药理学实验指导.docx

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药理学实验指导

药理学实验指导

江苏建康职业学院

2010年1月

目录

1、实验一药理学实验的基本知识与技术…………………………………………………1

2、实验二药物剂量对药物作用的影响……………………………………………………5

3、实验三药物剂型对药物作用的影响……………………………………………………6

4、实验四肾功能损害对药物作用影响……………………………………………………7

5、实验五给药途径对药物作用的影响……………………………………………………8

6、实验六溶媒对乳糖酸红霉素溶解度的影响……………………………………………8

7、实验七药物血浆半衰期的测定…………………………………………………………9

8、实验八传出神经系统药物对血压的影响………………………………………………11

9、实验九传出神经药物对肠肌的作用……………………………………………………12

10、实验十去甲肾上腺素的缩血管作用……………………………………………………14

11、实验十一有机磷酸酯类中毒及解救……………………………………………………14

12、实验十二普鲁卡因的传导麻醉作用……………………………………………………15

13、实验十三苯巴比妥的抗惊厥作用………………………………………………………16

14、实验十四氯丙嗪的镇静和降温作用……………………………………………………17

15、实验十五药物的镇痛作用………………………………………………………………18

16、实验十六尼可刹米对抗吗啡中毒的呼吸抑制…………………………………………19

17、实验十七药物的抗心律失常作用………………………………………………………20

18、实验十八普萘洛尔的抗缺氧作用………………………………………………………20

19、实验十九理化因素及药物对离体蛙心的影响…………………………………………21

20、实验二十枸椽酸钠的抗凝血作用………………………………………………………23

21、实验二十一糖皮质激素对细胞膜的保护作用

22、实验二十二链霉素毒性反应及钙剂的对抗作用………………………………………23

23、实验二十三磺胺类药物的溶解性……………………………………………………24

24、常用仪器简介………………………………………………………………………………25

25、附录一：

几种常用注射麻醉剂的参考剂量………………………………………………31

26、附录二：

常用生理溶液的成分和配制……………………………………………………32

27、附录三：

常用实验动物的一些生理常数…………………………………………………33

28附录四：

动物与人体的每千克体重剂量折算系数表………………………………………33

实验一药理学实验的基本知识与技术

一、实验的目的

药理学实验是培养学生了解药理学实验方法，掌握药理学实验操作，提高专业素质的重要手段，是药理学教学的重要组成部分。

通过实验，训练学生动手操作的能力，比较和分析客观事物的能力，独立思考和解决问题的能力。

同时，通过实验培养学生对科学工作的严谨态度、严密的方法和实事求是的工作作风，为今后的工作实践打下坚实的基础。

二、实验要求

1、实验前

认真仔细地阅读《药理学实验指导》，了解实验的目的，理解实验原理，熟悉实验方法和操作步骤；结合实验内容，复习与本次实验有关的理论知识；对于使用的仪器要了解其基本结构和功能、操作方法和使用注意事项。

2、实验时

做好小组内部分工，各尽其责，做好原始记录，注意培养自己的动手能力与独立解决问题的能力，正确调试仪器，严格按操作程序进行实验。

3、实验后

认真整理实验原始记录，对实验结果进行分析讨论，书写实验报告。

三、实验结果的整理和实验报告的书写

1、实验结果的处理

实验结束后应及时地对原始记录进行整理和分析，整理时需要科学认真的态度，无论实验是预期的结果或意外，都要实事求是地整理表达。

药理实验结果有测量资料（如血压值、心率值、体温值等）和记数资料（如死亡率、阳性反应率等）两大类。

我们在记录和整理这些资料时均应以正确的单位和数值定量表示。

一般来说，应尽量将获得的资料组成图或表，使结果有重点地表达出来，以便分析、比较。

做表格时，一般将观察项目列在表内左侧，由上而下逐项填写，实验中的变化过程则由左向右按顺序填写。

绘图时，应在纵轴和横轴上列出数值刻度，标明单位，并在图下方注明实验条件。

如果不是连续性变化，也可用直方图表示。

总之，图表的制作原则应体现直观性。

有关图表的详细制作要求可参考有关文献。

2、实验报告的书写

书写实验报告是对实验的总结，是培养学生文字表达能力和综合分析能力的重要训练方式。

完整的实验报告应包括以下内容：

（1）实验题目一般将实验题目放在实验报告纸的第一行正中并在右边注明实验时间、条件等。

（2）实验目的实验目的相当于论文的引言，主要说明本实验要解决的问题及其意义。

尽可能简洁、清楚。

（3）实验材料包括实验仪器、试剂与药品、实验动物等内容。

（4）实验方法是对实验动物的分组、实验条件、给药方法、操作步骤及观察指标等简要地表述。

（5）实验结果实验结果的记录应是经过整理的数据或图表，与实验结果有关的重要情况也应加以说明。

（6）讨论讨论是根据已知的理论知识针对实验中观察到的现象与结果进行解释和分析，逐步推出结论。

讨论应避免离开实验结果去空谈理论。

如果属于非预期的实验结果，则应分析可能的原因。

（7）结论结论是对实验结果进行分析后所得到的概括性判断。

结论应与实验目的相呼应，文字要精炼。

本次实验中未能得到充分证据的理论分析，不应写入结论。

四、实验动物

1、实验动物的选择

在药理学实验中，药物的作用大多数是通过动物用药后的反应而表现出来的。

一般根据实验的需要选用动物，最常用的有小白鼠、大白鼠、家兔、豚鼠、青蛙、狗、猫等。

选用动物的原则是：

（1）该种动物的某一系统或器官能反映实验药物的选择作用，达到实验目的。

例如青蛙和蟾蜍的心脏，在离体情况下仍能有节奏的搏动，所以常用来研究药物对心脏的作用；豚鼠因对组织胺敏感，易于致敏，所以在对平喘药和抗组织胺药的研究中常用。

（2）动物来源充分，符合精简节约的原则。

例如小白鼠是实验最常用的一种动物，因其便于大量繁殖，所以适合于需要大量动物的实验，如药物筛选、半数致死量测定等的研究。

（3）操作方便，有利于实验进行。

例如家兔在实验中应用也很多，易得到且易驯服，便于静脉注射和灌胃，常用于观察药物对中枢神经系统、心血管系统的作用，由于家兔体温变化灵敏，也常用于体温实验、热原检查等。

（4）选用的实验动物需身体健康，除特殊实验规定外，均应发育成熟。

2、实验动物的性别鉴定

兔将兔呈仰卧位，自尾部向前观察，肛门位于尾基部之前。

肛门前有泄殖孔，成年雄兔的泄殖孔附近可见阴囊。

雌兔肛门前有两个相距很近的孔，分别为尿道和阴道孔。

此外，雌兔腹部有5对乳头。

小鼠和大鼠雄性阴囊明显可见，性器官与肛门距离较远，二者间有毛。

雌性者性器官与肛门距离近，界限不清，腹部有乳头。

蟾蜍用拇指及食指挟皮肤提起时，雄性通常会发出叫声，而雌性不会叫。

另外，前趾蹼上棕黑色小突起（常分布在拇指和食指蹼上）有助于辨认，如有则为雄。

另提起动物时，前肢作环抱状则为雄性，前肢呈伸直状则为雌性。

3、实验动物的编号

犬、兔等较大动物可用特制号码牌固定于耳上。

小白鼠、大白鼠及白色家兔等可用黄色苦味酸涂于毛上标号，如给小鼠标记1-10号，可将小鼠背部的肩、腰、臀部按左、中、右分化为九个区，从右到左标记1-9号，第10号不作标记。

4、实验动物的捉拿方法

蛙和蟾蜍通常以左手握持动物，以中指和食指夹住左前肢，以拇指压住右前肢，将两下肢拉直固定于无名指和小指之间。

毁脑和脊髓时，左手食指和中指夹持动物的头部。

右手将探针经枕骨大孔向前刺入颅腔摆动探针毁脑组织。

毁脑后，退回探针向后刺入椎骨破坏脊髓。

小白鼠捉拿方法有两种：

一种是用右手提起尾部，放在鼠笼盖或其它粗糙面上，向后上方轻拉，此时小鼠前肢紧紧抓住粗糙表面迅速用左手拇指和食指捏住小鼠颈背部皮肤并以小指和手掌尺侧夹住其尾根部固定于手中。

另一种抓法是只用左手，先用食指和拇指抓住尾部，再用手掌尺侧及小指夹住尾根，然后用拇指及食指捏住其颈部皮肤。

前一方法简单易学，后一方法稍难，但便于快速捉拿给药。

大鼠捉拿及固定方法基本同小鼠。

捉拿时，右手抓住鼠尾，将大鼠放在粗糙面上，左手戴上保护手套或用厚布盖上大鼠，握住整个身体并固定其头部以防咬伤。

豚鼠捉拿时以拇指和中指从豚鼠背部绕到腋下，另一只手托住其臀部。

体重小者可用一只手捉拿，体重大者捉拿时宜用双手。

兔用左手抓住颈背部皮肤，轻轻将兔捉起，以右手托住其臀部，使兔呈坐姿势。

5、实验动物的给药途径与方法

蛙和蟾蜍蛙及蟾蜍皮下有数个淋巴囊，注入药物易吸收。

一般以腹，胸或股淋巴囊作为给药途径。

注射方法：

一手抓住蛙，固定四肢，将其腹部朝上，另一手持注射器，将注射针头先从蛙大腿止端刺入，经大腿肌层再入腹壁皮下刺入腹淋巴囊内，然后注入药液，此种注射方法可防止拔出针头时药液外溢。

注射量0.25～1.0ml／只。

小白鼠

（1）灌胃法左手拇指和食指捏住小白鼠颈背部皮肤，无名指或小指将尾部紧压在手掌上，使口部朝上，颈部拉直，右手持装有灌胃管的注射器，操作时小心自口角插入口腔，用灌胃管向后上方压迫小白鼠头部，使口腔与食道成一直线，再将灌胃管沿上腭壁轻轻推进食道，当推进2-3cm时，胃管的前端到达膈肌水平，此时可稍感有抵抗。

一般在此位置推进药液即可。

如此时动物呼吸无异常，可将药液注入，如遇阻力应抽出灌胃管重新插入，推注药液后轻轻拉出灌胃管。

一次灌注量为0.1～0.3ml∕10g.操作切忌粗暴，以防损伤食管及膈肌。

（2）皮下注射法最好两人合作，一人左手抓住小白鼠头部，右手拉住尾巴，另一人持注射器选用5号或6号针头，轻轻拉起背部皮肤，将注射针刺入皮下，稍稍摆动针头，若容易摆动则表明针尖的位置确在皮下，即可注入药液，注射量0.05～0.2ml∕10g。

（3）肌肉注射法小白鼠固定如上述。

将注射的针头刺入小白鼠臀部外侧肌肉，注入药液。

注射量一般为0.2ml∕次∕只。

（4）腹腔注射法左手固定动物，使小白鼠呈头低位，腹部朝上。

右手持注射器，在左侧或右侧下腹部向头部方向刺入皮下，沿皮下向前推进3-5mm，然后使针头与皮肤呈45°角穿过腹肌刺入腹腔，针尖进入腹腔时可有抵抗消失感。

此时可轻轻推进药液。

一次注射量0.1-0.2ml∕10g。

兔

（1）灌胃法如用兔固定箱，可一人操作，右手将开口器固定于兔口中，左手插入导尿管。

如无固定箱，需两人合作进行，一人坐好，将兔的躯干夹于两腿之间，左手抓双耳，固定其头部，右手握住其两前肢。

术者将开口器从口角插入横放于兔口中，将兔舌压在开口器下面。

此时助手用双手固定开口器。

术者将导尿管经开口器中央小孔慢慢沿上腭壁插入食管约15-18cm。

为避免误入气管，可将导尿管的外口端放入水中，如有气泡从导尿管中逸出，说明已插入气管，应拔出重新插入。

若无气泡逸出，则用注射器将药液灌入，并以少量清水冲洗导尿管。

灌胃完毕后，先拔出导尿管，再拿出开口器。

（2）静脉注射法兔静脉注射一般采用耳缘静脉。

注射时一人固定兔身，也可用固定器将兔固定。

注射者用手拔去注射部位的兔毛，用酒精棉球涂擦耳缘静脉部皮肤，以左手食指放在耳下将兔耳垫起，并以拇指按压耳缘部分，右手持带有6-7号针头的注射器，尽量从血管远端刺入血管（不一定有回血）。

并用左手拇指固定针头，右手徐徐注入药液。

若推药有阻力或发现局部发白隆起，表示针头在血管外，这时应将针头稍退后，再重新穿刺血管，注射完毕后，用棉球压住针眼，拔去针头。

6、实验动物的处死方法

实验结束后，常需将动物处死，常用的方法如下：

（1）颈椎脱臼法此法适用于小白鼠。

用镊子或左手拇指及食指压住小白鼠的后头部，右手捏住尾巴，用力向上牵拉，使之颈椎脱臼死亡。

（2）空气栓塞法用注射器将空气急速注入静脉，可使动物死亡。

兔与猫可注入空气10-20ml，犬注入空气70-150ml。

（3）心脏取血法用粗针头一次大量抽取心脏血液，可致动物死亡。

此法常用于豚鼠、猴等。

（4）大量放血法处死犬时常用此方法。

操作时在股三角区横切约10cm长之切口切断股动脉和股静脉，血液立即喷出。

此时可同时用自来水冲洗。

动物可在3-5分钟死亡。

（5）其它方法蛙类、小鼠可用探针经枕骨大孔破坏脑和脊髓处死动物。

蛙类和小白鼠也可断头处死。

实验二药物剂量对药物作用的影响

一、目的：

1、观察药物的不同剂量对作用的影响。

2、练习小白鼠的捉拿和腹腔注射法。

二、材料：

小白鼠、2%水合氯醛溶液、大烧杯、托盘天平、1m1注射器。

三、方法：

取小白鼠3只，称其体重，编号后分别放入大烧杯中，观察三鼠的正常活动，再分别腹腔注射：

甲鼠2%水合氯醛溶液0.05m1／10g、乙鼠2％水合氯醛溶液0.15m1／10g、丙鼠2％水合氯醛溶液0.5m1／10g，观察其活动有何变化。

记录出现的症状和出现时间，并比较三鼠有何不同？

四、结果：

鼠号

体重

药物及剂量

用药后反应及发生时间

甲

乙

丙

注意事项：

给药前仔细观察小鼠的活动情况及翻正反射，给药后也要仔细观察小鼠的活动情况及翻正反射，并记录给药时间、翻正反射消失时间、恢复时间。

讨论题：

以水合氯醛为例说明药物剂量对药物作用的影响，并简述临床用药应注意的问题。

实验三药物剂型对药物作用的影响

一、目的：

1、比较不同剂型乌拉坦对小鼠作用的影响。

2、练习小白鼠皮下注射方法。

二、材料：

小鼠2只、鼠笼、注射器、天平、8%乌拉坦水溶液、8%乌拉坦胶浆液（含2.5%羟甲基纤维素）

三、方法：

取性别相同，体重相近的小鼠2只，以甲、乙编号，标记、称重，观察小鼠的一般情况，再分别给药。

甲鼠皮下注射8%乌拉坦水溶液0.15ml∕10g。

乙鼠皮下注射8%乌拉坦胶浆液0.15ml∕10g。

密切观察小鼠对所注射药物的反应。

记录小鼠出现步态蹒跚，俯伏不动或卧倒、反正反射消失等反应的时间。

比较小鼠注射不同乌拉坦制剂后造成中枢抑制的深度及作用的出现快慢与持续时间长短。

四、结果：

鼠号

体重

给药前情况

药物及剂量

剂型

用药后反应

甲

乙

讨论：

不同剂型的药物对药物作用有何影响？

实验四肾功能损害对药物作用影响

一、目的：

1、观察肾功能损害对药物作用影响。

2、了解肾功能损害病理模型的制备方法。

二、材料：

小白鼠2只、鼠笼、天平、注射器、2.5％链霉素溶液、0.1%氯化高汞溶液、

三、方法：

取正常小鼠和肾功能已破坏的小鼠各1只，称其体重并编号，分别由腹腔注射2.5%链霉素0.15ml∕10g，给药15分钟后观察两鼠所表现的症状有何不同。

注意肌张力，四肢运动和呼吸状态。

实验结束后将小白鼠处死，比较两组动物肾脏的差别。

注射氯化高汞小白鼠肾脏常明显肿大。

如用小刀纵切，可以看到皮质部较为苍白，髓质部的充血现象。

四、结果：

鼠号

体重

实验前用药

链霉素的剂量及给药途径

用药后反应

肾脏改变

甲

实验前24小时腹腔

注射0.1%氯化高汞

0.1ml∕10g

乙

实验前24小时腹腔

注射0.9%氯化钠

0.1ml∕10g

备注：

肾功能损害病理模型的制备方法：

小白鼠实验前24小时腹腔注射0.1%氯化高汞0.1ml∕10g。

讨论：

肾功能状态在药物代谢动力学中有何重要作用？

临床上肾功能减退患者用药时应注意什么？

实验五给药途径对药物作用的影响

一、目的：

1、观察给药途径不同对药物作用的影响。

2、练习小白鼠的灌胃、肌注法。

二、材料：

小白鼠2只、大烧杯2个、托盘天平1台、1ml注射器2支、小白鼠灌胃器1个、10%硫酸镁注射液。

三、方法：

取小白鼠2只，称其体重并编号，分别放于大烧杯内，观察正常活动后，以10%硫酸镁注射液0.2ml/10g分别给药：

甲鼠灌胃；乙鼠肌注。

观察两鼠的反应有何不同。

观察指标：

肌张力，四肢运动及呼吸状态。

四、结果：

鼠号

体重

给药前情况

药物及剂量

给药途径

用药后反应

甲

灌胃

乙

肌注

讨论：

不同给药途径除药物作用起效时间不同外，还有何其他影响？

实验六溶媒对乳糖酸红霉素溶解度的影响

一、目的：

通过该实验充分认识选择溶媒的重要性，并联系临床实际，了解配伍禁忌的临床意义。

二、材料：

乳糖酸红霉素粉针3瓶（每瓶0.3g）、0.9%氯化钠注射液、5%葡萄糖注射液、注射用水2支、注射器。

三、方法：

将乳糖酸红霉素粉针编为甲、乙、丙号，然后甲瓶加入0.9%氯化钠注射液，乙瓶加入5%葡萄糖注射液，丙瓶加入注射用水，均为5ml。

振摇3～5分钟后，观察是否溶解。

四、结果：

瓶号

溶剂

结果

甲

0.9%氯化钠注射液

乙

5%葡萄糖注射液

丙

注射用水

讨论:

本实验有何临床意义？

实验七药物血浆半衰期的测定

一、目的：

以酚磺酞（ＰＳＰ）为例，学习测定血浆半衰期的基本方法，并了解药物半衰期的临床意义。

二、材料：

兔1只、７２１型分光光度计、注射器、离心机、吸球、玻璃铅笔、小试管、试管架、1ml、5ml吸管、婴儿秤、0.6%PSP溶液、肝素溶液（2500u∕ml）稀释液（NS20ml+1mol∕LNaOH1ml）、

三、方法：

1、取家兔1只，称重，固定，耳缘静脉注射肝素（2500u∕ml）溶液1ml∕kg，2-3分钟后切断耳缘静脉，让其自然出血（弃前5滴，下同）滴于小试管内约2ml，并标记（下同）作为对照管。

2、由另一侧耳缘静脉注射0.6%PSP溶液0.4ml∕kg，记录注射时间，于注射后的第5，10，20，30分钟分别取血2ml。

3、离心（1500r∕min,10min），从每试管吸出血浆0.4ml，转移于另一试管，加入稀释液4.8ml，摇匀后用721型分光光度计比色，以560nm波长测定其光密度读数（各为X1、X2、X3、X4）。

4、PSP血浆半衰期计算式：

其中X1和X4分别为在给予PSP后5min和30min取血所测得光密度值，25为30min与5min两标本的时间差。

5、PSP血浆浓度计算式：

PSP分子量为354，比色时血浆稀释了13倍。

平均吸收系数（k）测定：

取PSP标准液2umol/L、1umol/L、0.5umol/L及蒸馏水各3.1ml,再各加1mol/LNaOH溶液0.1ml,于波长560nm处比色，读出光密度，代入上式计算，算出各平均吸收系数（K），以光密度为纵坐标，K为横坐标，绘制标准曲线图。

将样品测得的光密度读数（X1、X2、X3、X4）与标准曲线图对比，求出各管的平均吸收系数，再代入计算式即可得到各管的PSP浓度（mg%）。

注意事项：

1、采血时间从开始滴血起计算，为能及时采血，要设法使兔耳充血。

2、采血完毕，用干棉球压住出血口，以便止血。

3、按实验样品测得的数据画时量关系时应先视各点的分布状态。

如分布不呈直线趋势，可能由于测定技术的误差或药物不按一级动力学消除，就不能作直线。

画直线时应多照顾10min的各点，即求消除相的t1／2为主。

4、本实验介绍的t1／2值计算步骤是一种粗略算法。

讨论：

测定药物血浆半衰期有何临床意义？

实验八传出神经系统药物对血压的影响

一、目的：

学习动物麻醉的实验方法。

观察传出神经药物对家兔心血管系统的影响，并根据受体学说初步分析其作用机制，联系其临床应用。

二、材料：

家兔、生理盐水、20%的乌拉坦、500u/ml肝素、０.01％肾上腺素、０.01％重酒石酸去甲肾上腺素、０.0０５％盐酸异丙肾上腺素、2.5%妥拉苏林、１％普萘洛尔、兔解剖台、生物信号采集处理系统、压力换能器、动脉套管、动脉夹、头皮针、兔气管插管、止血钳、手术剪、眼科剪、眼科镊、三通管、棉球、酒精棉球、婴儿秤、注射器、针头。

三、方法：

取家兔1只，称重，用20%的乌拉坦溶液5ml/kg于兔耳缘静脉缓慢注射麻醉。

将压力换能器上连接的三通管用肝素溶液充满，并排除里面的空气，关闭三通管与压力换能器的连通。

将麻醉后的家兔仰卧固定于手术台上，剪去颈部兔毛。

于颈部正中纵行切开皮肤。

用止血钳作钝性分离，将气管游离并作向上的倒“T”形切口，插入气管插管。

于气管一侧分离出颈总动脉，在其下面穿两根线，用一根线结扎一侧颈总动脉远心端，用动脉夹夹住近心端，于靠近动脉结扎端用眼科剪剪一“V”形切口，将连有压力换能器的动脉套管（套管的另一端与压力换能器相连，换能器另一端已先连接计算机生物信号处理系统）插入“V”形口中，用线结扎固定。

检查后，缓慢松开动脉夹，打开三通阀，即可在屏幕相应的通道上记录到动脉血压波形。

右兔耳缘静脉置入头皮针，固定以备给药。

待血压稳定后开始记录正常血压曲线，然后按下列次序给药，每次给药后立即用生理盐水1ml将药液快速推注冲洗入静脉内。

待血压回复正常或稳定后，再给下一种药（手术部位用生理盐水纱布覆盖）。

给药：

1、观察拟肾上腺素药物的作用：

（1）肾上腺素10ug/kg（0.01%，0.1ml/kg）。

（2）去甲肾上腺素10ug/kg（0.01%，0.1ml/kg）。

（3）异丙肾上腺素5ug/kg（0.005%,0.1ml/kg）。

2、观察应用α-肾上腺素能受体阻滞剂后对拟肾上腺素药物作用的影响：

（1）妥拉苏林0.4ml/kg（2.5%,0.1mg/kg），用药后2～5分钟再给下列药液。

（2）肾上腺素，剂量同1中的

（1）。

（3）去甲肾上腺素，剂量同1中的

（2）。

（4）异丙肾上腺素，剂量同1中的（3）。

3、观察应用β-肾上腺素能受体阻滞药后对拟肾上腺素药物作用的影响：

（1）1%普萘洛尔0.5ml/kg。

用药后约5～15分钟再给下列药物。

（2）肾上腺素，剂量同1中的

（1）。

（3）去甲肾上腺素，剂量同1中的

（2）。

（4）异丙肾上腺素，剂量同1中的（3）。

四、结果：

将描记的曲线图打印剪贴，注明实验题目、温度、组别等主要条件，分析图形变化。

注意事项：

1、麻醉动物时注射乌拉坦速度要慢，过快可导致呼吸抑制死亡。

2、动脉导管用肝素生理盐水充盈，松开动脉夹时动作要缓慢。

3、作动脉插管前，先检查整个压力传导系统，排除气泡。

讨论：

1、根据实验结果说明肾上腺素、去甲肾上腺素、异丙肾上腺素对血压的影响，并分析其作用机制。

2、给予妥拉苏林、普萘洛尔后，再次使用肾上腺素、去甲肾上腺素、异丙肾上腺素，家兔的血压分别有什么变化？

为什么？

实验九传出神经药对肠肌的作用

一、目的：

观察乙酰胆碱、毛果芸香碱及阿托品对肠平滑肌的作用；分析它们的作用机制；联系阿托品对肠平滑肌作用的用途。

二、材料：

家兔、0.01％氯化乙酰胆碱溶液、1％硝酸毛果芸香碱溶液、0.1％硫酸阿托品溶液、台氏液、附有恒温电热器的药理、生理实验多用仪或其他离体肠肌实验装置、记纹鼓或智能化药理生理监测仪、手术剪、镊子、缝针、滴管、球胆或加氧泵、1m1注射器、烧杯或培养皿、L型玻璃钩（中空）、万能杠杆或张力换能器、铁支架、双凹夹、丝线。

三、方法：

取家兔1只，击头致死，剖腹剪取接近十二指肠的空