遗传学实验汇总.docx
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遗传学实验汇总
遗传学实验指导
山东农业大学遗传学教研室
二OO五年
目录
实验一植物花粉母细胞减数分裂的染色体观察
实验二植物花粉母细胞减数分裂制片技术
实验三植物根尖压片技术
实验四染色体组型分析
实验五基因的分离、独立分配和互作
实验六连锁基因的遗传分析
实验七果蝇的形态鉴别和饲养管理
实验八辐射对植物染色体的诱变作用
实验九植物DNA的提取与定量分析
实验十植物的RAPD分析
实验一植物花粉母细胞减数分裂的染色体观察
一、实验原理
减数分裂是性母细胞在分裂形成配子过程中一种特殊的细胞分裂方式。
在这个过程中,染色体复制一次,细胞分裂两次,最终形成的配子染色体数目比母细胞减少一半。
雌雄配子受精结合后代又恢复正常的染色体数目,从而保持了物种在遗传上的稳定性;同时由于减数分裂中同源染色体的非姊妹染色单体的交换为后代的变异提供了基础。
减数分裂包括减数第一次分裂和减数第二次分裂两个连续变化的阶段。
每个阶段根据细胞和染色体的变化特点分为前期、中期、后期和末期四个时期。
由于减数第一次分裂的前期较长,染色体变化也比较复杂,所以又常常将前期
分为细线期、偶线期、粗线期、双线期和终变(浓缩)期。
染色体是遗传物质的载体,在减数分裂中的行为对遗传物质的分配和重新组合具有重大影响,因此了解染色体在减数分裂中所表现的特殊变化,可以从细胞学水平加深对遗传学基本规律的理解。
本实验通过在光学显微镜下对供试材料永久制片的观察熟悉性母细胞和染色体在减数分裂过程中各个时期的变化特点,对减数分裂的具体过程和意义有深刻的了解。
二、实验材料和实验用品
玉米、小麦等花粉母细胞减数分裂的永久制片和照片,以及显微镜、擦镜纸等。
三、实验内容与步骤
利用玉米、小麦等花粉母细胞的减数分裂永久制片,参考减数分裂各个时期的显微照片,在显微镜下进行系统地观察,掌握各个时期的特点。
减数分裂各个时期的主要特点简述如下:
1.前期
(1)细线期:
细胞核内开始出现细而长交织成一团的线状物,难以找到两端,无法计数,这是初期形成的染色体。
核仁和核膜清晰可见。
(2)偶线期:
同源染色体配对联会形成“二价体”。
由于此时每条染色体已经复制,因此每个二价体包含四条染色单体。
由于同源染色体联会的行为在光学显微镜下看不到,并且这一时期时间较短,染色体又很细长,难以同细线期明显区分开来。
这一时期核仁和核膜仍清晰可见。
(3)粗线期:
染色体进一步螺旋化呈粗线状。
染色体的个体性逐渐明显。
非姊妹染色单体之间的“交换”就发生在该时期,但“交换”的行为不能直接在显微镜下观察到。
核仁和核膜在这一时期仍然可以看见。
(4)双线期:
染色体进一步缩短变粗,每个二价体的一对同源染色体相互排斥,并开始彼此分开。
但由于非姊妹染色单体的交换,每个二价体出现了数目不定的交叉结使二价体仍然维持在一起而不完全分开。
该时期核仁和核膜仍然可见。
(5)终变期:
染色体高度浓缩,交叉结端化,每个二价体只在末端相连,核仁和核膜仍然可见。
此时所有二价体分散在整个核内,可以进行染色体计数,某生物有多少对染色体此时就有多少个二价体。
2.中期
:
核仁和核膜的消失,标志着前期的结束,中期的开始。
此时,所有二价体排列在纺锤体的赤道面上。
每个二价体两条染色体的着丝点分别趋向纺锤体的不同极。
如果从纺锤体的一极向赤道面观察,仍可计数染色体。
由于一对同源染色体两个成员的着丝点朝向细胞的哪一极完全是随机的,因此在不同性母细胞中,此期染色体的排列具有多种可能性。
3.后期
:
每个二价体的两条染色体都以着丝点为先导,由纺锤丝牵引分别向细胞的两极移动。
结果细胞的每一极只分到了一对同源染色体中的一条,从而使每一极分到的染色体数只有原来的一半。
此时分到每一极的每条染色体的两条姊妹染色单体仍然由共同的着丝点连在一起。
4.末期
:
染色体到达细胞两极后,细胞的每一极又重新形成核膜和核仁,随之胞质分裂(有的植物此时胞质不分裂),形成两个子细胞,称为“二分子”。
减数第一次分裂结束后,经过一个短暂的间期,很快进入减数第二次分裂,第一次分裂是染色体数目减半的过程。
5.前期
:
细胞核内又重新出现染色体。
每个染色体的两条姊妹染色单体仍由同一个着丝粒连在一起,但两臂已彼此分开。
6.中期
:
每个子细胞内的染色体都以自己的着丝点排列在细胞的赤道面上,染色单体的两臂自由地散开。
7.后期
:
每条染色体的着丝点纵裂,两条姊妹染色单体在两极纺锤丝的牵引下,相背移向两极。
8.末期
:
染色体分到两极后,细胞的每一极又重新形成核仁和核膜,然后胞质分裂。
整个减数分裂过程使原来的一个母细胞分裂成四个子细胞,每个子细胞内只含有母细胞染色体数目的一半。
分裂刚完成时四个子细胞彼此靠在一起,称为“四分子”。
四、思考题
1.玉米的体细胞中有10对染色体,中期Ⅰ时可能的排列方式有多少种?
2.以玉米为例说明在减数分裂过程中,染色体数目怎样从2n=20变为n=10。
五、作业
绘制减数分裂粗线期、终变期、中I、后I、中II、后II的图像。
实验二植物花粉母细胞减数分裂制片技术
一、实验原理
减数分裂是生物在性母细胞成熟形成配子过程中发生的一种特殊有丝分裂,它包括连续两次的细胞分裂,第一次分裂是减数的,第二次是等数的。
第一次分裂的前期较长,染色体变化较复杂,可细分为5个时期,即细线期、偶线期、粗线期、双线期和终变期。
染色体在减数分裂的行为对遗传物质的分配和重组产生重大影响。
高等植物在形成雄配子的过程中,花药内的小孢子母细胞(2n),经过减数分裂最终产生四个小孢子。
每个小孢子内的染色体数目已减半为n。
以后每个小孢子进一步发育为花粉粒。
由于植物花药取材容易,操作方便,一般作为减数分裂制片材料。
在适宜的时期采集植物的花蕾,经固定液杀死固定,使细胞保持活体时形态。
然后进行压片染色等处理,制成减数分裂玻片标本,在显微镜下进行观察,可以看到小孢子母细胞的减数分裂过程(即染色体由双倍变为单倍体的过程),研究染色体在形态和数量上的动态变化特点。
二、实验材料和实验用品
1.实验材料玉米雄花序
2.实验用品
显微镜、解剖针、载玻片、盖玻片、镊子、培养皿、酒精灯、吸水纸、纱布、刀片、滤纸、火柴、等。
3.实验药品
无水乙醇、95%乙醇、重铬酸钾、浓盐酸、浓硫酸、冰醋酸、二甲苯、加拿大树胶和洋红(或苏木精)。
三、实验方法与步骤
1.取材:
选取适当大小的花蕾,是观察花粉母细胞减数分裂的关键性步骤。
不同植物取材时期不同。
玉米:
在抽雄前两周左右(大喇叭口期),用手指从喇叭口处向下挤捏叶鞘,触到有松软感处,即是雄花序所在部位。
在该处用刀片纵向划一切口,用镊子取出花序分枝。
此时雄花序先端小穗颖长4mm左右,花药长2~3mm,每一分枝中上部小穗发育最早。
取材时间一般在上午9时~10时,不同材料间稍有差异。
2.固定:
取下的材料应立即放入固定液中杀死固定。
在4~15℃条件下,一般固定时间为24小时。
固定后的材料先用95%酒精漂洗至无醋酸气味,再移到70%酒精中置于冰箱内保存。
常用的固定液是法氏固定液,在使用这种固定液时应注意现配现用,固定时不要在阳光下暴晒。
3.染色和压片:
先将已固定的材料置于培养皿内并倒入少许保存液。
用镊子摘取一个适当大小的小穗或花蕾放在吸水纸上吸掉多余的酒精,然后放在载玻片中央。
用解剖针挑出2~3个花药,并立即滴醋酸洋红或醋酸铁矾苏木精染色液于花药上。
用解剖针将花药横向切断,并从一端向切口轻轻挤压花药,使花粉母细胞从切口处逸出。
然后用镊子除尽花药壁等杂物。
这是压片优劣的关键步骤之一,如不去净残渣,则不容易把分裂的细胞压平,使染色体不容易分散开,并且在制作永久片的过程中,细胞会从载玻片上大量脱落。
去净残渣后,在低倍镜下进行初步镜检,如果花粉母细胞处于减数分裂时期,即可加上盖玻片。
加盖玻片时,先使盖玻片的一边放在载玻片上,待染液布满整个边缘时,左手握镊子顶住盖玻片,右手握解剖针托住盖玻片轻轻放下。
加上盖玻片以后,如有多余染色液,可用吸水纸吸去;如染色液不能布满盖玻片,则在盖玻片一边稍加染色液,然后在酒精灯上烤片。
烤片时,用手平持片子在酒精灯上方来回移动,并经常将片子放在手背上试温,以片子不烫手为宜,可反复进行多次。
烤片是制片过程中的一项很重要的步骤。
通过烤片可使细胞质颜色变浅,而染色体能得到充分鲜明的着色。
烤片以后可在盖玻片上加一小块吸水纸,以拇指或用带橡皮头的铅笔轻压盖片。
应注意不要使盖片移动。
如果镜检发现染色体染色太浅,可在盖玻片周围稍加染色液再烤;如果染色太深,可从盖玻片一边滴加45%冰醋酸,在另一边用吸水纸吸,让冰醋酸从盖玻片下流过直至细胞质颜色较浅而染色体着色明显清析为止。
4.制作永久片:
要使片子能长期保存应用,可制成永久片。
永久片的制作主要包括分片、脱水透时和封片三个步骤。
首先用培养皿(内置U型玻璃管或一根短玻棒)若干套编号,配制多级脱水剂(常用脱水剂见附录二)。
(1)分片:
准备制成永久片,首先使其翻转让盖玻片朝下浸入第一级培养皿内分片。
让载玻片的一端搭在短玻棒上,另一端和皿底接触,使盖玻片自然脱落,并标记载玻片和盖玻片原来相对应的方向和位置。
(2)脱水透明:
用一端劈开的去磷头火柴棒夹住盖玻片(方向不变,材料朝上),放入第二级培养皿中。
而载玻片要翻转使有材料的一面朝上。
然后依次逐级脱水,一般每级约1~2分钟。
如用第三种脱水剂每级约20~30秒钟。
为了防止在脱水过程中细胞从片上脱落,在制片时可先在盖玻片上涂一层蛋白甘油胶,在酒精灯上烘烤至冒出轻烟后,稍凉片刻盖在有材料的载玻片上。
(3)封片:
片子从最后一级培养皿内取出后稍凉,于载玻片上原来加盖玻片的位置中间滴一滴完整的加拿大树胶,然后翻转盖玻片(使有材料的一面朝下),按原来的方向和位置轻轻盖在树胶上。
要使盖玻片随着胶的扩展自然下沉,不要施加压力或移动盖玻片。
然后平放在阴凉处晾干再镜检。
对于镜检符合要求的片子,在载玻片右端贴上标签,注明标本名称,制片日期。
[附]冷冻分片法:
这种方法快速简单。
对准备制作永久片的玻片,先用液态二氧化碳干冰冷冻,或用冰冻致冷器进行冷冻,待完全冷冻结冰后,用刀片将盖玻片同载玻片分开,将载玻片和盖玻片放在37℃左右的温箱内烘干。
取出后放在二甲苯内浸泡10~20分钟,滴加树胶封片即可。
四、作业和思考题
1.写出制片步骤流程图。
2.制作两张质量较好的临时片(有条件可制作永久片),并绘出自己所制作片子的分裂相,说明其时期和特点。
实验三植物根尖压片技术
一、实验原理
有丝分裂是植物细胞分裂、体细胞增殖的主要方式,在有丝分裂过程中,细胞核内染色体准确地复制,并有规律地、均匀地分配到两个子细胞中,使子细胞和母细胞具有同样数目和形态结构的染色体,保证了植物细胞的遗传性状的一致。
各种生长旺盛的植物组织中,如根尖组织、茎尖组织、居间分生组织、愈伤组织等,细胞常进行着旺盛的有丝分裂。
在细胞分裂的适当时期取材,通过对供试材料进行一定的处理,就可以在显微镜下观察染色体的变化特点和染色体的形态特征,并进行染色体计数。
由于在有丝分裂的中期染色体具有典型的形态特征,并易于计数,因此为了获得更多的中期染色体图像,可以采用药物处理或冰冻处理的方法,阻止纺锤体的形成,使细胞分裂停止在中期。
同时通过处理还可使染色体缩短,易于分散,便于进行观察研究。
另外,通过对细胞组织进行酸性水解或酶处理除去细胞之间的果胶层,并软化细胞壁,使细胞容易彼此散开,有利于压片和染色。
二、实验材料和实验用品
1.材料:
圆葱、大蒜、黑麦、玉米、小麦和蚕豆。
用品:
显微镜、恒温箱、冰箱、水浴锅、分析天平、剪子、镊子、刀片、载玻片、盖玻片、滤纸、量筒、培养皿、烧杯、滴瓶、酒精灯、切片盒、标签等。
多媒体系统(附显微演示)。
2.药品:
无水乙醇、95%乙醇、冰醋酸、蒸馏水、碱性品红、苏木精、秋水仙素、饱和对二氯苯溶液、0.002mol/L8-羟基喹啉、1mol/L盐酸、4%铁矾水溶液、2%醋酸洋红染色液、2.5%纤维素酶和2.5%果胶酶混合液。
三、实验内容和实验步骤
1.取材:
可在室内培养根尖,也可以直接从田间挖取刚长出的幼嫩根尖。
室内培养的方法是:
(1)圆葱和大蒜根尖:
发根前先将圆葱以根部向上在光下晒两天,然后置于盛清水的小烧杯口上,使根茎部与水接触,或将圆葱半埋于湿沙内。
在20~25℃光照条件下培养2~3天,待根长1~2cm时,选健壮根自尖端约1cm处剪下备预处理用。
大蒜作材料可先将蒜瓣扒去皮,然后用细铁丝串起放在盛清水的培养皿内培养,其它要求同上。
剪取根尖的时间以上午10时左右为好。
(2)玉米(或黑麦、小麦、蚕豆)根类:
先将种子浸泡一天,待吸水膨胀后再转移到铺有几层滤纸(或吸水纸)的培养皿内,加水湿润,然后将种子均匀地摆放在滤纸上,盖上盖。
放在18~20℃黑暗条件下培养,待根长到1~2cm时,选健壮根尖于上午10时左右取下备用。
田间从植株上直接取根的方法适用于大部分禾本科植物,例如在麦类作物生长季长出的大量不定根,比种子萌发的根更健壮,是观察有丝分裂的很好材料。
2.预处理:
为了阻止纺锤体的活动,获得更多的中期分裂相,同时使染色体相对缩短,便于染色体分散和计数,可对根尖进行预处理。
如果只是为了观察有丝分裂各期染色体动态,可以不进行预处理。
预处理的方法有冰冻预处理和药物预处理两种。
(1)冰冻预处理:
将根尖浸泡在蒸馏水中,置于1~4℃冰箱内或盛有冰块的保温瓶中冰冻24小时。
这种方法对染色体无破坏作用,染色体缩短均匀,效果良好,简便易行,各种作物都适用。
(2)药物预处理:
常用的药物有0.05~0.2%秋水仙素溶液、饱和对二氯苯溶液、0.002mol/L8-羟基喹啉等。
预处理时,将根尖直接浸泡在药液中,在适宜的温度下处理一定的时间(表1)。
这些药物都能使染色体缩短,但同时对染色体也有一定破坏作用。
使用时应注意处理的时间,小麦、黑麦、大麦、圆葱和大蒜等处理4小时左右,棉花和水稻等处理2小时左右。
处理的时间长短同温度有很大关系。
表1常用药液预处理时间
药品
条件
圆葱
玉米
小麦
0.1%秋水仙素溶液
温度(℃)
15
室温
25
处理时间(小时)
4
3
2
饱和对二氯苯溶液
温度(℃)
室温
室温
处理时间(小时)
4
4
0.002mol/L
8-羟基喹啉
温度(℃)
18
室温
处理时间(小时)
4
3.固定或前低渗:
固定的目的是利用化学药品将生活细胞迅速杀死,并使构成染色体的核蛋白变性和沉淀,以保持染色体的固有形态和结构。
固定液一般采用卡诺氏固定液,配配制方法为无水酒精:
冰醋酸=3:
1,也可用95%乙醇代替无水乙醇。
操作时将预处理后的根尖用蒸馏水冲洗两次(约5分钟),然后转移到卡诺氏固定液中。
在4~15℃条件下固定20~24小时,即可进行观察。
如果需要长期保存,可先用70%酒精冲洗2次然后转入70%酒精中保存。
4.解离:
解离的目的是使细胞壁之间中层的果胶物质以及部分细胞质分解,而使细胞易于分散。
同时也可使细胞壁适度软化而易于压片。
解离的方法主要有以下几种。
(1)将根尖用蒸馏水冲洗2次,然后放入已经在60℃水浴锅中预热的1mol/L盐酸中。
在60℃恒温条件下处理10~15分钟,当根尖透明呈米黄色时取出。
(2)将根尖置于95%酒精和浓盐酸的等量混合液中处理2~10分钟。
或将根尖放在5ol/L盐酸内处理5~10分钟。
(3)将根尖置于2.5%果胶酶和2.5%纤维素酶等量混合液中(PH5~5.5),在室温18~28℃条件下处理2~3小时。
5.后低渗:
将根尖放在蒸馏水中冲洗2~3次(约10分钟)。
酶解后的根尖可浸泡10分钟,然后再冲洗一次。
根尖一定要冲洗干净,否则影响染色。
低渗后的根尖放入70%酒精中备用。
6.染色与压片:
染色与压片的方法常用的有以下几种。
(1)醋酸洋红染色法:
取一根尖放在吸水纸上吸去多余的保存液,然后放在一张干净的载玻片中央。
用刀片将根尖分生组织切下,将其切成薄片(越薄越好),滴1滴2%醋酸洋红染色液,盖上盖玻片,进行压片。
压片时用一手固定盖玻片,另一手用镊尖或解剖针柄轻敲盖玻片,使材料溃散。
用火轻烤载玻片背面,然后继续轻敲,待材料呈云雾状即可镜检。
加热的目的是使染色体充分染色和软化,以及破坏细胞质的染色。
如发现有较理想的分裂相,可再轻烤一下片子,然后在盖玻片上盖一张吸水纸,用大拇指用力压片(不可使盖玻片移动),然后镜检。
也可以采用十字交叉压片法。
即:
取根尖放在吸水纸上吸去多余的保存液,然后放在干净的载玻片中央。
用刀片将分生组织切下,将其切成薄片。
取另一张干净的载玻片,呈十字形交叉盖在放有材料的载玻片上。
在载玻片上盖一张吸水纸,并用大拇指压片,使材料压成一薄层。
然后将两载玻片分开,各滴加1滴染色液进行染色。
稍停片刻后加上盖玻片,在酒精灯上轻烤一下片子,一手固定盖玻片,另一手用铅笔橡皮头对准材料轻轻敲打,使根尖细胞分散均匀。
(2)改良卡宝品红染色压片法:
将根尖置于干净的载玻片中央,切下根尖分生组织,将其切成薄片,滴一滴改良卡宝品红染色液,盖上盖玻片压片。
。
(3)铁矾苏木精染色压片法:
先将根尖放入4%铁矾水溶液中媒染2~4小时。
然后流水冲洗20分钟,再将根尖放入0.5%苏木精染液中避光染色40~120分钟,取出后放入蒸馏水中备用。
其制片方法,取一染色后的根尖放在干净载玻片的中央。
用刀片将根尖分生组织切下,将其切成薄片(越薄越好),滴1滴45%冰醋酸,加盖玻片,具体压片方法同上。
7.镜检:
压好的片子先在低倍镜下镜检,找到分裂细胞后转换高倍镜观察。
如果染色体分散较好,图象清晰,就可以脱水封片,制成永久片。
四、思考题和作业
1.在你所观察的根尖中,哪些分裂时期最多,为什么?
2.解离的目的是什么?
固定液的作用是什么?
3.对于一些不易取到根尖的材料,如何观察它们的有丝分裂和染色体数目?
4.制作两张合格的有丝分裂玻片。
5.绘出在显微镜下观察到的各期有丝分裂图象。
实验四染色体组型分析
一、实验目的
分析植物细胞有丝分裂中期染色体数目、大小、着丝粒位置和随体等形态特征,学习染色体组型分析的方法。
为物种起源和进化提供依据,为遗传育种研究提供细胞学证据。
二、实验原理
各种生物染色体的形态,结构和数目都是相对稳定的。
每一生物细胞内特定的染色体组成叫染色体组型。
染色体组型分析也称核型分析。
通过一定的方法制得染色体有丝分裂的玻片标本,经显微照相,冲洗放大等步骤获得染色体照片。
从染色体玻片标本和染色体照片的对比分析,进行染色体分组,并对组内各染色体的长度,着丝点位置,臂比和随体有无等形态特征进行观测和描述,从而阐明生物的染色体组成,确定其染色体组型,这种过程称为染色体组型分析。
三、实验材料
蚕豆(Viciafaba,2n=12),洋葱(Alliumscepa,2n=16),大麦(Hordeumsativum2n=14),黄麻(TiliaceaeCorchorus,2n=14)。
四、实验仪器及用具
显微镜,显微照相系统,相片冲洗放大整套设备,目镜测微尺,镜台测微尺,4#放大纸,135黑白胶卷,计算器,透明尺,剪刀,坐标纸,胶水以及制作有丝分裂玻片所需的用具。
五、药品和试剂
制作有丝分裂玻片所需的药品和试剂(见实验一)以及显微摄影冲洗放大所需的药品和试剂:
米吐尔,无水亚硫酸钠,几奴尼(对苯二酚),无水碳酸钠,溴化钾,硫代硫酸钠,硼酸,钾矾(硫酸铝钾),28%醋酸
六、实验方法与步骤
(一)染色体标本玻片的制作
染色体组型分析一般用有丝分裂中期的分裂细胞,通常采用植物根尖细胞。
有丝分裂中期的染色体具有典型的形态特征,便于进行分析,具体制作方法见实验一。
(二)镜检和测量
当染色体玻片制好后,放在显微镜下观察,选出符合染色体组型分析要求的细胞,这些细胞是处于有丝分裂中期,染色体分散良好,没有重叠,数目完整,随体和着丝点明显,没有断裂,着色鲜明,形态清晰,且各条染色体处于同一平面上。
选择染色体较平直的一条或几条,用目微尺(目镜测微尺)测量其长度。
(三)显微照相、冲洗和放大
将在显微镜下选定的符合要求的细胞进行显微照相(可用10×100倍的油镜),然后冲洗,选取图像清晰的底片,放大、洗印出染色体形态清晰的照片。
在显微照相的同时,对镜台测微尺进行同样倍数(油镜10×100倍)拍摄,放大,然后根据照片上的实际长度,计算放大倍数。
(四)测量和计算染色体的照相长度
1.测量
在放大的照片上用透明尺准确地量出各条染色体的总长度和每条染色体两臂的长度(分别量到着丝点的中部),并将结果填入表15。
随体的长度可计入或不计入染色体长度之内,但应注明。
染色体弯曲不能用直尺测量时,可先用细线量取染色体相等的长度,再用尺量出细线的相应长度。
2.计算:
(1)放大倍数的计算:
计算放大倍数是利用在显微镜下直接测得的某平直染色体的实际长度(μ),除以放大照片上的相应染色体的照相长度(μ)。
(2)绝对长度计算:
(3)相对长度的计算
(4)臂比的计算
(五)染色体形态测量数据表
染色体序号
放大相片长度(mm)
绝对长度(μ)
相对
长度
臂比
染色体
类型
备注
长臂
短臂
全长
长臂
短臂
全长
1
2
3
4
5
6
7
8
9
10
11
12
(六)剪贴和配对
将放大照片上的各条染色体剪下,根据目测和染色体的相对长度、臂比、着丝粒位置、次缢痕的有无和位置、随体的有无和形态大小等特征,进行同源染色体配对。
(七)排列和粘贴
将配对好的染色体按照由大到小的顺序依次排列起来。
排列时把各对染色体的着丝粒排在一条直线上,并且使短臂在上,长臂在下。
等长的染色体,把短臂较长的染色体排在前面。
随体染色体排在最后,性染色体和额外染色体单独排列。
已排好的同源染色体按染色体编号先后顺序粘贴在绘图纸上,粘贴时着丝粒要处在同一直线上。
(八)分类
根据着丝点的位置,确定染色体的形态类型,臂比是反映着丝点在染色体上的位置。
臂比
染色体类型
符号
1.0
正中着丝粒染色体
M
1.0~1.7
中着丝粒染色体
m
1.7~3.0
近中着丝粒染色体
sm
3.0~7.0
近端着丝粒染色体
st
7.0以上
端着丝粒染色体
t
具随体染色体(sat)用*标出。
(九)绘图和翻拍
将剪贴排列的染色体组型图用座标纸绘制成染色体模式图并进行翻拍。
七、实验作业
1.提交植物染色体组型剪贴图
2.植物染色体组型的模式图
3.染色体形态测量数据
4.简述本实验的染色体组型结果。
实验五基因的分离、独立分配和互作
一、实验原理
孟德尔定律包括“分离定律”及“独立分配定律”。
根据分离规律,位于一对同源染色体上的一对等位基因在减数分裂形成配子时,要彼此发生分离,互不干扰地分到不同的配子中去。
因此对于一对基因的杂合体,在完全显性条件下,其自交子代和测交子代的表现型分离比例分别为3:
1和1:
1。
独立分配规律(自由组合规律)进一步揭示了位于非同源染色体上的多对独立遗传基因分离和组
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- 遗传学 实验 汇总