抗氧化酶(SOD、POD、CAT)活性测定方法Word格式文档下载.doc
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植物生理生化实验原理和技术.高等教育出版社,2000:
267~268。
(2)130mmol/L甲硫氨酸溶液:
取1.399gMet用磷酸缓冲液(pH7.8)定容至100ml。
网上说定容到100ML我也不懂。
拜托
(3)100μmol/LEDTA-Na2溶液:
取0.03721gEDTA-Na2用磷酸缓冲液定容至1000ml;
(4)100μM核黄素溶液:
取0.0075g核黄素用蒸馏水定容至100ml,避光保存,随用随配,并稀释10倍
(5)750μmol/L氮蓝四唑(NBT)溶液:
称取0.06133gNBT用磷酸缓冲液定容至100ml避光保存;
酶液制备:
取一定部位的植物叶片(视需要定,去叶脉)0.5g于预冷的研钵中,加2ml磷酸缓冲液在冰浴下研磨成浆,加缓冲液使终体积为10ml。
取5ml于10000r/min下离心10min,上清液即为SOD粗提液。
提取酶液时如何保存;
如果没有测完的需要放在4℃的冰箱里。
2、酶活性测定
2.显色反应取试管(要求透明度好)5支,3支为样品测定管,1支为对照管,另外1支作为空白,按表39-1加入各溶液。
混匀后将空白管置暗处,其它各管于4000lx日光灯下反应20min(要求各管受光情况一致,反应室的温度高时时间可适当缩短,温度低时时间可适当延长)。
表39-1各溶液加入量
试剂(酶)
用量(ml)
终浓度(比色时)
0.05mol/L磷酸缓冲液
130mmol/LMet溶液
750μmol/LNBT溶液
100μmol/LEDTA-Na2液
20μmol/L核黄素
酶液
蒸馏水
总体积
1.5
0.3
0.05
0.25
3.0
13mmol
75μmol
10μmol
2.0μmol
空白和对照管加缓冲液代替酶液
加核黄素时记得要快并且要避光,
SOD活性测定与计算至反应结束后,以不照光的作空白,分别测定其它各管560nm波长下的消光度值,已知SOD活性单位以抑制NBT光化还原的50%为一个酶活性单位表示。
按下式计算SOD活性:
SOD总活性=
式中SOD总活性以每克鲜重酶单位表示;
比活力单位以酶单位/mg蛋白表示;
A0—照光对照管的消光度值;
AS—样品管的消光度值;
VT—样液总体积(ml);
V1—测定时样品用量(ml);
FW—样重(g);
蛋白质浓度单位为每克鲜重含蛋白毫克数(mg/g)。
用荧光灯20w照20min可以吗不可以,
二、POD、CAT酶活性的测定
粗酶液制备同SOD。
1、过氧化物酶(POD)活性测定(愈创木酚法)
(1)试剂配制:
100mmol/L磷酸缓冲液(pH6.0):
分别取A母液(Na2HPO4)61.5ml和B母液(NaH2PO4)438.5ml混匀即为1000mlPBS(0.2M,pH6.0);
(2)反应混合液配制:
取50mlPBS(100mmM,pH6.0),加入28ul愈创木酚(2-甲氧基酚)加热搅拌溶解,冷却后加入19ul30%的H2O2,混匀后保存于冰箱中备用。
(3)样品测定:
称取1g,放入预冷研钵,加适量磷酸缓冲液研磨至匀浆以4000r/min离心15min,上清液转入100ml容量瓶,用磷酸缓冲液定容至刻度,贮于冷处备用。
取试管3支,一支取3ml反应液并加入磷酸缓冲液1ml作调零,两支取3ml反应液并加入1ml酶液,立即计时,在470nm测定,酶隔30s读书一次。
测一个样加一个,不要全部加上。
(边加样边测定,测定前等待5秒,动作要快,如果慢的话,要保证每个样品从加好样到开始记时的时间相差不大)
(4)酶活性计算:
以每minOD值变化(升高)0.01为1个酶活性单位(u)。
POD=(ΔA470×
Vt)/(W×
Vs×
0.01×
t)(u/gmin)
ΔA470:
为反应时间内吸光度的变化;
W为样品鲜重(g);
t为反应时间(min);
Vt为提取酶液总体积;
Vs为测定时取用酶液体积。
2、过氧化氢酶(CAT)活性测定
0.2mol/L磷酸缓冲液(pH7.0):
取A母液(Na2HPO4)61.0ml和B母液(NaH2PO4)39.0ml混合后至100ml。
(加1gPVP)
(2)反应液配制:
吸取5.68ml30%的H2O2(原液)稀释至1000ml,摇匀即可。
1.酶液提取:
称取新鲜小麦叶片或其它植物组织0.5g置研钵中,加入2~3ml4℃下预冷的pH7.0磷酸缓冲液和少量石英砂研磨成匀浆后,转入25ml容量瓶中,并用缓冲液冲洗研钵数次,合并冲洗液,并定容到刻度。
混合均匀将量瓶置4℃冰箱中静置10min,取上部澄清液在4000rpm下离心15min,上清液即为过氧化氢酶粗提液。
4℃下保存备用.
2.测定:
取10ml试管3支,其中2支为样品测定管,1支为空白管(加入酶液后在沸水中煮沸5-10min,冷却之后加入H2O2测定吸光值),按表40-2顺序加入试剂。
表40-2紫外吸收法测定H2O2样品液配置表
管号粗酶液(ml)pH7.8磷酸(ml)蒸馏水(ml)
S10.21.51.0
S20.21.51.0
S30.21.51.0
25℃预热后,逐管加入0.3ml0.1mol/L的H2O2,每加完一管立即记时,并迅速倒入石英比色杯中,240nm下测定吸光度,每隔1min读数1次,共测4min,待3支管全部测定完后,按下式计算酶活性。
调零用磷酸缓冲液(pH=7.8)
3.结果计算:
以1min内A240减少0.1的酶量为1个酶活单位(u)。
过氧化氢酶活性(u/g/min)=A240×
Vt/0.1×
V1×
t×
FW
式中A240=AS0-(AS1+AS2)/2
AS0—加入煮死酶液的对照管吸光值;
AS1,AS2—样品管吸光值;
Vt—粗酶提取液总体积(ml);
V1—测定用粗酶液体积(ml);
FW—样品鲜重(g);
0.1—A240每下降0.1为1个酶活单位(u);
t—加过氧化氢到最后一次读数时间(min)
五、丙二醛含量的测定
1、试剂配制:
10%TCA:
100g三氯乙酸→1L
0.6%TBA:
0.6g硫代巴比妥酸,加少量氢氧化钠(1mol/l)溶解→用10%TCA定容100ml(避光)
1mol/l氢氧化钠;
称4gNaOH用蒸馏水溶解定容100ml
3、测定步骤:
称取剪碎的试材1g,加入2ml10%TCA和少量石英砂,研磨至匀浆,再加8mlTCA进一步研磨,匀浆离心(4000r)离心10min,上清液为样品提取液。
3.
显色反应和测定
吸取离心的上清液2ml(对照加2ml蒸馏水),加入2ml0.6%TBA溶液,混匀物于沸水浴上反应15min,迅速冷却后再离心。
取上清液测定532nm、600nm和450nm波长下的消光度。
(2)
双组分分光光度法
按公式③可直接求得植物样品提取液中MDA的浓度。
用上述任一方法求得MDA的浓度,根据植物组织的重量计算测定样品中MDA的含量:
MDA(μmol/gFW)=
C2(umol/L)=6.45*(D532-D600)-0.56*D450
C2-为MDA的浓度;
D450、D532、D600分别代表450nm、532nm和600nm波长下的消光度值。
七、可溶性蛋白含量的测定(考马斯亮蓝染色法)
(1)考马斯亮蓝溶液配制:
称取0.001g考马斯亮蓝,溶于50ml90%乙醇中,加入100ml85%(W/V)的磷酸(不懂),85%是磷酸的质量分数,买回来时直接就是85%的磷酸,加入100ml就行。
再用蒸馏水定容到1L,贮放在棕色瓶中,此溶液在常温下可放置1个月。
(2)100μg/ml牛血清蛋白(BSA)标准溶液:
称取25mgBSA加水溶解后定容至100ml,再从中吸取40ml用蒸馏水定容至100ml(也可取10mgBSA定容至100ml即为100μg/ml标准BSA溶液)。
2、样品可溶性蛋白含量的测定
(1)样品可溶性蛋白含量测定:
称取鲜样0.5g,用5ml蒸馏水或磷酸缓冲液研磨提取。
吸取样品提取液1.0Ml,放入具塞试管中(每个样品设置两个重复),加入5Ml考马斯亮蓝G-250溶液,充分混合,放置2Min后在595nM下比色,记录吸光值,并通过标准曲线查得蛋白质含量。
调零管是用蒸馏水
样品中蛋白质的含量(Mg/g)=C×
VT/(V1×
FW×
1000)(2-2)
式中C:
查标准曲线值(μg);
VT:
提取液总体积(Ml);
FW:
样品鲜重(g);
V1:
测定时加样量(Ml)。
我就测这五个所以帮下我谢谢。
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- 氧化酶 SOD POD CAT 活性 测定 方法