏1min,用少量蒸馏水洗涤冷凝管下端外侧。
取下锥形瓶,以表面皿覆盖。
以备滴定。
蒸馏完毕,应立即洗涤反应室,方法同前,清洗3~5次。
继续进行10mL空白消化液蒸馏。
蒸馏全部结束后,将反应室清洗干净,废水排出。
(4)滴定:
蒸馏完毕,分别用0.0100mol·L-1标准盐酸溶液滴定样品消化液蒸馏的锥形瓶内溶液和空白消化液蒸馏的锥形瓶内溶液至绿色变为淡紫色,记录所用盐酸的量,分别为V1和V2。
注意事项
(1)必须仔细检查凯氏定氮仪的各个连接处,保证不漏气。
(2)凯氏定氮仪必须事先反复清洗,保证洁净。
(3)蒸馏时,小心加入消化液。
加样时最好将火力拧小或撤去或将蒸汽发生器与大气相通,避免加入的消化样液发生倒吸。
蒸馏时,切忌火力不稳,否则也将发生倒吸现象。
(4)蒸馏后应及时清洗定氮仪。
(5)凯氏法的优点是适用范围广,可用于动植物的各种组织,器官及食品等成组复杂样品的测定,只要细心操作都能得到精确的结果。
其缺点是操作比较复杂,含有大量碱性氨基酸的蛋白质测定结果偏高。
(6)普通实验室中的空气中常含有少量的氨、CO2,会影响结果,所以操作应在单独洁净的房间中进行,并尽可能快地对硼酸吸收液进行滴定。
(7)微量滴定管的使用:
清洗干净,用HCl标准溶液润洗;滴定时,小心操作,切勿滴定过快,尤其是滴定空白样时,因为HCl消耗量可能很小。
五、实验结果与分析
cHCl(V1-V2)×0.014×100消化液总量
样品的总氮量(克氮%)=———————————————×——————%
w测定时用量
若测定的样品含氮量部分只是蛋白质,(如血清)则:
样品的总蛋白含量(克蛋白%)=总氮量×6.25
若样品中除有蛋白外,尚有其他含氮物质,则样品蛋白质含量的测定要更复杂一些。
首先需向样品中加入三氯乙酸(沉淀蛋白质),使其最终浓度为5%,然后测定未加三氯乙酸的样品及加入三氯乙酸后的样品的上清液中的含氮量,从而计算出蛋白氮,再进一步算出蛋白质的含量。
蛋白氮=总氮—非蛋白氮
蛋白质含量(g/%)=蛋白氮×6.25
要求绘出蒸馏装置图,计算待测样品的总氮量和蛋白质含量
六、思考题
1.在实验中消化时加入硫酸钾-硫酸铜混合物的作用是什么?
2.如何证明蒸馏器洗涤干净?
3.写出以下各步的化学反应式:
①蛋白质消化
②氨的蒸馏
③氨的滴定
4.指出本测定方法产生的误差的原因。
5.测定未知样品前标准硫酸铵和空白的目的是什么?
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