实验室感染的预防与控制.doc
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实验室感染的预防与控制.doc
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实验室工作人员的安全防护和医院感染控制基本知识及基本技能培训
l安全教育与个人防护
1.安全教育
做好实验室人员的安全教育,是防止实验室感染的重要措施。
教育的内容可根据实验室人员素质及设备条件而定,并由实验室主任或高级技师负责培训。
实验室的安全教育通常包括下述内容。
1)实验室感染的原因、途径及方式;
2)意外事故,入注入、溢出等可能引起的感染,及其应采取的预防措施;
3)气溶胶污染空气引起的感染,并说明气溶胶产生的原理和物理性质,以及减少气溶胶发生的操作方法;
4)处理烈性菌的原则及方法;
5)实验室废物的危害及其处理方法;
6)实验动物的接种、管理及尸体处理原则;
7)实验室的合理设计;
8)实验室事故的应急措施;
9)有害化学试剂的贮存及应用;
10)放射性物质的危害及使用原则;
11)防火措施;
12)防护服、护目镜、面罩等用品的使用方法及原则;
13)生物安全柜的使用范围及方法;
14)压力灭菌器、干燥箱的应用及灭菌效果监测;
15)离心机的使用方法及事故处理;
16)实验室的空气消毒方法及其效果监测;
17)化学消毒剂的性质及其应用范围;
18)其他保证安全的项目。
2.个人防护个人防护服(工作服)对工作在实验室里的工作人员是必穿的。
工作服内不可放食品及个人用品,若接触传染病病人、传染性标本、特种化学品等众多微生物检验中必须穿隔离衣、戴口罩,接触传染性标本等,应使用一次性手套。
因此,个人防护服必须大小合体而易穿。
实验衣保护人体,不能穿着实验衣到室外,离开工作区以前必须脱去实验衣。
在检测传染性标本时必须戴手套,以保护人体不受感染,大小也必须适宜,实验人员养成不戴手套的习惯是危险的。
戴手套以防明显的伤害,必须不认为是多余的。
对所有人员在全部工作过程中均是十分重要的。
在检测工作程序中,应对用或不用手套接触一部仪器或一片纸都应规定。
所有人都应遵守,因为实验室工作涉及到许多人在不同时间做不同的工作。
如某些人员用血液污染的手套操作仪器,而后来又有人未戴手套而处理这台仪器,就会造成传染。
工作程序可能是复杂的,在短时间内从操作仪器、书写报告和打电话,工作人员必须想到全体人员,注意保持全体预防原则。
完成工作后要脱手套、洗手,手套既不能洗也不能再用,必须消毒处理。
如果血液或液体可能漏溅到粘膜时,必须戴口罩、眼镜或面罩。
在化学物漏溅事故中,无论是否接触眼镜,而保护眼睛是无疑的。
戴眼镜的人应注意在工作区避免所有操作接触眼镜。
(七)实验室污染事故及其处理
微生物实验室内由于工作人员不慎,或技术不熟练而发生的一些污染事故,必须及时采取应急措施,以免病原微生物蔓延而造成传染病流行。
下面简要介绍某些常见的事故及其处理原则。
1.培养物渗漏或容器破损及其处理
盛有传染性标本的容器渗漏,或溅落在工作台上,或污染地面时,应以0.5%次氯酸钠或过氧乙酸浸泡的布覆盖至少1小时,再用擦布擦去渗漏物,并将擦布放在污染物容器内压力灭菌。
如果手和脚被微生物污染,可用碘伏洗涤消毒;受污染的工作服应立即更换。
假如发生大量烈性传染病的致病菌污染,除采取以上应急措施外,必须立即封闭现场,并报主管防疫部门,请专职防疫人员参加研讨和采取相应的处理方法。
若发生盛有培养物的器皿破碎,要用消毒液浸泡的布覆盖,至少半小时后才能将破碎物和用过的布放在容器中压力消毒。
然后,用消毒液浸泡的布擦洗污染的台面或地面,擦布使用后也必须压力消毒。
做上述处理者要戴手套。
2.事故性刺伤、划伤或擦伤及其处理
经常使用注射器做实验动物接种等操作,可能无意中刺伤皮肤,造成有传染性液体的事故性注入。
尤其对于毒性较强的病原菌,如炭疽杆菌、鼠疫耶尔森氏菌和乙型肝炎病毒等,可引起严重的实验室感染。
一旦发生这样的意外,必须立即报告有关部门,分解不同病原体采取相应的应急措施,包括预防接种和抗生素治疗等。
类似的事故必须予以较详细的登记。
其他事故,如被刀剪或破碎玻璃等划伤或刺伤时,均应先清洗伤口,并给予必要的预防注射和相应的抗生素治疗。
3.误服微生物悬液的处理
因实验操作或使用口吸吸管而误服微生物悬液并引起感染者曾有过许多报道,对于误服者必须立即用含漱、洗胃和催吐等方式处理,严重者应送往急救室,根据摄入的病原体,采取必要的预防及治疗措施,并做好事故登记。
若悬液溅入眼内,应先以生理盐水冲洗,然后每隔1小时以抗生素眼药水滴眼,再根据具体情况,决定有无必要做针对性的预防注射或给予丙种球蛋白。
4.装有病原体离心管破碎后的处理
(1)如果离心沉淀过程中发现离心破碎,应立即停机,并于30分钟后打开。
假如停机后发现离心管破碎,要重新盖好盖子,30分钟后打开;
(2)戴上厚橡皮手套,必要时外面再套上一层塑料手套,用镊子捡出离心碎片;
(3)全部碎管和套管等应放入无腐蚀性的消毒液中浸泡24小时,或采用压力灭菌;
(4)离心机转筒应采用无腐蚀性的消毒液擦拭干净,擦布亦需经压力灭菌。
5.气溶胶污染室内空气的处理
实验室内因操作不慎,含有传染性液体大量喷出而形成气溶胶并污染室内空气时,室内所以人员应马上撤离污染区域,并应报告主管部门。
至少在1小时内任何人员均不能进入污染区。
待气溶胶排出和较重的传染性微粒沉淀下来,即1小时后再在安全员的监督下进行消毒。
遭气溶胶感染的人员应做相应的预防注射和抗生素等治疗。
(八)微生物实验室人员的保健
对临床实验室的工作人员要有详细的病史记录,包括所有职业病、外伤和一般疾病的记录,并定期进行健康检查,做各种预防接种和结核菌素试验等。
对从事麻疹、风疹、鼠疫和狂犬病病原体处理的实验室人员均需做相应的预防接种。
孕妇不适宜在病毒室工作,因为怀孕期间较易感染某些病毒性疾病,且易造成流产。
孕妇同样也不适宜在大剂量放射性实验室工作,否则容易发生流产、死胎或胎儿畸形。
必须牢记,预防接种不能取代合格的微生物实验操作和安全防护措施;一旦发生感染,应首先考虑其是否为实验室感染。
保健科医生还应对实验室人员进行以下各项定期检查。
1.乙型肝炎病毒的血清学试验:
尤其是新来的工作人员均必须做乙肝病毒的血清学检查。
2.结核菌素试验:
新来的工作人员若为阴性者,不得参加处理结核标本。
要给阴性反应者接种卡介苗,经2-3个月后做结核菌素试验复查。
阳性者表示对结核杆菌具有一定的免疫力,方可参加相关的微生物检验工作。
3.霉菌血清学试验:
新进入霉菌室工作的人员,必须按常规进行霉菌,包括皮炎芽生菌、厌氧酷球孢子菌及荚膜组织胞浆菌等血清学试验。
该项试验通常应每隔半年重复一次,必要时可提前检查。
4.从事放射性免疫工作者应每隔6个月作一次血常规及血小板计数,白细胞低于3000/mm3,和血小板低于60000/mm3,应暂停与放射源接触:
经治疗恢复后再参加放射免疫工作。
5.胸部摄片:
新来的人员应进行胸部X线检查,正常者方可录用。
所有人员通常均应每隔一年复查一次;对曾患结核病者更应该根据情况做定期检查。
6.一般体格检查:
对新人员应进行工作前的例行查体,如发现X线片、血清学及皮肤试验中有阳性反应者,要根据具体情况决定不予录取或作医疗随访。
对所有工作人员应定期体检;女性需要每年做一次宫颈刮片和胸部检查。
附:
传染性非典型肺炎人体样品资源管理规范(暂行)
总则
一、为加强对传染性非典型肺炎(以下简称SARS)的科学研究工作,合理采集、运输、保藏、规范使用并保护SARS人体样品资源,实现资源共享,规范管理,防止流失,特制定本规范。
二、SARS人体样品资源是指SARS病人和疑似病人及其密切接触者的血液、血清、鼻咽拭子、口咽拭子、痰液、气管吸取液或支气管灌洗液、尿液、粪便,以及SARS死亡患者尸体的组织、器官等样品。
三、本规范适用于各级疾病预防控制、医疗等采集、使用SARS人体样品的机构,以及其他所有可能利用SARS人体样品
开展工作的机构。
四、SARS人体样品属于国家特殊生物资源,各级卫生行政主管部门和采集、使用单位负有保护SARS人体样品资源的责任和义务。
SARS人体样品用于国家开展与SARS有关的科学研究工作,禁止以任何形式买卖。
第一章采集
五、采集对象为SARS确诊病人、疑似病人及其密切接触者。
采集人员为具有执业资格的医务人员。
定点医院的医务人员负责采集住院病人(确诊和疑似病人)的样品,各级疾病预防控制机构的技术人员负责采集非住院对象(出院病人和密切接触者)的样品。
未经批准的任何单位和个人不得擅自采集SARS人体样品。
六、SARS人体样品的采集必须严格遵循知情同意的原则。
七、采集要求:
1、第一次采集住院病人的样品须在入院后24小时内进行;采集前应向病人说明采集样品的使用目的;
2、采集单位应指定专人负责样品登记、收集、管理,并认真填写《传染性非典型肺炎病人或密切接触者人体样品采集登记表》(附后);
3、装有样品的螺口塑料管均用胶布或封口膜密封,用清洁塑料袋包裹严实,外包装按照卫生部《传染性非典型肺炎实验室生物安全操作规范》有关规定执行。
4、每份样品必须标明编号及采集日期;
5、样品采集后应立即送当地疾病预防控制机构,如不能立即送交,可置于冰箱在-20℃以下短暂(24小时之内)保存;尿液样品应暂存于4℃冰箱。
八、样品采集种类和方法:
1、呼吸道样品:
包括鼻咽拭子、口咽拭子、痰液及下呼吸道样品。
鼻咽拭子:
将棉签平行于上颚插入鼻孔,保持几秒钟,吸收分泌物,拭抹双侧鼻孔。
口咽拭子:
适度用力拭抹咽后壁和扁桃体部位,应避免触及舌部。
迅速将棉签放入无菌、内装3-5ml样品运送液(其液体配制见第三章第十五条)、带垫圈的螺口塑料管中。
在靠近顶端处折断棉签杆,旋紧管盖并密封。
痰液:
让病人将痰液咳入无菌、内装4~5ml样品运送液、带垫圈的50ml螺口塑料管中。
旋紧管盖并密封。
下呼吸道样品(适用于气管插管病人):
收集气管吸取液或支气管灌洗液5-10ml放入无菌、带垫圈的50ml螺口塑料管中,立即密封。
2、血液样品:
包括血清、血凝块。
血清(包括病人急性期和恢复期血清):
采集5-10ml全血于带垫圈的螺口管中,不加抗凝剂。
待血液凝固后,分离血清,放置到-20℃以下冰箱中冷冻保存。
采集时间:
第一份血清应在入院后24小时内采集;第二份血清应在发病后10-14天采集;第三份血清应在发病后22-28天或出院当日(出院当日未采集的,应在出院后)采集。
3、粪便样品:
采集5-10g粪便放入无菌塑料瓶内。
在4℃条件下保存并及时送至有关机构。
4、尿液样品:
应在患者的急性期收集。
收集中段尿10-20ml放入无菌、带垫圈的50ml塑料管中。
在4℃条件下保存并及时送至有关机构。
5、尸检组织样品:
病人死亡后应尽早进行尸体解剖,采集肺、气管、心脏、脾、肝、脑、肾和淋巴结等重要组织和器官样品。
每采集一部位应更换、消毒采集器械。
每种组织和器官应多部位采集,每份样品应采集20-50g,淋巴结2个,分别置于50ml无菌螺口塑料管中,立即置于-70℃以下保存或冷藏送至有关机构。
九、样品采集器械要求。
1、注射器:
医用(5ml和10ml)一次性注射器。
2、棉拭子:
塑料杆棉签。
3、全血收集管:
10ml螺口塑料管(外螺旋、带密封垫圈)。
4、血清保存管:
2ml螺口塑料管(外螺旋、带密封垫圈),可耐深低温(液氮保存)。
5、粪便保存管:
50ml螺口塑料管(外螺旋、带密封垫圈),可耐深低温(液氮保存)。
6、鼻咽拭子保存管:
10ml螺口塑料管(外螺旋、带密封垫圈),可耐深低温(液氮保存)。
7、痰液保存管:
50ml螺口塑料管(外螺旋、带密封垫圈),可耐深低温(液氮保存)。
8、尿液保存管:
50ml螺口塑料管(外螺旋、带密封垫圈)。
9、尸检组织冻存管:
5
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- 实验室 感染 预防 控制