实时荧光定量PCR数据分析及常见问题分析PPT资料.pptx
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将样本稀释后进行扩增。
(抑制物的影响可通过稀释样本消除)二、常见问题分析pPCR抑制物l黑色素l多糖类l血红蛋白l尿素l其他l乙醇l蛋白酶Kl胍盐l苯酚二、常见问题分析p血液中PCR抑制物的作用机制及对策抑制物抑制物作用原理作用原理对策策肝素可结合于DNA和RNA上;
对反转录酶和聚合酶有抑制作用。
肝素酶或氯化锂血红蛋白含有铁,释放铁离子至PCR混合物,干扰DNA合成。
1)DNA-琼浆糖凝胶珠的相互混合;
2)加入0.6%(wt/vol)的BSA(牛血清白蛋白);
3)NaOH处理。
乳铁蛋白含有铁,释放铁离子至PCR混合物,干扰DNA合成。
同上免疫球蛋白IgG与单链DNA相互作用同上亚铁血红素与DNA、RNA结合,后续的提取过程中不能被去除;
抑制聚合酶活性。
加BSA,结合亚铁血红素二、常见问题分析p检查样本质量用分光光度计测量样本260/280比值DNA纯度:
OD260/OD280=1.8RNA纯度:
OD260/OD280=2.0二、常见问题分析2、自动基线有问题二、常见问题分析p手动设置基线点击右键,选择BaselineThreshold二、常见问题分析p手动设置基线将BaselineEnd设置为“扩增信号出现的前一个循环”即,原始为26,将其设置为20,点击OK二、常见问题分析p手动设置基线设置完成后问题曲线恢复正常二、常见问题分析3、重复性1个样本4个复孔重复性好二、常见问题分析3、重复性1个样本4个复孔重复性差二、常见问题分析p造成重复性差的原因基线、阈值的设置加样误差(操作?
移液器?
)没有将试剂和样本充分混匀低拷贝的样本泊松分布没有使用ROX校准(ABI7500)二、常见问题分析p基线、阈值的设置根据曲线的具体情况进行设置:
阈值:
大部分曲线荧光强度/20基线:
开始2/3(根据仪器和试剂)结束扩增信号出现的前一个循环如果基线、阈值设置无问题,则是其它原因造成重复性差。
二、常见问题分析p加样误差(操作?
)p没有将试剂和样本充分混匀有时候在制备PCR反应混合液时(包括Goldstar/PCRMix反应液、引物探针、样本、水),在分装入反应板(管)前没有充分混匀。
结果加入到每个孔中的试剂成分就有所不同。
在分装反应混合液前,要将其充分混匀(振荡、吹打)离心。
同时上机之前,要将PCR反应板(管)离心,使所有液体都在反应管底部。
二、常见问题分析p低拷贝的样本泊松分布泊松分布:
是一种统计与概率学里常见到的离散机率分布(discreteprobabilitydistribution)。
在30ul中有9个模板,每个反应管均匀的分配到3个模板的几率有多高?
如果30ul中有9000个模板呢,又会怎么样?
二、常见问题分析pROX校准:
参比荧光(ABI7500)二、常见问题分析pROX设置ABI7500仪器软件自动进行ROX校准。
ROX校准为可选步骤,如果使用的PCR试剂没有添加ROX参比荧光,或者ROX添加浓度不适合,请将ROX校准关闭(None)。
二、常见问题分析4、“可疑的”扩增曲线(以ABI7500为例)由于PCR扩增形成的真正的扩增曲线通常很容易确认。
有特征的形状:
首先有背景信号(基线期),然后是三个增长阶段(指数增长期、线性增长期和平台期)二、常见问题分析p指数增长期内扩增曲线具有高度重复性二、常见问题分析p是什么原因造成平台期很低呢?
可能是目标样本的浓度太低。
通常如果模板的起始浓度太低,反应体系中会形成大量的引物二聚体。
大量引物二聚体的形成使得引物很快消耗完,从而造成扩增曲线的平台期很低。
二、常见问题分析p引物和模板比例二、常见问题分析p是否可以调整引物和模板的比例?
YES。
低引物浓度会导致高Ct值(灵敏度低)。
所以对于低浓度的样本,反应体系中引物的浓度却不能太低。
二、常见问题分析p如何判断他们是否存在扩增?
首先看对数图谱,和同一反应中的其它曲线相比,这些曲线的形状不相同。
同时这些曲线没有明显的指数增长期。
最后看线性图谱。
曲线一直没有上升的趋势,提示不存在扩增。
案例:
先看对数图谱右侧的曲线形状和扩增曲线很相似,但曲线不光滑。
再看下线性图谱,可以看到曲线有一定的上升。
分析:
形成这类曲线的原因可能是模板可能是模板的质量差(PCR抑制物;
模板浓度低),也有可能是引物探针有问题。
试剂原因:
如果使用的试剂背景信号太强,荧光的增长将会很小,导致扩增曲线的指数增长期会变得很短,或者没有。
荧光信号差的试剂也会有同样的问题。
二、常见问题分析p总结对PCR原理的了解是基础,一切从原理出发。
常见问题归类:
抑制物:
稀释样本消除抑制重复性差:
基线/阈值设置、加样/混匀、泊松分布、参比荧光可疑的扩增:
综合各种图谱分析
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