大肠菌群计数方法作业指导书Word格式文档下载.docx
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4.0职责
4.1质检部:
负责按此方法对加多宝来凉茶、浓缩汁或原辅材料中大肠菌群进行计数。
5.0流程图
见附录A、附录B。
6.0内容及要求
6.1设备和材料
除微生物实验室常规灭菌及培养设备外,其它设备和材料如下:
6.1.1恒温培养箱:
36℃±
1℃
6.1.2冰箱:
2℃-5℃
6.1.3恒温水浴箱:
46℃±
6.1.4天平:
感量0.1g
6.1.5振荡器
6.1.6无菌吸管:
1ml(具0.01刻度)、10ml(具0.1刻度)或微量移液器及吸头。
6.1.7无菌锥形瓶:
容量500ml
6.1.8无菌试管:
18×
200ml
6.1.9小导管
6.1.10无菌培养皿:
直径90mm
6.1.11菌落计数器
6.2培养基和试剂
6.2.1月桂基硫酸盐胰蛋白胨(LST)肉汤
6.2.2煌绿乳糖胆盐(BGLG)肉汤
6.2.3乳糖胆盐发酵培养基(LBB)
6.2.4乳糖蛋白胨培养基(LPB)
6.2.5伊红美蓝琼脂培养基(EMB)
6.2.6结晶紫中性红胆盐琼脂(VRBA)
6.2.775%乙醇溶液
6.2.8无菌生理盐水:
称取8.5g氯化钠溶于1000ml蒸馏水中,121℃高压灭菌15min
6.3大肠菌群MPN计数法
6.3.1加多宝凉茶、浓缩汁等产品及原辅材料中大肠菌群的测定
6.3.1.1样品稀释
a、固体和半固体样品:
称取25g样品置于盛有225ml无菌生理盐水的无菌均质袋中,用拍击式均质器拍打1-2min,制成1:
10的样品匀液。
b、液体样品:
以无菌吸管吸取25ml样品置于盛有225ml的无菌生理盐水的无菌锥形瓶中,充分混匀,制成1:
c、用1ml无菌吸管吸取1:
10样品匀液1ml,沿管壁缓慢注入盛有9ml无菌生理盐水的试管中(注意吸管或吸头尖端不要触及稀释液面),振摇试管,制成1:
100的样品匀液。
d、根据对样品污染状况的分析,按上述操作,依次制成10倍递增系列稀释样品匀液。
注意每递增稀释一次,换用一支1ml无菌吸管。
从制备样品匀液至样品接种完毕,全过程不得超过15min。
6.3.1.2初发酵试验
a、每个样品,选择3个适宜的连续稀释度的样品匀液(液体样品可以选择原液),每个稀释度接种3管月桂基硫酸胰蛋白胨(LST)肉汤,每管接种1ml(如果接种量超过1ml,则用双料LST肉汤)。
b、将以上接种好的试管置于36±
1℃培养24±
2h,观察导管内是否有气泡产生,如未产气则继续培养至48±
2h。
记录在24h和48h内产气的LST肉汤管数。
未产气者为大肠菌群阴性,产气者则进行复发酵试验。
6.3.1.3复发酵试验
用接种环从所有48±
2h内发酵产气的LST肉汤中分别取培养物1环,移种于煌绿乳糖胆盐(BGLB)肉汤管中,36±
1℃培养48±
2h,观察产气情况。
产气者,计为大肠菌群阳性管。
6.3.1.4大肠菌群最可能数(MPN)的报告
根据大肠菌群阳性管数,检索MPN表(见附录C),报告每克(或每毫升)样品中大肠菌群的MPN值。
6.3.2工艺水等水样中大肠菌群的测定
6.3.2.1推测性试验
a、取待检样品10ml,接种到10ml双料的乳糖胆盐发酵培养液或乳糖蛋白胨培养液中,共接种5管;
对于可能存在污染的水源,取待检样品10ml、1ml、0.1ml(取样品1ml于9ml无菌生理盐水中稀释,取稀释后的样液1ml),分别接种于含10ml双料、单料和单料乳糖胆盐发酵培养液或乳糖蛋白胨培养液中,各接种5管。
b、如果水样污染较严重,应加大稀释度,可接种1ml、0.1ml、0.01ml甚至0.1ml、0.01ml、0.001ml,每个稀释度接种5管,每个水样共接种15管。
接种1ml以下水样时,必须做10倍递增稀释后,取1ml接种,每递增稀释一次,换用1支1ml无菌刻度吸管。
c、将以上接种好的试管置于36±
1℃培养箱内培养24±
2h,如所有乳糖胆盐发酵管或乳糖蛋白胨发酵管都不产气,则可报告为大肠菌群阴性,如有产气者,则按下列程序进行。
6.3.2.2确证性试验
6.3.2.2.1方法一
a、分离培养
将产酸产气的发酵管分别转种在伊红美蓝琼脂平板上,置于36±
1℃生化培养箱内,培养18-24h取出。
观察菌落形态,用接种环挑取符合下列特征的菌落作革兰氏染色、镜检和证实试验。
1菌落呈深紫黑色,表面有金属光泽;
2紫黑色、不带或略带金属光泽的菌落;
3淡紫红色、中心较深的菌落。
b、证实试验
经上述染色镜检为革兰氏阴性无芽孢杆菌,同时接种乳糖胆盐发酵管内,置于36±
1℃生化培养箱培养24±
2h,有产酸产气者,即证实有大肠菌群存在。
6.3.2.2.2方法二
自推测性检验阳性管中取1接种环培养液,接种到煌绿乳糖胆盐(BGLG)肉汤管中,置于36±
1℃培养箱内培养48h。
观察BGLG管中的产气情况,如有气体产生,就可确定为大肠菌群阳性,如无气体产生则为大肠菌群阴性。
6.3.2.3结果报告
根据证实为大肠菌群阳性的管数,查MPN检索表,可得出水样中大肠菌群的MPN值。
5管法见附录F,15管法结果见附录E。
稀释样品查表后所得结果应乘以稀释倍数。
如所有乳糖胆盐发酵管均为阴性时,可报告大肠菌群未检出。
6.4大肠菌群平板计数法
6.4.1样品稀释按6.3.1.1执行
6.4.2平板计数
6.4.2.1选取1-3个适宜的稀释度(液体样品可以选用原液)接种两个无菌平皿,每皿1ml,同时分别取1ml无菌生理盐水加入到两个无菌平皿作空白对照。
6.4.2.2及时将冷却至46℃的结晶紫中性红胆盐琼脂(VRBA)15-20ml倾注于每个平皿中。
小心旋转平皿,将培养基与样液充分混匀,待琼脂凝固后再加3-4ml结晶紫中性红胆盐琼脂(VRBA)覆盖平板表层。
翻转平板,置于36±
1℃培养箱内培养18-24h。
6.4.2.3用肉眼观察,必要时用放大镜或菌落计数器,记录稀释倍数和相应的菌落数量。
选取菌落数在15CFU-150CFU之间的平板,分别计数平板上出现的典型和可疑的大肠菌群菌落。
典型菌落为紫红色,菌落周围有红色的胆盐沉淀环,菌落直径为0.55mm或更大。
6.4.3证实试验
从VRBA平板上挑取10个不同类型的典型和可疑菌落,分别移种于BGLB肉汤管内,36±
1℃培养箱内培养24-48h,观察产气情况。
凡BGLB肉汤管产气,即可报告为大肠菌群阳性。
6.4.4平板计数法的报告
经最后证实为大肠菌群阳性的试管比例乘以6.4.2.3中计数的平板菌落数,再乘以稀释倍数,即为每克(或每毫升)样品中大肠菌群数。
例:
10-4样品稀释液1ml,在VRBA平板上有100个典型和可疑菌落,挑取其中10个接种BGLB肉汤管,证实有6个阳性管,则该样品的大肠菌群数为:
100×
(6/10)×
104g(ml)=6.0×
105CFU/g(CFU/ml)
7.0质量记录
7.1KJWIF-QA-34《成品检测记录》
附录A
大肠菌群MPN计数检验程序
附录B
大肠菌群平板计数检验程序
附录C
大肠菌群最可能数(MPN)检索表
每克(或每毫升)检样中大肠菌群最可能数(MPN)的检索见下表:
阳性管数
MPN
95%可信限
0.1
0.01
0.001
下限
上限
<
3.0
—
9.5
2
21
4.5
42
0.15
9.6
28
8.7
94
11
35
6.1
1.2
18
3
29
6.2
36
9.4
3.6
38
23
4.6
0.17
110
7.2
1.3
64
17
180
?
9
7.4
20
75
200
120
37
420
160
40
15
93
16
150
9.2
1.4
210
430
14
290
90
1000
240
3.7
460
2000
1100
4100
27
>
注1:
本表采用3个稀释度[0.1g(或0.1ml)、0.01g(或0.01ml)和0.001g(或0.001ml)],每个稀释度接种3管。
注2:
表内所列检样量如改用1g(或1ml)、0.1g(或0.1ml)和0.01g(或0.01ml)时,表内数字应相应降低10倍,如改用0.01g(或0.01ml)、0.001g(或0.001ml)、0.0001g(或0.0001ml)时,则表内数字应相应增高10倍,其余类推。
附录D
大肠菌群MPN检索表
(用5管10ml水样时各种阳性和阴性结果组合的MPN值及其95%的可信限)
阳性反应管数
MPN/100ml
6
2.2
12.6
5.1
0.5
19.2
1.6
29.4
4
3.3
52.9
5
16
8
无限
附录E
大肠菌群MPN检索表(总接种量55.5ml,其中5份10ml水样,5份1ml水样,5份0.1ml水样)
接种量/ml
大肠菌
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