原位杂交原理及具体操作Word文档下载推荐.docx
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非同位素标记物中目前最常用的有生物素、地高辛和荧光素三种。
探针的种类按核酸性质不同又可分为DNA探针、cDNA探针、cRNA探针和合成寡核苷酸探针。
cDNA探针又可分为双链cDNA探针和单链cDNA探针。
原位杂交又可分为菌落原位杂交和组织原位杂交。
菌落原位杂交(Colonyinsituhybridization) 菌落原位杂交是将细菌从培养平板转移到硝酸纤维素滤膜上,然后将滤膜上的菌落裂菌以释出DNA。
将NDA烘干固定于膜上与32P标记的探针杂交,放射自显影检测菌落杂交信号,并与平板上的菌落对位。
组织原位杂交(Tissueinsituhybridization) 组织原位杂交简称原位杂交,指组织或细胞的原位杂交,它与菌落的原位杂交不同。
菌落原位杂交需裂解细菌释出DNA,然后进行杂交。
而原位杂交是经适当处理后,使细胞通透性增加,让探针进入细胞内与DNA或RNA杂交。
(一)探针的选择根据不同的杂交实验要求,应选择不同的核酸探针。
在大多数情况下,可以选择克隆的DNA或cDNA双链探针。
但是在有些情况下,必须选用其它类型的探针如寡核苷酸探针和RNA探针。
例如,在检测靶序列上的单个碱基改变时应选用寡核苷酸探针,在检测单链靶序列时应选用与其互补的DNA单链探针(通过克隆人M13噬菌体DNA获得)或RNA探针,寡核苷酸探针也可。
长的双链DNA探针特异性较强,适宜检测复杂的靶核苷酸序列和病原体,但不适宜于组织原位杂交,因为它不易透过细胞膜进入胞内或核内。
在这种情况下,寡核苷酸探针和短的PCR标记探针(80~150bp)具有较大的优越性。
在选用探针时经常会受到可利用探针种类的限制。
如在建立DNA文库时,手头没有筛选特定基因的克隆探针,这时就可用寡核苷酸探针来代替。
但必须首先纯化该基因的编码蛋白,并测定6个以上的末端氨基酸序列,通过反推的核苷酸序列合成一套寡核苷酸探针。
如果已有其它动物的同种基因克隆,因为人类和动物间在同一基因的核苷酸顺序上存在较高的同源性,因此可利用已鉴定的动物基因作探针来筛选人类基因克隆。
对于基因核苷酸序列背景清楚而无法获得克隆探针时,可采用PCR方法扩增某段基因序列,并克隆人合适的质粒载体中,即可得到自己的探针。
这种方法十分简便,无论基因组DNA探针还是cDNA探针都可以容易地获得,而且,可以建立PCR的基因检测方法,与探针杂交方法可作对比,可谓一举两得。
(二)探针的标记方法在选择探针类型的同时,还需要选择标记方法。
探针的标记方法很多,选择什么标记方法主要视个人的习惯和可利用条件而定。
但在选择标记方法时,还应考虑实验的要求,如灵敏度和显示方法等。
一般认为放射性探针比非放射性探针的灵敏度高。
放射性探针的实际灵敏度不依赖于所采用的标记方法,如随机引物延伸法往往得到比缺口平移法更高的比活性。
在检测单拷贝基因序列时,应选用标记效率高、显示灵敏的探针标记方法。
在对灵敏要求不高时,可采用保存时间长的生物素探针技术和比较稳定的碱性磷酸酶显示系统。
(三)探针的浓度
总的来说,随探针浓度增加,杂交率也增加。
另外,在较窄的范围内,随探针浓度增加,敏感性增加。
依我们的经验,要获得较满意的敏感性,膜杂交中32P标记探针与非放射性标记探针的用量分别为5~10ng/ml和25~1000ng/ml,而原位杂交中,无论应用何种标记探针,其用量均为~μg/ml。
探针的任何内在物理特性均不影响其使用浓度,但受不同类型标记物的固相支持物的非特异结合特性的影响。
(四)杂交率在探针过量的条件下,杂交率主要依赖于探针长度(复杂度)和探针浓度。
(五)杂交最适温度杂交技术最重要的因素之一是选择最适的杂交反应温度。
若反应温度低于Tm10~15℃,碱基顺序高度同源的互补链可形成稳定的双链,错配对减少。
若反应温度再低(Tm-30℃),虽然互补链之间也可形成稳定的双链,但互补碱基配对减少,错配对增多、氢键结合的更弱。
如两个同源性在50%左右或更低些的DNA,调整杂交温度可使它们之间的杂交率变化10倍,因此在实验前必须首先确定杂交温度。
通常有三种温度可供试验,即最适复性温度、苛刻复性温度及非苛刻复性温度。
温度的选择及温度对杂交的影响见表18-3。
最适复性温度(Optimunmrenaturationtemperature,TOR):
Tor=Tm–25℃苛刻复性温度:
Ts=Tm–(10或15℃)非苛刻复性温度:
Tns=Tm–(30或35℃)
(六)杂交的严格性
影响杂交体稳定性的因素决定着杂交条件的严格性。
一般认为在低于杂交体(七)杂交反应时间
在条件都得到满足的情况下,杂交的成败就取决于保温时间。
时间短了,杂交反应不完成;
时间长了也无益,会引起非特异结合增多。
一般杂交反应要进行20h左右。
1966年Britten和Kohne推荐用Cot=值来计算杂交反应时间。
Cot值实际上是杂交液中单链起始浓度(Co)和反应时间(t)的乘积。
实验表明Cot=100时,杂交反应基本完成。
Cot=0,基本上没有杂交。
例如在液相杂交中未标记的DNA400μg/ml(按单股DNA每微克紫外吸收值为计算,总的吸收值为),如果反应时间为21h,那么对于未标记的DNA来说,Cot=21=,杂交完成了。
对标记DNA(浓度为μg/ml)来说Cot值为,这就充分排除了标记DNA的自我复性。
Tm值25℃时杂交最佳,所以首先要根据公式(4)计算杂交体Tm值。
由此式可见,通过调节盐浓度、甲酰胺浓度和杂交温度来控制所需的严格性。
(八)杂交促进剂惰性多聚体可用来促进250个碱基以上的探针的杂交率。
对单链探针可增加3倍,而对双链探针、随机剪切或随机引物标记的探针可增加高达100倍。
而短探针不需用促进剂,因其复杂度低和分子量小,短探针本身的杂交率就高。
硫酸葡聚糖是一种广泛用于较长双链探针杂交的促进剂。
这是一种多聚胺,平均分子量为500000。
另一种常见的促进剂是聚乙二醇(PEG),PEG分子量小(6000~8000)、粘度低、价格低廉,但它不能完成取代硫酸葡聚糖。
在某些条件下5%~10%硫酸葡聚糖效果较好,若用5%~10%PEG则可产生很高的本底。
因此,使用促进剂时有必要优化条件。
另一种多聚体促进剂是聚丙烯酸,用其钠盐,浓度为2%~4%。
与硫酸葡聚糖相比,其优点是价格低廉,粘度低(MW=90000)。
小分子化学试剂酚和硫氰酸胍也能促进杂交,它们可能是通过增加水的疏水性和降低双链和单链DNA间的能量差异而发挥作用。
酚作为杂交促进剂,只能在低DNA浓度的液相杂交中观察到,该方法曾被称为酚乳化复性技术,该法不能用于固相杂交,因酚可引起核酸与膜的非特异吸附作用,即使在液相杂交中的应用也是有限的。
而硫氰酸胍可通过降低双链DNA的Tm值而起作用。
此外,该分子还可以促进RNA的杂交,有裂解细胞而抑制RNase的作用。
总之,硫酸葡聚糖和聚乙二醇因能用于固相杂交是目前最常用的杂交促进剂。
(七)杂交反应时间
Cot=0,基本上没有杂交。
例如在液相杂交中未标记的DNA400μg/ml(按单股DNA每微克紫外吸收值为计算,总的吸收值为),如果反应时间为21h,那么对于未标记的DNA来说,Cot=21=,杂交完成了。
(八)杂交促进剂惰性多聚体可用来促进250个碱基以上的探针的杂交率。
三、主要器材医用微波炉,恒温水浴箱、湿盒、PNP笔等。
四、试剂
(二)试剂:
●L的醋酸--L醋酸酐:
三乙醇胺
氯化钠5g
浓盐酸4ml
醋酸酐(用前加);
●20×
SSC():
氯化钠
枸橼酸钠
双蒸水定容至1L;
●100×
Denhardt‘s:
Ficoll1g
PVP1g
BSA1g
ddH2O定容至50ml;
●杂交液:
(50ml)用量终浓度
100%去离子甲酰胺25ml50%
100%葡聚糖硫酸脂5mg10%
100×
Denhard‘s1
1Mtris-HCL()10Mm
5MNaCl3ml
EDTA()1mM
10mg/ml变性鱼精DNA100ug/ml
ddH2O定容至25ml
●甘氨酸/PBS:
甘氨酸
Na2HPO4
NaH2PO4
NaCl
溶于800mlddH2O,定容至1000ml,高压,室温储存;
●TSM1(1000ml):
1MTris-HCL()100ml
5MNaCl20ml
1MMgCl210ml
ddH2O定容至1000ml;
●TSM2(1
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