维生素C的生产工艺Word格式.docx
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(3)反应条件及影响因素
⏹pH值
Ø
葡萄糖水pH8.0-8.5
偏高或偏低会使甘露醇(副产物)含量增加
⏹设备材质
山梨醇能溶解多种金属
避免使用铁、铝或铜制设备,而用不锈钢
⏹副产物影响
甘露醇影响产物比旋度
残糖含量影响产物比旋度——氢化反应的终点指标
(4)注意事项及三废处理
⏹车间进行还原反应时氢气自制,故配有氢气柜。
应杜绝火源,以免氢气发生爆炸
⏹废镍催化剂可压制成块,冶炼回收
⏹再生废液中的镍经沉淀后可回收
⏹废酸、废碱经中和后放入下水道
2、L-山梨糖的制备
⏹选择性地使C2位的羟基氧化成羰基
⏹生物氧化
⏹黑醋菌
⏹菌种部分
斜面培养基中菌种活化传代24h后,产糖量达到100mg/mL。
在30℃培养48h,镜检菌体正常、无杂菌
放0-5℃冰箱保存备用。
⏹发酵部分
投料。
D-山梨醇浓度为16%-20%
培养基控制pH5.4-5.6,120℃灭菌0.5h
在发酵罐中培养(温度30-32℃;
压力0.03-0.05MPa)
一级种子罐发酵率40%以上,二级种子罐发酵率50%以上
发酵培养的山梨醇的投料浓度为25%
当发酵率在95%以上时,温度略高(31-33℃);
pH7.2左右,即为发酵终点
控制真空度在0.05MPa以上,温度60℃以下,减压浓缩结晶即得L-山梨糖
⏹山梨醇的纯度影响收率
⏹山梨醇浓度影响氧化速率
⏹金属离子会抑制细菌的脱氢活性
⏹生物催化剂能促进细菌生长,提高发酵率
⏹空气流量影响深层发酵。
一般为0.7-1VVM
⏹细菌接种量影响氧化速率
(4)注意事项
⏹尽量减少染菌途径
⏹其途径有
种子或发酵罐带菌
接种时罐压低于大气压
培养基消毒不彻底
操作中染菌
阀门泄露
3、2,3,4,6-双酮基-L-山梨糖的制备
⏹配料比:
L-山梨糖:
丙酮:
发烟硫酸:
氢氧化钠=1:
9:
0.4:
0.6
⏹步骤
5℃下压入丙酮、发烟硫酸,加入山梨糖
15-20℃下溶糖6h
降温至-8℃,保持6-7h得酮化液。
<
25℃,加入18%-22%的氢氧化钠溶液,中和至pH8.0-8.5
下层硫酸钠用丙酮洗涤,回收单丙酮糖
上层清液常压蒸馏至100℃,减压蒸馏至90℃为终点
苯提取蒸馏后剩余溶液,减压蒸馏得双丙酮糖
收率88%
⏹缩酮化反应有多种副产物
温度高、水分多、时间过长、硫酸过多则副反应增多,双酮糖收率降低
⏹酮化反应温度
低于20℃
高于20℃将有利于单酮糖的生产,收率降低
⏹双酮糖在酸性中不稳定,碱性中较温定。
因此中和时,必须保持碱性和低温条件
⏹加料的先后顺序,先加入丙酮古龙酸与盐酸,易于结块,造成搅拌困难
4、2,3,4,6-双酮基-L-古龙酸(双丙酮古龙酸)的制备
⏹次氯酸钠的制造——新鲜配制
14.5%-15.5%的氢氧化钠溶液通入液氯,
以有效氯浓度9.5-9.7%,余碱浓度2.8-3.2%为终点
⏹双丙酮酸的氧化
配料比:
双丙酮糖:
次氯酸钠:
硫酸镍=1:
10:
0.04
投料,40℃保温搅拌30min
静止片刻,抽滤
滤液冷至0-5℃,用盐酸中和(pH7、3、1.5)
过滤、水洗、过滤。
得结晶,收率86%。
5、粗品维生素C的制备
双丙酮古龙酸(折纯):
精制盐酸(38%):
乙醇=1.0:
0.27:
0.31
加部分双丙酮古龙酸,搅拌加盐酸,再加余下的古龙酸
蒸汽加温,升至37℃左右关蒸汽,
自然升温至52-54℃,保温5-7h。
50-52℃保温20h,然后通水降温1h
加适量乙醇,冷却至-2℃
放料,甩滤0.5h
乙醇洗涤,甩滤3-3.5h
干燥得粗品维生素C,收率88%
(3)注意事项
⏹加料的先后次序
先加双丙酮古龙酸与盐酸,易结块,搅拌困难
先加丙酮,使之与双丙酮古龙酸形成悬浮液,易搅拌
⏹盐酸浓度不能过低(>
38%),否则催化效果降低,收率降低
⏹析出温度的影响
⏹析出期为转化反应的剧烈期
⏹析出期温差太小,为1℃,说明反应不剧烈,放热小,不完全
⏹温差太大,为5℃,则反应放热太多,反应太剧烈,热量不能很快传递出去,加速副反应发生,严重时会引起烧料
⏹最佳温差2.5℃,析出温度不能高于59℃
⏹如遇突然停电,应选关蒸汽,后关搅拌
⏹来电后,先开搅拌,后开蒸汽,缓慢升温
6、粗品维生素C的精制
粗维生素C(折纯):
蒸馏水:
活性炭:
乙醇=1:
1.1:
0.06:
粗品(85%)真空干燥(50-55℃,20-30min)
除去挥发性杂质(盐酸、丙酮)
投入热水(68-70℃)中溶解
加入活性炭搅拌5-10min
保温压滤
结晶罐中降温至45-50℃
加入晶种,缓慢冷却至-2℃,结晶
晶体离心甩滤,冰乙醇洗涤
甩滤,低温干燥(43-45℃,1.5h)
得精制维生素C(℃)收率91%
总收率60%(对D-山梨醇计)
二、两步发酵法生产维生素C的工艺原理及过程
(一)、D-山梨醇的制备
(二)、2-酮基-L-古龙酸的制备
1、工艺原理:
微生物氧化法
2、工艺过程
菌种活化、分离、混合培养
移入三角瓶种液培养基,29-33℃振荡培养24h,
产酸量在6-9mg/mL,pH降至7以下,镜检正常无杂菌
一级种子罐加料
控温29-30℃,压强0.05MPa,pH6.7-7.0
二级种子罐培养,
发酵终点:
温度31-33℃,pH7.2,残糖量<
0.8mg/mL
两步发酵收率78.5%
⏹提取部分
一次交换
盐酸酸化,调菌体蛋白等电点,沉降4h以上
上清液以2-3m3/h的流速压入阳离子交换柱
当流出液pH为3.5时,收集交换液,控制pH
交换完,纯水冲柱
加热过滤
合并流出液和洗液
调pH至蛋白等电点
加热至70℃,加0.3%活性炭
升温至90-95℃,保温10-15min,使蛋白凝结
停止搅拌,快速冷却,高速离心
二次交换
上清液打入二次交换柱
洗脱,至流出液pH=1.5时,收集交换液
控制pH1.5-1.7之间。
交换完毕,洗柱
减压浓缩
二次交换液进行一级浓缩
控制真空度、内温,至浓缩液的相对密度达1.2
出料
同样条件二次浓缩,至尽量干
加少量乙醇,冷却结晶
甩滤,冰乙醇洗涤
得2-酮基-L-古龙酸(℃)
收率80%
3、反应条件及影响因素
⏹山梨糖的影响
山梨糖初浓度过高,将抑制菌体生长,使发酵收率降低
从生产角度考虑,保证尽可能高的酸度,需山梨糖初浓度越高越好
较适宜为80mg/mL
采用滴加或待菌体生长正常后一次性补加的方法,来提高产物的浓度。
⏹溶解氧浓度的影响
溶解氧浓度影响好氧菌的活性
产酸前期应处于高溶氧浓度
产酸中期,溶氧浓度为3.5-6.0mg/mL
产酸后期,耗氧量减少。
⏹pH的影响
pH过低(<
6.4)不利于发酵
控制pH6.7-7.9
4、注意事项及“三废”处理
⏹调好等电点是凝聚菌体蛋白的重要因素
⏹树脂再生直接影响2-酮基-L-古龙酸的提取,其标准为进出酸差在1%以下,无Cl-
⏹浓缩时,温度控制在45℃左右较好,以防止跑料和炭化
⏹三废处理。
母液回收、浓缩、结晶甩滤,提高收率
废盐酸回收后可再用于第一次交换
(三)粗维生素C的制备
1、酸转化
2-酮基-L-古龙酸:
38%盐酸:
丙酮=1:
0.3
⏹先将丙酮和一半古龙酸加入转化罐,搅拌
⏹再加入盐酸和余下的古龙酸
⏹蒸汽加热,升温至30-38℃,
⏹关闭蒸汽,自然升温至52-54℃,保温5h
⏹达到反应高潮,保持温度50-52℃,至总反应时间20h,
⏹冷却过滤、冷乙醇洗涤,
⏹得维生素C粗品,收率88%
⏹盐酸浓度的影响
若盐酸浓度偏低,则转化不完全,收率低
若盐酸浓度偏高,则分解成许多杂质,使反应物颜色较深
⏹丙酮的影响
酸性条件下,产物容易分解为糠醛,进一步聚合成水和醇不溶的糠醛树脂。
加入丙酮可以溶解糠醛,降低其活性而阻止其聚合
(4)工艺过程
⏹酯化
加入甲醇、浓硫酸和干燥的古龙酸
搅拌加热,升温至66-68℃,
反应4h左右即为酯化终点
冷却,加入碳酸氢钠
升温至66℃左右,回流10h后,即为转化终点
冷却至0℃,离心分离,得维生素C钠盐
母液回收
⏹酸化
将维C钠盐和一母干品、甲醇加入罐中,搅拌
硫酸调反应液pH为2.2-2.4
在40℃左右保温1.5h
冷却,离心分离,弃去硫酸钠
加少量活性炭,冷却压滤
真空减压浓缩,蒸出甲醇
浓缩液冷却结晶,离心分离
2、改进后的转化工艺
⏹旧工艺的缺点
带入大量钠离子,影响维生素C的质量
转化后母液中产生大量硫酸钠,严重影响母液套用及成品质量
劳动生产强度大
⏹碱转化的新工艺
有机胺代替碳酸氢钠
工艺原理
工艺过程
将2-酮基-L-古龙酸甲酯加入到甲醇中
搅拌、升温、回流、溶解
在惰性气体中滴加胺,回流、搅拌
浓缩、蒸馏水溶解油状物
有机溶媒提取、分离
有机层用硫酸钠干燥后,回收套用
水层经浓缩、结晶得维生素C晶体
优点
提高产品质量和收率
有机溶剂回收套用率高
反应条件、温度要求不高
大量使用液体投料,有利于自动化控制
缺点:
反应在惰性气体(氮气、氩气)保护下进行
⏹酸转化新工艺
将古龙酸钠盐加到乙醇和丙酮的混合溶液中
室温下搅拌,通入氢气
60℃反应,析出氯化钠晶体
过滤,乙醇和丙酮的混合
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- 维生素 生产工艺