植物营养学实验指导书.docx
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植物营养学实验指导书
《植物营养学》
实验指导书
森林资源系
2007-9-18
目录
实验室学生实验守则
实验记录及实验报告要求
实验一单盐毒害与混合盐的拮抗作用1
实验二植物根系阳离子代换量(CEC)的测定2
实验三植物根系氧化力的测定(α-萘胺法)3
实验四植物根系脱氢酶活性测定(TTC法)5
附录一7230G可见分光光度计使用说明书6
附录二实验报告内容要求及格式8
附录三常用洗液的配置与适用范围8
附录四化学药品规格和标准11
实验室学生实验守则
为了维护良好的实验教学秩序,确保人身、设备的安全,培养学生严谨求实的科学作风和爱护国家财产的优秀品质,要求每位学生必须遵守学生实验守则。
1.初次使用实验室,请仔细阅读并遵守实验室的各项规章制度。
2.实验前必须充分预习,认真阅读实验指导书,明确实验任务,弄清实验原理,拟定实验步骤,做好预习报告,并做好仪器、化玻、药品的借用工作。
班长在上课之前做好值日生安排工作(3~5人左右)。
3.使用仪器设备前,必须熟悉其性能,预习操作方法和注意事项,并在使用中严格遵守。
对一些精密仪器和化玻易耗品,请严格按照规范操作。
损坏仪器、器材按学校有关规定处理。
4.实验中应认真观察实验现象,记录实验数据。
结束实验,此记录应附在实验报告后,作为原始实验数据。
按要求认真书写实验报告。
5.实验过程中遇到故障或异常情况,应及时报告指导教师,不得擅自处理,待查明原因,经指导教师同意后方可继续实验。
发生事故应认真总结经验,吸取教训。
6.遵守实验室纪律,注意保持室内整洁、安静。
7.实验结束后,清洗化玻,整理药品并做好归还工作。
关掉仪器设备的电源开关,仪器设备桌椅工具等应恢复到实验前的状态。
值日生生协助实验室教师打扫卫生后,方可离开实验窒。
实验记录及实验报告要求
每次实验要做到课前认真预习,操作中仔细观察并如实记录有关的现象与数据,课后及时完成实验报告.
一、课前预习
课前要将实验名称,目的和要求,实验内容与原理,操作方法和步骤等简单扼要地写在记录本中,做到心中有数.
二、实验记录
实验结束后,应及时整理和总结实验结果,写出实验报告.按照实验内容可分为定性和定量两大类,实验报告的格式见附件《植物营养学》实验报告格式。
验报告中,目的和要求,原理以及操作方法部分应简单扼要的叙述,但是对于实验条件(试剂配制及仪器)和操作的关键环节必须写清楚.对于结果部分,应根据要求将一定条件下获得的结果和数据进行整理,归纳,分析和对比,并尽量总结成各种图表,如原始数据及其处理的表格,标准曲线图以及比较组与对照组结果的图表等.另外,还应针对结果进行必要的说明和分析.讨论部分可以包括:
关于方法(或操作技术)和有关项目的一些问题,如正常结果和异常现象以及思考题进行探讨,对于设计的认识,体会和建议,改进意见等.
三、实验报告
实验结束后,应及时整理和总结实验结果,写出实验报告.按照实验内容可分为定性和定量两大类,实验报告的格式(祥见附录二)
实验报告中,目的和要求,原理以及操作方法部分应简单扼要的叙述,但是对于实验条件(试剂配制及仪器)和操作的关键环节必须写清楚.对于结果部分,应根据要求将一定条件下获得的结果和数据进行整理,归纳,分析和对比,并尽量总结成各种图表,如原始数据及其处理的表格,标准曲线图以及比较组与对照组结果的图表等.另外,还应针对结果进行必要的说明和分析.讨论部分可以包括:
关于方法(或操作技术)和有关项目的一些问题,如正常结果和异常现象以及思考题进行探讨,对于设计的认识,体会和建议,改进意见等.
四、实验要求
实验报告正文,统一用A4纸,每一实验要有一个“实验报告”题头,其余按要求逐项完成,打印(可双面),但不可复制别人的实验报告,采用软件对实验内容进行比对(单个句子),如有发现实验内容一、四、六、七每个句子的文字部分雷同,视为抄袭,抄袭与被抄袭的同学该部分的成绩零分处理。
五、实验成绩:
本课程为4个实验,每实验点总分的25%。
每一实验成绩评定:
格式8%,实验目的7%,实验方法和仪器10%,实验操作方法20%,实验数据10%,结果分析30%,总结15%。
实验一单盐毒害与混合盐的拮抗作用
一、意义
单盐毒害和离子间的拮抗作用与原生质及原生质膜中的亲水胶体有关,离子价数越高,其消除单盐毒害作用所需的浓度越低。
通过利用所不知识,对单盐或混合盐溶液种类和浓度选用进行设计,并通过试验综合观察和分析,进一步了解矿质元素的相互作用。
二、原理
矿质离子特别是阳离子,对原生质理化特性和生理机能有很大影响,当某一种离子单独存在时常能破坏原生质的正常状态而发生毒害作用。
如果在单盐溶液中,加入少量其它盐类,则产生拮抗作用而可消除或缓解毒害。
三、器材与药品
1.材料准备
真叶尚未长出的台湾相思幼苗。
起苗用的盆、小锄,包装布。
2.化玻仪器
500ml烧杯6个;1L容量瓶;脱脂棉;烧杯;量筒;玻棒;洗瓶;电子天平;药匙,泡沫塑料;刀片。
3.参考化学试剂
可以参考选用以下试剂,KCl、NaCl、CaCl2、MgCl2(纯度要求:
AR级,以免其他元素会造成实验结果产生干扰),也可以参考使用其他试剂(但KCl和CaCl2为必选试剂),标签纸。
四、方法与步骤
1.第一阶段,分别查阅相关的文献资料,初步拟定试验设计方案,设置好重复和对照,形成文本上交,通过教师审查后方始进入实验第二阶段,能够结合使用正交试验设计与数理统计为佳。
2.将所选用的化学试剂配成单盐溶液和混和盐溶液2大类,每一大类各有1-5种溶液均可,视试验设计方案所需而定。
可以用以下几种单盐溶液和混和盐溶液作为参考,也可以选用其他。
参考溶液:
(1)0.12mol/LKCl溶液;
(2)0.12mol/LNaCl溶液;
(3)0.24mol/LCaCl2溶液;(4)0.24mol/LMgCl2溶液;
(5)0.12mol/LNaCl100mL+0.24mol/LCaCl21mL+0.12mol/LKCl2.2mL;
(6)0.12mol/LNaCl100mL+0.24mol/LMgCl21mL+0.12mol/LKCl2.2mL。
3.取500ml烧杯X个(X为单盐溶液和混和盐溶液总的溶液种类数),分别各自装约200ml的X种溶液,贴好标签。
3.挑选大小相等,根系生长一致的台湾相思幼苗4X株,在烧杯上用泡沬塑料+脱脂棉定植,根系脱脂棉包裹(能隐约看见侧根为度),将根系约1/3长浸入到溶液,在25-28℃,光线适宜的地方培养,需要时补足蒸馏水,以保持容器内溶液的水平一致,每隔2天观察一次,并不时地搅拌溶液,以增加溶液中的溶氧度,2~3天更换一次营养液,观察一星期左右,特别注意根的生长情况,记录幼根、幼茎的长度;并用表格表示结果。
记录时间
幼根
主根长二级侧根数二级侧根长
幼茎
幼茎幼叶
第1天
第3天
第5天
第7天
实验二植物根系阳离子代换量(CEC)的测定
一、意义
根系是植物吸收养分的重要器官,植物根系阳离子代换量(CationExchangeContent,CEC)的大小,大体上可反映根系吸收养分的强弱和多少,因此,测定根系阳离子代换量(CEC)对于了解植物吸收养分的能力与指导合理施肥具有一定的意义。
二、原理
根系中的阳离子,在稀盐酸中,能被氢离子代换出来,而根系所吸收的氢离子量与代换出来的阳离子量相等。
在洗去多余的盐酸溶液后,用中性氯化钾溶液将氢离子代换出来,以氢氧化钾溶液滴定至pH7.0,根据消耗氢氧化钾的浓度和用量,计算出阳离子代换量(每百克干根的毫摩尔数)。
三、器材与药品
1.材料准备
苗木根系。
挖根用的小锄,自封袋。
2.化玻仪器
烘干箱;土壤筛18-25号筛(0.7-1.0mm);植物试样粉碎机;250mL烧杯;尖头玻棒;漏斗;滤纸;pH计(或试纸);电子天平;1L容量瓶;洗瓶;药匙。
3.参考化学试剂
KCl(AR级);KOH;HCl;中性红;次甲基兰;乙醇;AgNO3
试剂配制
1.1mol/LKCl溶液:
称取分析纯氯化钾74.55g,溶于800mL蒸馏水中,用氢氧化钾调至溶液pH值到7.0后定容于1L容量瓶中。
2.0.01mol/LKOH溶液:
称取分析纯氢氧化钾0.561g,用蒸馏水溶解后定容至1L。
3.0.01mol/LHCl:
吸取比重1.19的浓HCl0.83mL,用蒸馏水定容至1L。
4.酸碱混合指示剂:
(1)0.1%中性红/酒精溶液:
中性红/次甲基兰0.1g+95%乙醇28ml+蒸馏水72ml。
(2)1份0.1%中性红酒精溶液与1份0.1%次甲基兰酒精溶液混合。
5.2%的AgNO3溶液:
称取2gAgNO3溶于蒸馏水中,稀释至100mL。
四、操作步骤
从田间选取具有代表性的植株若干(尽可能不要损坏根系),先用水冲洗根系,再放在筛子上置于水中轻轻振荡,至洗净为止,后再用蒸馏水冲洗数次,然后切去地上部分,置于30℃烘箱中烘干(一般烘8小时以上),将烘干根样取出磨细,过18-25号筛(0.7-1.0mm),混合均匀,贮于自封袋中备用。
称取烘干磨细的根样0.1000g,放入180-250mL烧杯中,先加几滴蒸馏水使根系湿润,避免以后操作时根浮在液面上,再加0.01mol/LHCl100mL,搅拌5分钟,待根样下沉后,将大部分盐酸连同根样倒入漏斗中过滤,然后用蒸馏水漂洗至无氯离子为止(用AgNO3检验)(一般用110-200mL蒸馏水,少量多次即可洗至无氯离子)。
再用尖头玻棒将过滤纸中心穿孔,以100mLKCl(事先调至pH7.0)逐渐将过滤纸上的根样全部洗入原烧杯中,用pH计测定根-KCl悬浮液pH值,然后加7-8滴酸碱混合指示剂,用0.01mol/LKOH滴定至兰绿色(保持半分钟不变),记下所消耗的0.01mol/LKOH毫升数,并以此计算出根系的阳离子代换量(以每100克干根的毫摩尔数表示)。
CEC(mol/100g根)=
=1.1×10-3×0.01×100
五、注意事项
1.过滤及漂洗时,溶液不超过漏斗的2/3处,并遵守“少量多次”的洗涤原则。
2.滴到终点后,以摇荡10下不变色为准,如时间过长,终点会变到原来的颜色。
实验三植物根系氧化力的测定(α-萘胺法)
一、意义
植物根系活力,是指根系整个代谢的强弱,包括呼吸作用、氧化力、酶活性、代换量等,可见植物根系活力的大小与整个植株生命活动的强度紧密相关,当植物根系的氧化力较大时,根的有氧呼吸也较旺盛,吸收氮、磷养分也较多,还可氧化土壤中有害的还原物质,从而保证根的正常代谢。
因此,测定根系的氧化力既可作为植物根系活力及其生命活动的重要指标,还可作为诊断植物生育和吸收养分的障碍因素的指标。
二、原理
植物中除叶部吸收的氧转入根部外,根部存在一条乙醇酸氧化途径,这条途径可产生过氧化氢,过氧化氢在含铁化酶(主要指过氧化氢酶)的作用下产生的氧,可将α-萘胺氧化为红色的羟基萘胺(分子式见下图)沉淀于有氧化力的根表;且根系的呼吸强度与它对α-萘胺的氧化能力呈正相关,即红色愈深,根系的氧化力愈强;反之则衰。
红色的羟基萘胺
故可根据根表面染色的深浅,粗略地估计植物根系的氧化力,当进行定量测定时,则必须进一步测定α-萘胺氧化前后浓度的变化,一般用对氨基苯磺酸和亚硝酸作显色剂,使与α-萘胺起显色反应,生成对一磺酸-α-萘胺偶氮苯,其化学反应如下:
NaNO2+HAC——HNO2+NaAC
HSO3
NH2+HNO2
HSO3
N[AC]N+2H2O
(对氨基苯磺酸)(重氮化合物)
HSO3
N[AC]N+
———HSO3
N+=N
+HAC
(-萘胺)(对-磺酸--萘胺偶氮苯)(红色偶氮染料)
三、器材与药品
1.材料准备
苗木根系(白根、黄根、黑根)。
挖根用的小锄。
2.化玻仪器
滤纸;500mL烧杯;100mL三角瓶;25mL容量瓶;2mL移液管(或刻度吸管)和洗耳球;恒温振荡器或摇床;电子天平;721分光光度计。
尖头玻棒;洗瓶;药匙。
3.参考化学试剂
α-萘胺(AR级);对氨基苯磺酸;亚硝酸钠;磷酸二氢钾;氢氧化钾;硼砂
三、试剂配制
1.100mg/Lα-萘胺标准溶液:
准确称取分析纯α-萘胺1.0000g,溶于1000mL蒸馏水中,充分溶解后从中吸取100mL稀释至1000mL,即成100mg/Lα-萘胺溶液,保存于棕色瓶中,置于低温黑暗处保存,使用前稀释至40mg/L。
2.1%对氨基苯磺酸溶液:
称1g对氨基苯磺酸溶于100mL30%的乙酸溶液中。
3.100mg/L亚硝酸钠溶液:
称取0.1g亚硝酸钠溶于1000mL蒸馏水中。
4.0.1mol/L磷酸缓冲溶液。
由0.1mol/L磷酸二氢钾,0.1mol/L氢氧化钾及蒸馏水按50:
29.54:
20.46容积比混合而成。
也可用0.1mol/L磷酸二氢钾和0.05mol/L硼砂溶液按6.32:
3.77的容积比混合而成。
此缓冲液的pH应为7.0。
四、方法
从田间选取具有代表性的植物白根、黄根、黑根各若干(注意避免伤根),除去地上部枯叶、用清水将根部泥土冲洗干净后,再用蒸馏水淋洗数次,用吸水纸将根表水分吸干后,即可按下法,分别进行定性或定量测定根系的氧化力。
(一)定性测定
取用吸水纸吸干水分的根,立即浸入大约为20mg/L的500mLα-萘胺溶液中,并用黑纸包起来,使之蔽光,浸置30-40分钟后,即在溶液中观察根表的染色程度。
一般说来,新根及白根氧化力强,染色深;黄根氧化力小,染色较浅;黑色及老根氧化力微弱,则很少显色。
(二)定量测定
将用吸水纸吸干水分的根,距根尖2cm长的一段取下,混合均匀后称取1g(或沿根的基部将根切下取混合样1g)置于100mL的三角瓶中,加40mg/Lα-萘胺溶液50mL,再加0.1mol/L磷酸缓冲液至100mL,轻轻摇动,静置10分钟,立即从此平衡溶液中准确地吸取2mL溶液放入25mL容量瓶中,即为第一次取样。
这时,根的吸附业已完毕,把此时作为零时。
紧接着塞好瓶塞,置于振荡器上,α-萘胺氧化量开始迅速上升,于25℃振荡3-6小时,再次从平衡溶液中准确吸取2mL,放入另一25mL容量瓶中,即为第二次取样,不论哪次取样,如发现溶液混浊,均须过滤。
由于α-萘胺在空气中振荡时会自动氧化,故须做空白试验。
两次取样的容量瓶中,各加入蒸馏水10mL、1%对氨基苯磺酸1mL和100mg/L亚硝酸钠1mL,充分摇动5分钟,使之显色,然后加蒸馏水定容、摇匀。
在20-60分钟内用1cm比色杯于510nm波长或50号滤光片下分别测定,得OD1、OD2,反查标准曲线,得前后两次样品α-萘胺浓度C1、C2。
将求得根的净α-萘胺氧化量,一般用鲜根1g,振荡3小时,于室温下进行,但须注明当时的温度,以便比较。
(三)标准曲线的绘制
用吸管分别加入40mg/Lα-萘胺溶液xmL于6个25mL的容量瓶中,使含量分别为0、10、20、30、40、50、60μg,加入等量的磷酸缓冲液充分摇动,然后再加入蒸馏水10mL、1%对氨基苯磺酸1mL和100mg/L亚硝酸钠1mL,充分摇动5分钟,使之显色,然后加蒸馏水定容、摇匀,在20-60分钟用1cm比色杯于510nm波长或50号滤片下分别测定各溶液的光密度,并绘制标准曲线。
五、计算
第一次取样时的α-萘胺浓度为A(是根上吸附的氧化铁氧化α-萘胺后剩余的α-萘胺浓度,亦即酶促反应前α-萘胺的起始浓度),第二次取样时的α-萘胺浓度为B(即根在酶促反应3小时后剩余的α-萘胺浓度)。
所以A-B为根的α-萘胺氧化量,C为空白试验时α-萘胺减少的浓度(即α-萘胺在振荡3小时的自身氧化量)。
其计算公式如下:
A=
×C1(ug/ml)×50
B=
×C2(ug/ml)×48
Y=
其中:
Y———α-萘胺氧化量(μg/g鲜根/小时)
t———酶促反应时间(3~6小时)
C1
C2
C
A
B
Y
白根
黄根
黑根
六、注意事项
1.为了便于比较,应选择同一品种和苗龄的不同类型的根进行比较测定。
2.选拨植株及冲洗根时,务必注意不要伤害根系及植株,以免影响活力。
进行定性测定时,最好利用整个植株,不要切除地上部分茎叶(但可清除掉一些枯叶),否则染色程度就会变浅,影响灵敏度。
如果染色太浅,可适当延长根系在α-萘胺溶液中的浸置时间。
3.由于α-萘胺在空气中振荡时会自动氧化,故须作空白试验。
实验四植物根系脱氢酶活性测定(TTC法)
一、意义
幼根或嫩壮根,呼吸作用较强,其脱氢酶的活性也较强;而老根或黑根,呼吸作用较弱,其脱氢酶的活性则亦弱,故可通过测定植物根系脱氢酶的活性了解根系的活力,并作为诊断植物生命活动和影响植物吸收养分的障碍因素的指标。
二、原理
由于脱氢酶在中性反应条件下,可将无色的三苯基氯化四氮唑(即TTC)还原为红色的三苯基甲䐶(TPF)。
其酶促反应如下:
+
Cl-+2H++2e
+HCl
(TTC,无色)(TPF,红色)
反应生成物三苯基甲䐶不会自动氧化,可在空气中用乙酸乙酯提取,提取液可于485nm波长处进行比色测定,然后查标准曲线,即可求出每克鲜根所生成的三苯基甲䐶量,从而判断根系的活力。
三、器材与药品
1.材料准备
苗木根系(白根、黄根、黑根)。
挖根用的小锄。
2.化玻仪器
50mL烧杯;50mL三角瓶;50mL容量瓶;电子天平;恒温箱;研钵;721分光光度计。
尖头玻棒;洗瓶;药匙。
3.参考化学试剂
三苯基氯化四氮唑;磷酸二氢钾;氢氧化钾;硼砂;乙酸乙酯或丙酮;连二亚硫酸钠(Na2S2O4);石英砂;硫酸;台式高速离心机。
三、试剂
1.三苯基氯化四氮唑0.4%。
2.0.1mol/L磷酸盐缓冲液
由0.1mol/L磷酸二氢钾、0.1mol/L氢氧化钠及蒸馏水按50:
29.54:
20.46的容积比混合而成,也可用0.1mol/L磷酸二氢钾和0.05mol/L硼砂溶液按6.32:
3.77的容积混合而成,此缓冲溶液的pH应为7.0。
3.1mol/L硫酸。
乙酸乙酯。
4.连二亚硫酸钠(Na2S2O4)新鲜干燥粉末。
5.标准曲线的绘制
吸取0.4%TTC溶液,稀释至100mg/L,然后用吸管分别吸取0.0、0.25、0.50、0.75、1.00、1.25、1.50和2.00mL于8支大试管中,准确地加入乙酸乙酯溶液10mL,混匀,加入极少量的连二亚硫酸钠粉末,充分振荡,使TTC还原为红色三苯基甲䐶并溶于乙酸乙酯中,以上溶液中三苯基甲䐶含量分别为0、2.5、5.0、7.5、10.0、12.5、15.0和20.0mg/L。
用1cm比色杯于485nm波长处,分别测定光密度,并绘制标准曲线。
四、方法
称取鲜根1-2g,置于试管中,注入0.4%TTC溶液和0.1mol/L磷酸缓冲液等量混合液10mL,使根全部浸入此溶液中,置于37℃恒温箱内,反应3小时后,加入1mol/L硫酸2mL,以停止酶的作用,然后取出根,擦干水分,放入研钵中,再往研钵中加入3-5mL乙酸乙酯(或丙酮)和少量石英砂进行研磨,使红色的三苯基甲䐶溶解出来,在4000r/min离心5分钟后,并小心地转入50mL容量瓶中,用乙酸乙酯(或丙酮)继续提取三苯基甲䐶至干净(无色)为止,最后加入乙酸乙酯(或丙酮)至刻度混匀,用1cm比色杯在波长485nm处进行比色测定,查标准曲线,即可求出每克鲜根所生成的三苯基甲䐶量。
五、注意事项
1.由于脱氢酶还原三苯基氮唑反应适于中性反应,故测定时需在中性缓冲液(pH=7),并在暗处进行。
2.如用乙酸乙酯提出的三苯基甲䐶量少或提取溶液的红色较浅,可改用25mL的容量瓶。
附录一7230G可见分光光度计使用说明书
7230G可见分光光度计使用说明书
一、仪器工作环境和安装
1.1部件
表4-1仪器的成套性
主机
一台
电源线
一根
使用手册
一份
10mm玻璃比色皿
1套(4个)
黑体
1只
装箱单
一份
合格证
一份
1.2工作环境淮备
1.仪器应放置在室温在5-35℃,相对湿度不大于85%的环境中工作。
2.放置仪器的工作台应平坦、牢固、结实,不应有振动或其他影响仪器正常工作的现象。
3.强烈电磁场、静电及其他电磁干扰,都可能影响仪器正常工作,放置仪器时应尽可能远离干扰源。
4.仪器放置应避开有化学腐蚀气体的地方,如硫化氢、二氧化硫、氨气等。
5.仪器应避免阳光直谢。
1.3仪器性能检查
1.接通电源,让仪器预热至少二十分钟,使仪器进入热稳定工作状态。
有时仪器会因运输、存储环境因素而受潮产生诸如读数波动等不稳定现象,此时,请保持仪器周围有良好的通风环境,并连续开机数小时,直到读数稳定为止。
2.仪器接通电源后,即进入自检状态,首先显示"UNICO"数秒后显示为:
0.xxxA(或-0.xxxA).即自检完毕。
二、仪器操作程序
WFJ7200型分光光度计有透射比、吸光度、已知标准样品的浓度或斜率测量样品浓度等测量方式,你可根据需要选择合适的测量方式。
在开机前,需先确认仪器样品室内是否有物品挡在光路上,光路上有阻挡物将影响仪器自检甚至造成仪器故障。
2.1基本操作
无论你选用何种测量方式,都必须遵循以下基本操作步骤:
1.连接仪器电源线,确保仪器供电电源有良好的接地性能。
2.接通电源,使仪器预热20分钟。
(不包括仪器自检时间)
3.用
透射比(T),吸光度(A),己知标准样品浓度值方式(c)和已知标准样品斜率(F)方式,
4.用波长选择旋钮设置您所需的分析波长。
5.将参比样品溶液和被测样品溶液分别倒入比色皿中,打开样品室盖,将盛有溶液的比色皿分别插入比色皿槽中,盖上样品室盖。
一般情况下,参比样品放在第一槽位中。
仪器所附的比色皿,其透射比是经过配对测试的,未经配对处理的比色皿将影响样品的测试精度。
比色皿透光部分表面不能有指印、溶液痕迹,被测溶液中不能有气泡、悬浮物,否则也将形响样品测试的精度。
6.将0%T校具(黑体)置入光路中,在T方式下按"0%T”键,此时显示器显示"000.0”
7.将参比样品推(拉)入光路中,按“OA/100%T”键调OA/100%T,此时显示器显示的“BLA”直至显示“100.0”%T或“0.000”A为止。
8.当仪器显示器显示出“100.0”%T或“0.000”A后,将被测样品推(拉)入光路,这时,您便可从显示器上得到被测样品的透射比或吸光度值。
2.2样品浓度的测量方法
2.2.1已知标准样品浓度值的测量方法
1.用
2.用波长旋钮设置样品的分析波长,根据分析规程,每当分析波长改变时,必须重新调整0A/100%和0%T。
3.将您的参比样品溶液,标准样品溶液和被测样品溶液分别倒入比色皿中,打开样品室盖,将盛有溶液的比色皿分别插入比色皿槽中,盖上样品室盖。
一般隋况下,参比样品放在第一个槽位中。
仪器所附的比色皿,其透射比是经
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- 关 键 词:
- 植物 营养学 实验 指导书