细胞库建立标准.docx

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细胞库建立标准

细胞库建立概况

一、对细胞库细胞基质总的要求

（一）细胞系／株历史资料

1．细胞系／株来源资料

应具有细胞系／株来源的相关资料，如细胞系／株制备机构的名称，细胞系／株来源的种属、年龄、性别和健康状况的资料。

这些资料最好从细胞来源实验室获得，也可引用正式发表文献。

人源细胞系／株须具有细胞系／株的组织或器官来源、种族及地域来源、年龄、性别及生理状况的相关资料。

动物来源的细胞系／株须具有动物种属、种系、饲养条件、组织或器官来源、地域来源、年龄、性别、病原体检测结果及供体的一般生理状况的相关资料。

2．细胞系／株培养历史的资料

应具有细胞分离方法、细胞体外培养过程及建立细胞系／株过程的相关资料，包括所使用的物理、化学或生物学手段，是否有外源添加序列，以及细胞生长特征、生长液成分、选择细胞所进行的任何遗传操作或选择方法等。

同时还应具有细胞鉴别、检定、内源及外源因子检测结果的相关资料。

应提供细胞培养液的详细成分。

如使用人或动物源成分，如血清、胰蛋白酶、水解蛋白或其他生物学活性的物质，应具有这些成分的来源、制备方法、质量控制、检测结果和质量保证的相关资料

。

（二）细胞库的建立

细胞库的建立可为生物制品的生产提供已标定好的、细胞质量相同的及能持续稳定传代的细胞种子。

1．原材料的选择

建立细胞库的各种类型细胞的供体均应符合细胞库细胞的检定中相关规定。

神经系统来源的细胞不得用于生物制品生产。

培养细胞用牛血清应来源于无牛脑海绵体脑病流行地区的健康牛群，其质量标准应符合规定（附录XIIID）。

不得使用人血清作为细胞培养液。

如需使用人血白蛋白，则须使用有批准文号的合格制品。

消化细胞用胰蛋白酶应进行检测，证明其无细菌、真菌、支原体或病毒污染。

特别应检测胰蛋白酶来源的动物可能携带的病毒，如细小病毒等。

用于生物制品生产的培养物中不得使用青霉素或β-内酰胺（β-Lactam）类抗生素。

2．细胞培养操作的要求

细胞培养生产人员应定期检查身体。

在生产区内不得进行非生产制品用细胞或微生物的操作；在同一工作日进行细胞操作前，不得操作或接触有感染性的微生物或动物。

3．建立细胞库

细胞库为三级管理，即原始细胞库、主细胞库及工作细胞库。

如为引进的细胞，可采用主细胞库和工作细胞库组成的二级细胞库管理。

在某些特殊情况下，也可使用主细胞库一级库，但须得到国务院药品监督管理部门的批准。

（1）原始细胞库（PCB）

由一个原始细胞群体发展成传代稳定的细胞群体，或经过克隆培养而形成的均一细胞群体，通过检定证明适用于生物制品生产或检定。

在特定条件下，将一定数量、成分均一的细胞悬液，定量均匀分装于安瓿，于液氮或一130℃以下冻存，即为原始细胞库，供建立主细胞库用。

（2）主细胞库（MCB）

取原始细胞库细胞，通过一定方式进行传代、增殖后均匀混合成一批，定量分装，保存于液氮或一130℃以下。

这些细胞必须按其特定的质控要求进行全面检定，全部合格后即为主细胞库，供建立工作细胞库用。

（3）工作细胞库（WCB）

工作细胞库的细胞由MCB细胞传代扩增制成。

由MCB的细胞经传代增殖，达到一定代次水平的细胞，合并后制成一批均质细胞悬液，定量分装于安瓿，保存于液氮或一130℃以下备用，即为工作细胞库。

冻存时细胞的传代水平须确保细胞复苏后传代增殖的细胞数量能满足生产一批或一个亚批制品。

复苏后的传代的水平应不超过批准的该细胞用于生产的最高限定代次。

所制备的WCB必须经检定合格，方可用于生产。

4．细胞库的管理

每种细胞库均应分别建立台账，记录放置位置、容器编号、分装及贮存安瓿数量，取用记录等。

细胞库中的每支细胞安瓿均应注明细胞系／株名、代次、安瓿号、冻存日期，贮存容器的编号等。

冻存的细胞存活率应在90％以上。

冻存后的细胞，应至少做一次复苏培养并连续传代至衰老期，检查不同传代水平的细胞生长情况。

主细胞库和工作细胞库分别存放。

非生产用细胞应与生产用细胞严格分开存放。

（三）细胞库细胞的检定

细胞检定主要包括以下几个方面：

细胞鉴别、外源因子污染和内源因子的检测、致瘤性检测等。

必要时还须进行细胞染色体核型检查。

这些检测内容对于MCB细胞和WCB细胞均适用。

建立细胞库的实验室应至少进行一次MCB细胞的全面检定，检定应包括：

细胞鉴别试验，细菌、真菌检查，支原体检查，外源病毒因子检查等。

每次建立WCB后，均应按规定项目进行检定。

1．细胞鉴别试验

新建细胞系／株、细胞库（MCB和WCB）和生产结束时的细胞应进行鉴别试验，以确认为本细胞，无其他细胞的交叉污染。

细胞鉴别试验方法有多种，包括细胞遗传检测（如特征染色体标志）、遗传标志检测（如DNA指纹图谱、STR图谱、基因组二核苷重复序列）、免疫学检测（如组织相容性抗原、种特异性抗血清）和生物化学鉴别法（如同工酶试验）等。

可选其中一种或几种方法，但均须经国家药品检定机构认可。

细胞表型特征与遗传学特征相结合来判断，更有利于细胞鉴别。

2．细菌、真菌检查

取细胞培养上清液样品

3．支原体检查

取细胞培养上清液样品，应为阴性。

4．细胞内、外源病毒因子检查

应注意检查细胞系／株中是否有细胞来源物种中潜在的可传染的病毒，以及由于操作带入的外源性病毒。

对细胞进行病毒检查的种类及方法，须根据细胞的种属来源、组织来源及细胞特性决定。

（1）细胞形态观察及红细胞吸附试验（简称血吸附试验）

取混合瓶细胞样品，接种至少6个细胞培养瓶或培养皿，待细胞长成单层后换维持液，持续培养两周。

每日镜检细胞，细胞应保持正常形态特征。

细胞至少培养14天后，分别取1／3细胞培养瓶或培养皿，用0·2％～0.5％豚鼠红细胞和鸡红细胞混合悬液进行血吸附试验。

加入红细胞后置4～8℃30分钟，然后置20～25℃30分钟，分别进行镜检，观察红细胞吸附情况，结果应均为阴性。

新鲜红细胞在2～8℃保存不得超过7天，且溶液中不应含有钙离子或镁离子。

（2）不同细胞传代培养法检测病毒因子

自MCB或WCB来源的细胞，分别接种下列三种单层细胞，包括猴源细胞、人源二倍体细胞和同种不同批的细胞。

每种单层细胞接种至少10000000个活细胞或裂解细胞及其培养上清液，每种细胞至少接种2瓶。

接种样品量应占维持液的1／4以上，培养至少14天。

取培养7天的上清液各一瓶，分别接种于同种细胞培养，盲传一代，继续培养7天，观察细胞病变并进行细胞形态观察及红细胞吸附试验。

若待检细胞已知可支持人巨细胞病毒（CMV）的生长，则应在接种人二倍体细胞后至少观察28天，应无细胞病变。

同时，应进行血吸附病毒检测，应为阴性。

（3）接种动物和鸡胚法检测病毒因子

MCB细胞或WCB细胞以及增殖到或超过生产用体外细胞龄限制代次的细胞，须采用动物体内接种法进行外源病毒因子检测。

选用乳鼠、成鼠和鸡胚（两组不同日龄）共计4组，按表1所列方法进行试验和观察。

如试验到期有80％以上动物或鸡胚健存，此试验成立，结合其他检测确定结果。

对于新建细胞系／株，还应接种豚鼠和家兔（见表1）。

豚鼠主要用于检查细胞内结核分枝杆菌，在注射前观察4周，结核菌素试验为阴性者方可用于试验。

家兔主要用于检测猴来源细胞中是否存在B病毒污染，也可用兔肾细胞培养法代替。

动物组要求数量接种途径细胞浓度／个活细胞·ml※接种细胞液量／ml·只-观察天数结果判定

乳鼠24小时内10（2窝）脑内腹腔>107O．01O．121应健存

成鼠15～20g10脑内腹腔>2X1060.03O．521应健存

鸡胚①9～11日龄10尿囊腔>5X106O．23～4尿液血凝试验阴性

鸡胚5～6日龄10卵黄囊>2X106O．55应存活

豚鼠350～500g5腹腔>4X1055．O42应健存，解剖无结核病变

家兔1.5～2.5kg5皮下皮内②>2X10s9.0O．1×1021无异常，健存

（4）逆转录病毒及其他内源性病毒或病毒核酸的检测

可采用下列方法对MCB细胞或WCB细胞以及增殖到或超过生产用体外细胞龄限制次的细胞进行逆转录病毒的检测。

①逆转录酶活性测定采用敏感的方法，如产品增强的逆转录酶活性测定法（PERT）或其他检测逆转录酶的方法，检测细胞培养液上清中逆转录酶活性。

②透射电镜检查收集待检细胞，低速离心后，弃上清，沉淀中应含有1×107个细胞，且细胞存活率应不低于99％。

在沉淀中加入固定剂，于4℃保存或直接包埋后制备超薄切片，置于铜网上染色后透射电镜观察。

③感染性试验将待检细胞感染逆转录病毒敏感细胞，培养后检测。

根据待检细胞的种属来源，须使用不同的敏感细胞进行感染性试验。

这三种方法具有不同的检测特性及灵敏度，因此应采用不同的方法联合检测。

若逆转录酶活性检测阳性时，建议进行透射电镜检查或感染性试验，以确证是否存在感染性逆转录病毒颗粒。

小鼠来源和其他啮齿类来源的细胞系或其杂交瘤细胞系有可能携带潜在的逆转录病毒。

因此，对于人一鼠杂交瘤细胞系则应进行特异性逆转录病毒检测。

如用于单克隆抗体生产的小鼠细胞系，则可不检测特异性的逆转录病毒，但在生产工艺中应增加病毒灭活程序。

（5）特殊外源病毒因子的检测

应对MCB细胞或WCB细胞进行特殊病毒的检测。

检测病毒的种类应根据细胞系／株种属、组织来源等确定。

如鼠源的细胞系，可采用小鼠、大鼠和仓鼠抗体产生试验，检测其种特异病毒。

人源的细胞系／株，则应检测如人鼻咽癌病毒、人巨细胞病毒、人逆转录病毒、人乙型肝炎病毒、人丙型肝炎病毒。

在某些情况下，也可能进行转化病毒的检测，如人乳头瘤病毒、腺病毒及人单纯疱疹病毒。

这些病毒的检测可采用适当的体外检测技术。

5．致瘤性检查

某些传代细胞系已证明具有致瘤性，如来源于啮齿类的细胞系BHK21、CHO、C127胞等，或细胞类型属致瘤性细胞，如杂交瘤细胞，则可不必做致瘤性检查。

某些传代细胞系已证明在一定代次内不具有致瘤性，而超过某代次则具有致瘤性，如Vero细胞，则必须进行致瘤性检查。

人上皮细胞系、人二倍体细胞株及所有用于活病毒疫苗生产的细胞系／株应进行致瘤性检查。

另外，新建细胞系／株必须进行致瘤性检查。

在某些情况下，用于人体细胞治疗及基因治疗的细胞也须进行致瘤性检查。

将来源于MCB细胞或WCB细胞的增殖到或超过生产用体外细胞龄限制代次，再进行致瘤性试验。

下述两种致肿瘤性试验方法可任选其一：

①裸鼠至少10只，将细胞悬浮于适量无血清培养基中，使细胞浓度为每lml含5×107个细胞，每只裸鼠皮下注射或肌内注射O．2ml；同时用Hela细胞或HeP-2细胞设立阳性对照，阳性对照组至少10只，每只注射0．2ml含106个细胞；可用人二倍体细胞株作为阴性对照，阴性对照组至少10只，每只注射0．2ml含107个细胞。

②新生小鼠（3～5日龄），8～lOg小鼠10只，在出生后第0天、2天、7天和第14天，分别用O．1ml抗胸腺血清（ATS）或球蛋白处理，然后同上每只皮下接种107个活细胞。

并设立阳性对照组，对照组至少接种10只。

结果判定：

①定期观察并触摸注射部位有无结节形成，且形成的任何结节均应进行双向测量并记录。

②阳性对照组至少有9只有进行性肿瘤生长时，试验视为有效。

③如试验组动物有进行性生长的结节或可疑病灶，应观察至少1～2周；若出现的结节在观察期内开始消退，则应在结节完全消退前，处死动物并进行解剖做病理及组织学检查。

④未发生结节的动物，半数动物应观察21天，剖检，另外半数动物应观察12周，进行病理检查，剖检接种部位，观察各淋巴结和各器官有无结节形成，如有怀疑，进行病理组织检查，不应有转移瘤形成。

除上述体内法外，也可采用软琼脂克隆形